Summary

Patient afledte Ortotopiske xenograft-modeller til humant Urothelialt celle karcinom og kolorektal cancer tumor vækst og spontan metastase

Published: May 12, 2019
doi:

Summary

Denne protokol beskriver genereringen af patient afledte ortotopiske xenograft-modeller ved intra-vesielt at indgyde højkvalitets urotheliale celle karcinom celler eller intra-rektalt injektion af kolorektal cancerceller i ikke-overvægtige diabetiske/svære kombinerede immundefekt (NOD/SCID) mus til primær tumorvækst og spontane metastaser under påvirkning af lymfeknude stromale celler, som efterligner progression af humane metastatiske sygdomme.

Abstract

Cancer patienter har dårlige prognoser, når lymfeknude (LN) involvering er til stede i både høj-grade urotheliale celle karcinom (HG-UCC) af blæren og kolorektal cancer (CRC). Mere end 50% af patienter med muskel-invasiv UCC, trods helbredende terapi for klinisk lokaliseret sygdom, vil udvikle metastaser og dø inden for 5 år, og metastatisk CRC er en førende årsag til kræft-relaterede dødsfald i USA. Xenograft-modeller, der konsekvent efterligner UCC og CRC metastase set hos patienter, er nødvendige. Denne undersøgelse har til formål at generere patient-afledte ortotopisk xenograft (pdox) modeller af UCC og CRC for primær tumorvækst og spontane metastaser under påvirkning af LN stromale celler efterligne progression af humane metastatiske sygdomme for Drug screening. Frisk UCC og CRC tumorer blev opnået fra samtykkede patienter, der gennemgår resektion for HG-UCC og kolorektal adenocarcinoma, hhv. Co-inokuleret med LN stromale celle (lnsc) analoge HK celler, luciferase-Tagged UCC-celler var intra-vesically (Ib) indpodet i kvindelige ikke-overvægtige diabetisk/svær kombineret immundefekt (NOD/scid) mus, og CRC-celler var intra-rectally (IR) injiceres i mandlige NOD/SCID mus. Tumor vækst og metastase blev overvåget ugentligt ved hjælp af bioluminescens Imaging (BLI). Ved offer, primære tumorer og mus organer blev høstet, vejet, og formalin-fastgjort for Hematoxylin og eosin og immun histokemi farvning. I vores unikke PDOX-modeller ligner xenograft-tumorer patientens præ-implantations tumorer. I nærværelse af HK celler har begge modeller høj tumor implantation satser målt ved BLI og tumor vægte, 83,3% for UCC og 96,9% for CRC, og høj Fjern organ metastaser satser (33,3% opdaget lever eller lungemetastaser for UCC og 53,1% for CRC). Desuden har begge modeller nul dødelighed fra proceduren. Vi har etableret unikke, reproducerbare PDOX modeller for human HG-UCC og CRC, som giver mulighed for tumordannelse, vækst, og metastase undersøgelser. Med disse modeller kan testning af nye terapeutiske lægemidler udføres effektivt og på en klinisk mimetisk måde.

Introduction

Det har vist sig, at lymfeknuder (LN) metastase er en dårlig prognose indikator i mange solide orgel maligniteter, herunder høj-grade urotheliale celle karcinom (UCC) af blæren og kolorektal cancer (CRC)1,2. Over halvdelen af patienterne med muskel-invasiv UCC (MIUCC), trods helbredende terapi for klinisk lokaliseret sygdom, vil udvikle metastaser og dø inden for 5 år. Metastatisk CRC er en af de førende årsager til kræft relateret død i USA.

En anslået 81.190 nye patienter og 17.240 kræftspecifikke dødsfald forventes at forekomme i 2018 i USA på grund af UCC af blæren3,4. Patienterne vil overvejende (70%) nuværende med ikke-muskel invasiv sygdom, 30% vil have MIUCC5. På trods af kurativ terapi (radikal cystektomi [RC] med eller uden systemisk kemoterapi) for klinisk lokaliseret sygdom, halvdelen af patienter med MIUCC af blæren vil stadig udvikle metastaser og dø inden for 5 år3. Involvering af lymfeknuder findes hos ca. 20% − 25% af de patienter, der har gennemgået RC6,7,8. Femårig overlevelsesrate i LN positive patienter er mindre end 35% selv efter RC, hvilket tyder på LN involvering som en afgørende negativ prædiktor for prognosen i UCC patienter.

