Summary

Visualisering af Superior okulær Sulcus under Danio rerio embryogenese

Published: March 27, 2019
doi:

Summary

Vi præsenterer her, en standardiseret række protokoller at observere den overlegne okulære sulcus, en nylig identificeret, evolutionært bevaret struktur i hvirveldyr øje. Bruger zebrafisk larver, vise vi teknikker nødvendige for at identificere faktorer, der bidrager til dannelse og lukning af den overlegne okulære sulcus.

Abstract

Medfødt okulær coloboma er en genetisk lidelse, der er typisk bemærket som en kløft i ringere aspekt af øjet som følge af ufuldstændig plexus revne lukning. For nylig, identifikation af personer med coloboma i den overlegne aspekt af iris, nethinden, og linse førte til opdagelsen af en ny struktur, omtales som den overlegne revne eller superior okulær sulcus (SOS), der er forbigående til stede på den dorsale aspekt af den optiske kop under hvirveldyr øje udvikling. Selv om denne struktur er bevaret på tværs af mus, kylling, fisk og newt, er vores nuværende forståelse af SOS begrænset. For at belyse faktorer, der bidrager til dens dannelse og lukning, er det bydende nødvendigt at kunne observere det og identificere abnormiteter, såsom forsinkelse i lukningen af SOS. Her, satte vi sig for at skabe en standardiseret serie af protokoller, der kan bruges til at effektivt visualisere SOS ved at kombinere bredt tilgængelige mikroskopi-teknikker med fælles molekylærbiologiske teknikker såsom immunfluorescent farvning og mRNA overekspression. Mens dette sæt af protokoller, der fokuserer på evnen til at iagttage SOS lukning forsinkelse, det kan tilpasses til eksperimentatorens behov og nemt kan redigeres. Samlet set håber vi at skabe en imødekommende metode, hvorigennem vores forståelse af SOS kan være avanceret for at udvide den nuværende viden om hvirveldyr øje udvikling.

Introduction

Dannelsen af de hvirveldyr øje er en yderst velbevarede proces hvor omhyggeligt orkestreret intercellulære signaling veje etablere vævstyper og angive regionale identitet1. Perturbationer til tidlig øje morfogenese medføre dybtgående defekter på arkitekturen i øjet og blændende ofte2. En sådan sygdom skyldes undladelse af at lukke den plexus okulære revne i den ventrale side af optik cup3. Denne lidelse, kendt som okulær coloboma, skønnes for at forekomme i 1 ud af 4-5000 levendefødte og årsag 3-11% af pediatric blindhed, almindeligt manifesterer sig som et nøglehul-lignende struktur, der stikker inferiorly fra elev i midten af øjet4, 5,6. Den plexus revne funktion er at give et indgangspunkt for tidlige Vaskulaturen vokser ind i optiske kop, hvorefter siderne af revne vil sammensmelte for at omslutte fartøjer7.

Mens okulær coloboma har været kendt siden oldtiden, har vi for nylig identificeret en roman undersæt af coloboma patienter med væv tab påvirker den superior/dorsale del af øjet. Seneste arbejde i vores lab har ført til opdagelsen af en okulær struktur i zebrafisk dorsale øje, som vi refererer til som den overlegne okulær sulcus (SOS) eller overlegne revne8. Det er vigtigt at bemærke, at strukturen har karakteristika af både en sulcus og en revne. Svarende til en sulcus, det er en løbende væv lag, der strækker sig fra nasale til tidsmæssige nethinden. Derudover lukningen af strukturen er ikke formidlet af en fusion af de to modsatrettede basalmembranen, og det synes at kræve en morfogenetiske proces som strukturen er befolket af celler. Dog ligner en revne, det udgør en struktur, der adskiller de nasale og tidsmæssige sider af den dorsale øje med basalmembranen. For konsistens, vil vi henvise til det som SOS i denne tekst.

SOS er evolutionært bevaret på tværs af hvirveldyr, kan ses under øjet morfogenese i fisk, kylling, newt og mus8. I modsætning til den plexus revne, som er til stede fra 20-60 timer efter befrugtningen (hpf) i zebrafisk, SOS er meget flygtig, at være let synlige fra 20-23 hpf og fraværende af 26 hpf8. Nyere forskning i vores lab har fundet, at ligner den plexus revne, SOS spiller en rolle i vaskulære vejledning under øjet morfogenese8. Selv om de faktorer, der styrer dannelsen og lukning af SOS ikke er endnu fuldt forstået, vores data fremhæve roller for dorsal-ventral øjet mønster gener8.