Kolorektal cancer er den tredje mest almindelige kræft diagnosticeret i både mænd og kvinder i USA. Patientens resultater afhænger i høj grad af tumorkarakteristika og tumor mikromiljø, såsom dybden af invasion, LN involvering, og fjerntliggende organ metastaser. Selv om dødeligheden i CRC faldt i det sidste årti på grund af screening og effektive operationer, anslås det, at næsten 50% af CRC-patienter vil udvikle metastaser eller recidiverende sygdom9.

Små dyremodeller giver en hurtig, reproducerbar og modificerbare platform til at studere tumorprogression og forskellige metastatiske mønstre. Der er i øjeblikket ingen beskrevne xenograft-modeller, der konsekvent efterligner CRC og UCC metastase set hos patienter. Den primære vej af kræft fjerne metastase er via lymfatisk spredning. Ny forskning tyder på, at LNs giver tumorer med et unikt mikromiljø, og er ikke kun blot stationære mål, hvor kræftceller forbigående passere, men også spille en integreret rolle ved at interagere med kræftceller i den metastatiske proces. Faktisk, vores undersøgelser opdagede, at ud over at uddanne og fremme tumorprogression og metastaser, LN stromale mikromiljø er også ansvarlig for lægemiddelresistens i CRC10,11. Vores laboratorium har for nylig bekræftet de tumorigent effekter af LN stromale celler (lnscs) på CRC og uccs ved hjælp af patient-afledte ortotopisk xenograft (pdox) musemodeller12,13.

Udvikling af pdox-modeller udgør en vigtig platform for Translationel kræftforskning14,15. Ved at opretholde de vigtigste histologiske og genetiske karakteristika for deres donor tumor forbliver pdox-modellerne stabile på tværs af passager og gør gode platforme for Translationel kræftforskning12,15. PDOX-modeller anvendes til præklinisk Lægemiddelvurdering, identifikation af biomarkør og præklinisk evaluering af personaliserede medicin strategier, der gør det muligt at forudsige kliniske resultater. I øjeblikket er der ingen beskrevne xenograft modeller, der overvejer betydningen af LN involvering og er i stand til konsekvent at gengive primær tumor og fjern orgel metastase i CRC og UCC. I denne undersøgelse beskriver vi udviklingen af PDOX-modeller i NOD/SCID-mus med reproduktion af metastatiske CRC-og UCC-sygdomme med involvering af LNSC.

Protocol

Alle metoder, der er beskrevet i disse dyreforsøg, blev udført i henhold til de godkendte retningslinjer for den institutionelle dyrepleje-og anvendelses Komité for Ochsner-sundhedssystemet og i overensstemmelse med retningslinjerne for dyreforskning. Alle patient tumorer for denne undersøgelse blev indsamlet fra samtykkede patienter, der gennemgår kræft resektion kirurgi i overensstemmelse med Ochsner Health System undersøgende revision bestyrelsen og de etiske standarder i den institutionelle Komité for mennesk…

Representative Results

I UCC PDOX-modellen var UCC-patienters BlCaPt15-eller BlCaPt37-celler intra-vesically (IB) indpodet i tilstedeværelsen af HK-celler i kvindelig NOD/SCID-muse blære (figur 1a). Femogtyve ud af tredive (83,3%) dyr genererede primære tumorer og viste tid afhængig primær tumorvækst baseret på ugentlige bli (figur 1b, C og tabel 1). Tilsvarende i CRC-PDOX-modellen var 31 ud af 32 (96,9%) mus vo…

Discussion

Metastatisk sygdom er ansvarlig for de fleste kræftpatient dødelighed. I præ-kliniske terapeutiske tests, det er afgørende at etablere musemodeller, der mest tæt emulere menneskelig tumorvækst med spontane fjernt organ metastaser. Ved hjælp af murine modeller med implanteret patient tumor afledte kræftceller (xenografts) giver mulighed for en bedre forståelse af tumor biologi og prædiktiv biomarkører samt afprøvning og forudsigelse af antineoplastiske effekter af Novel behandlingsformer18</s…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Brian Reuter, Danielle Bertoni, Peter Miller og Shannon McChesney, som hjalp med at iværksætte disse undersøgelser for deres fremragende tekniske støtte. Forfatterne takker også Heather Green Matrana, Margaret Variano, Sunil Talwar og Maria Latsis for assistance i samtykkende patienter og giver tumorprøver.

Materials

Avidin-biotin-peroxidase Vector Labs Inc PK-6100
Biotinylated secondary antibody Vector Labs Inc BA-1000
Collagenase IV (1.5 mg/mL) Worthington Biochemical Corporation LS004189
Deoxyribonuclease I (0.1 mg/mL) Sigma D4263
D-Luciferin (150 mg/kg) Perkin Elmer 122796
Formalin (10% neutral buffered) Leica 46129
glutamine (2 nM) Fisher Scientific 35050061
Hair Removal Cream Church & Dwight Co., Inc 1 (800) 248-8820
Hanks Balanced Salt Solution (HBSS) Fisher Scientific SH30016.02
Hyaluronidase (20 mg/mL) Sigma H3884
Isoflurane Henry Schein Animal Health 108333
Luc/RFP-lentivirus From our collaborators. See reference 13: Gills, J. et al. A patient-derived orthotopic xenograft model enabling human high-grade urothelial cell carcinoma of the bladder tumor implantation, growth, angiogenesis, and metastasis. Oncotarget. 9, 32718-32729, doi:10.18632/oncotarget.26024 (2018).
McCoy’s medium Life Technologies 110862
penicillin/streptomycin 100 mL (100 U/mL) Fisher Scientific 15140-122
RPMI-1640 Medium American Type Culture Collection 110636
Trypan Blue Sigma T6146
Trypsin/EDTA Life Technologies 15400-054
Name Company Catalog Number Comments
Gas
100% Oxygen Airgas Inc OX USP200
100% CO2 Airgas Inc CD USPE
Name Company Catalog Number Comments
Mice
6-8 week old NOD/SCID Mice (male) Jackson Lab 001303
6-8 week old NOD/SCID Mice (female) Jackson Lab 001303
Name Company Catalog Number Comments
Immunohistochemistry
Hematoxylin Sigma GHS232
Ki-67 Rabbit Monoclonal Antibody Thermo Scientific RM-9106-S
Name Company Catalog Number Comments
Tools
40 µm cell strainer Fisher Scientific 08-771-1
100 µm cell strainer Fisher Scientific 08-771-19
15 mL Conical Tube Sarstedt 11799
50 mL Conical tube Sarstedt 15762
150 mm Tissue Culture Dish USA Scientific Inc CC7682-3614
96 Well plate USA Scientific Inc CC7682-7596
Forceps Symmetry Surgical Inc 06-0011
Surgical scissors Symmetry Surgical Inc 02-2011
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
5% CO2 humidified incubator Thermo Scientific 3110
Bioluminescent (BLI) Imaging Machine Perkin Elmer CLS136334
BLI Imaging Machine Software Perkin Elmer CLS136334
Centrifuge Beckman 366830
Deconvoluting Microscope Intelligent Imaging Innovations Marianas
Deconvoluting Microscope Imaging Software Intelligent Imaging Innovations +1 (303) 607-9429 x1
Digital caliper Fowler Tools and Instruments 54-115-330
Dissecting microscope Precision Instruments LLC (504) 228-0076
Electrosurgical generator ValleyLab FORCE1C20
Isoflurane Induction Chamber Perkin Elmer 119038
Microtome American Optical Corporation 829
Pipet Aid Fisher Healthcare 13-681-15E
Serological pipet (10 mL) Sarstedt 86.1254.001