Zebrafisk er en fremragende model organisme at studere SOS. Som en modelsystem, det giver en række fordele i at studere øjet udvikling: det er en hvirveldyr model; hver generation udstiller høj frugtbarhed (~ 200 embryoner); dens genom har været fuldt sekventeret, som letter genetisk manipulation; og ca. 70% af menneskelige gener har mindst én zebrafisk orthologue, hvilket gør det en ideel genetik-baseret model for menneskelig sygdom9,10. Vigtigst, dens udvikling finder sted eksternt til moderen, og dens larver er gennemsigtig, hvilket giver mulighed for visualisering af den tredje øjet med relativ lethed11.

I dette sæt af protokoller beskriver vi de teknikker, gennem hvilke SOS kan visualiseres i zebrafisk larver. Vifte af visualiseringsteknikker, der anvendes i denne rapport vil give mulighed for klart observation af SOS under normale øjes udvikling, såvel som evnen til at opdage SOS lukning fejl. Vores eksempel protokoller vil indslag undersøgelser af Gdf6, en BMP lokaliseret til den dorsale øje og kendte regulator af SOS lukning. Yderligere, disse teknikker kan kombineres med eksperimentelle manipulationer til at identificere genetiske faktorer eller farmakologiske stoffer, der påvirker ordentlig SOS dannelse og lukning. Derudover har vi inkluderet en protokol, hvorigennem de fluorescerende billeddannelse af alle cellemembraner er muligt, tillader eksperimentatoren at observere morfologiske ændringer i cellerne omkring SOS. Vores mål er at etablere et sæt standardiserede protokoller, der kan bruges i hele den videnskabelige samfund til at tilbyde nye indsigter i denne nye struktur af det tredje øje.

Protocol

Alle metoder beskrevet her er blevet godkendt af University of Alberta Animal Care og brug udvalget. 1. protokol 1: Visualisering af SOS ved hjælp af stereomicroscopy og differential interferens kontrast (DIC) imaging Embryonerne blev indsamlet I en tank af dechlorinated vand, forberede krydsninger af gdf6a+/- zebrafisk om aftenen ved at parre en mandlig zebrafisk med en kvindelig zebrafisk. Sørg for at adskille mandlige fra kvinden ved hjælp af en ski…

Representative Results

Zebrafisk SOS vises på 20 hpf i den formodede dorsale nethinde8. 23 hpf SOS overgange fra sin oprindelige arkitektur, smalle til en bred fordybning og 26 hpf det er ikke længere synlig8. Derfor, for at undersøge SOS under normale zebrafisk øje udvikling, at embryonerne skal overholdes mellem 20-23 hpf. I denne periode er SOS observerbare gennem dissekere mikroskop og via DIC imaging som en tynd linje i den dorsale øje, der adskiller de …

Discussion

Her præsenterer vi en standardiseret række protokoller at observere SOS i udviklingslandene zebrafisk embryo. For at bestemme lukning forsinkelse fænotyper, har vores protokoller fokuseret på evnen til at skelne adskillelse af to diskrete lapper i de dorsale nasal og dorsal-temporale sider af øjet, svarende til teknikker, der anvendes til at visualisere plexus revne lukning forsinkelse fænotyper i ventrale øjet.

Disse visualiseringsteknikker kan bruges sammen med en række genetiske man…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af canadiske institutter for sundhed Research (CIHR), naturvidenskab og Engineering Research Rådet (NSERC), Alberta innoverer teknologi Futures, og kvinder og børns sundhed Research Institute (WCHRI).

Materials

1-phenyl 2-thiourea Sigma Aldrich P7629-10G
100 mm Petri dish Fisher Scientific FB0875713
35 mm Petri dish Corning CLS430588
Agarose BioShop Canada Inc. AGA001.1
Bovine serum albumin Sigma Aldrich A7906-100G
DIC/Fluorescence microscope Zeiss AxioImager Z1
Dissection microscope Olympus SZX12
Dissection microscope camera Qimaging MicroPublisher 5.0 RTV
Dow Corning High-vacuum grease Fisher Scientific 14-635-5D
Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate salt (Tricaine) Sigma Aldrich A5040-25G
Goat anti-rabbit Alexa Fluor 488 Abcam ab150077
Goat serum Sigma Aldrich G9023
Image capture software Zeiss ZEN
Incubator VWR Model 1545
Microscope Cover Glass (22 mm x 22 mm) Fisher Scientific 12-542B
Microscope slide Fisher Scientific 12-544-2
Minutien pin Fine Science Tools 26002-10
mMessage mMachine Sp6 Transcription Kit Invitrogen AM1340
NotI New England Biolabs R0189S
Paraformaldehyde (PFA) Sigma Aldrich P6148-500G
Phenol:Chloroform:Isoamyl Alcohol pH 6.7 +/- 0.2 Fisher Scientific BP1752-100
Proteinase K Sigma Aldrich P4850
Rabbit anti-laminin antibody Millipore Sigma L9393
TURBO Dnase (2 U/µL) Invitrogen AM2238
Ultrapure low-melting point agarose Invitrogen 16520-100
UltraPure Sodium Dodecyl Sulfate (SDS) Invitrogen 15525017

Riferimenti

  1. Chow, R. L., Lang, R. A. Early eye development in vertebrates. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 17, (2001).
  2. Slavotinek, A. M. Eye development genes and known syndromes. Molecular Genetics and Metabolism. 104 (448-456), (2011).
  3. Gregory-Evans, C. Y., Williams, M. J., Halford, S., Gregory-Evans, K. Ocular coloboma: a reassessment in the age of molecular neuroscience. Journal of Medical Genetics. 41 (12), (2004).
  4. Onwochei, B. C., Simon, J. W., Bateman, J. B., Couture, K. C., Mir, E. Ocular colobomata. Survey of Ophthalmolgy. 45, 175-194 (2000).
  5. Williamson, K. A., FitzPatrick, D. R. The genetic architecture of microphthalmia, anophthalmia and coloboma. European Journal of Medical Genetics. 57, 369-380 (2014).
  6. Chang, L., Blain, D., Bertuzzi, S., Brooks, B. P. Uveal coloboma: clinical and basic science update. Current Opinion in Ophthalmology. 17, 447-470 (2006).
  7. Kaufman, R., et al. Development and origins of Zebrafish ocular vasculature. BMC Developmental Biology. 15 (18), (2015).
  8. Hocking, J. C., et al. Morphogenetic defects underlie Superior Coloboma, a newly identified closure disorder of the dorsal eye. PLOS Genetics. 14 (3), (2018).
  9. Lawson, N. D., Wolfe, S. A. Forward and reverse genetic approaches for the analysis of vertebrate development in the zebrafish. Developmental Cell. 21 (1), (2011).
  10. Howe, K., et al. The zebrafish reference genome sequence and its relationship to the human genome. Nature. 496 (7446), (2013).
  11. Bilotta, J., Saszik, S. The zebrafish as a model visual system. International Journal of Developmental Neuroscience. 19, 621-629 (2001).
  12. Westerfield, M. . The Zebrafish Book; A guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio). , (2007).
  13. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Developmental Dynamics. 203, 253-310 (1995).
  14. Distel, M., Köster, R. W. In vivo time-lapse imaging of zebrafish embryonic development. Cold Spring Harbor Protocols. , (2007).
  15. Thisse, C., Thisse, B. High-resolution in situ hybridization to whole-mount zebrafish embryos. Nature Protocols. 3, 59-69 (2008).
  16. Kwan, K. M., Otsuna, H., Kidokoro, H., Carney, K. R., Saijoh, Y., Chien, C. A complex choreography of cell movements shapes the vertebrate eye. Development. 139, 359-372 (2012).
  17. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullman, B., Schilling, T. F. Stages of Embryonic Development of the Zebrafish. Developmental Dynamics. 203, 253-310 (1995).
  18. Gfrerer, L., Dougherty, M., Liao, E. C. Visualization of Craniofacial Development in the sox10: kaede Transgenic Zebrafish Line Using Time-lapse Confocal Microscopy. J. Vis. Exp. (79), e50525 (2013).
  19. Percival, S. M., Parant, J. M. Observing Mitotic Division and Dynamics in a Live Zebrafish Embryo. J. Vis. Exp. (113), e54218 (2016).
check_url/it/59259?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Yoon, K. H., Widen, S. A., Wilson, M. M., Hocking, J. C., Waskiewicz, A. J. Visualization of the Superior Ocular Sulcus during Danio rerio Embryogenesis. J. Vis. Exp. (145), e59259, doi:10.3791/59259 (2019).

View Video