Riferimenti

  1. Sundlisaeter, E., et al. Lymphangiogenesis in colorectal cancer–prognostic and therapeutic aspects. International Journal of Cancer. Journal international du cancer. 121, 1401-1409 (2007).
  2. Gout, S., Huot, J. Role of cancer microenvironment in metastasis: focus on colon cancer. Cancer Microenvironment. 1, 69-83 (2008).
  3. Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. Cancer statistics, 2018. CA: a Cancer Journal for Clinicians. 68, 7-30 (2018).
  4. Hautmann, R. E., de Petriconi, R. C., Pfeiffer, C., Volkmer, B. G. Radical cystectomy for urothelial carcinoma of the bladder without neoadjuvant or adjuvant therapy: long-term results in 1100 patients. European Urology. 61, 1039-1047 (2012).
  5. Stein, J. P., et al. Radical cystectomy in the treatment of invasive bladder cancer: long-term results in 1,054 patients. Journal of Clinical Oncology. 19, 666-675 (2001).
  6. Lerner, S. P., et al. The rationale for en bloc pelvic lymph node dissection for bladder cancer patients with nodal metastases: long-term results. The Journal of Urology. 149, 758-764 (1993).
  7. Poulsen, A. L., Horn, T., Steven, K. Radical cystectomy: extending the limits of pelvic lymph node dissection improves survival for patients with bladder cancer confined to the bladder wall. The Journal of Urology. 160, 2015-2019 (2020).
  8. Margolin, D. A., et al. Lymph node stromal cells enhance drug-resistant colon cancer cell tumor formation through SDF-1alpha/CXCR4 paracrine signaling. Neoplasia. 13, 874-886 (2011).
  9. Vermeulen, L., et al. Wnt activity defines colon cancer stem cells and is regulated by the microenvironment. Nature Cell Biology. 12, 468-476 (2010).
  10. Margolin, D. A., et al. The critical roles of tumor-initiating cells and the lymph node stromal microenvironment in human colorectal cancer extranodal metastasis using a unique humanized orthotopic mouse model. FASEB Journal. 29, 3571-3581 (2015).
  11. Gills, J., et al. A patient-derived orthotopic xenograft model enabling human high-grade urothelial cell carcinoma of the bladder tumor implantation, growth, angiogenesis, and metastasis. Oncotarget. 9, 32718-32729 (2018).
  12. Hidalgo, M., et al. Patient-derived xenograft models: an emerging platform for translational cancer research. Cancer Discovery. 4, 998-1013 (2014).
  13. Hiroshima, Y., et al. Patient-derived mouse models of cancer need to be orthotopic in order to evaluate targeted anti-metastatic therapy. Oncotarget. 7, 71696-71702 (2016).
  14. Kim, H. S., Zhang, X., Klyushnenkova, E., Choi, Y. S. Stimulation of germinal center B lymphocyte proliferation by an FDC-like cell line, HK. The Journal of Immunology. 155, 1101-1109 (1995).
  15. Hite, N., et al. An Optimal Orthotopic Mouse Model for Human Colorectal Cancer Primary Tumor Growth and Spontaneous Metastasis. Diseases of the Colon and Rectum. 61, 698-705 (2018).
  16. Jager, W., et al. Ultrasound-guided intramural inoculation of orthotopic bladder cancer xenografts: a novel high-precision approach. PloS One. 8, e59536 (2013).
  17. Schirner, M., et al. Integrin alpha5beta1: a potent inhibitor of experimental lung metastasis. Clinical & Experimental Metastasis. 16, 427-435 (1998).
  18. Ricci-Vitiani, L., et al. Identification and expansion of human colon-cancer-initiating cells. Nature. 445, 111-115 (2007).
  19. Todaro, M., et al. Colon cancer stem cells dictate tumor growth and resist cell death by production of interleukin-4. Cell Stem Cell. 1, 389-402 (2007).
  20. Lee, J. S., et al. Tumor establishment features of orthotopic murine bladder cancer models. Korean Journal of Urology. 53, 396-400 (2012).
  21. Hadaschik, B. A., et al. A validated mouse model for orthotopic bladder cancer using transurethral tumour inoculation and bioluminescence imaging. BJU International. 100, 1377-1384 (2007).
  22. Silinsky, J., et al. CD 133+ and CXCR4+ colon cancer cells as a marker for lymph node metastasis. The Journal of Surgical Research. 185, 113-118 (2013).
check_url/it/59223?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Moret, R., Hellmers, L., Zhang, X., Gills, J., Hite, N., Klinger, A., Maresh, G. A., Canter, D., Bardot, S., Margolin, D. A., Li, L. Patient-derived Orthotopic Xenograft Models for Human Urothelial Cell Carcinoma and Colorectal Cancer Tumor Growth and Spontaneous Metastasis. J. Vis. Exp. (147), e59223, doi:10.3791/59223 (2019).

View Video