Summary

Forbigående uttrykk i Red bete en Biopharmaceutical kandidat vaksine for Type-1 Diabetes

Published: March 19, 2019
doi:

Summary

Her presenterer vi en protokoll for å produsere en oral vaksine kandidat mot Type 1 diabetes i en spiselig plante.

Abstract

Anlegget molekylær oppdrett er bruk av planter å produsere molekyler av interesse. I dette perspektivet, kan planter brukes både som bioreaktorer for produksjon og påfølgende rensing av det endelige produktet og den muntlige direktelevering heterologous proteiner ved spiselige plantearter. I dette arbeidet presenterer vi utviklingen av en kandidat oral vaksine mot Type 1 Diabetes (T1D) i spiselig plante-systemer som bruker dekonstruerte plante virus-basert rekombinant DNA-teknologi, leveres med vakuum infiltrasjon. Våre resultater viser at en red bete er en passende vert for forbigående uttrykket av en menneskelig avledede autoantigen knyttet til T1D, anses å være en lovende kandidat som en T1D vaksine. Bladene produserer autoantigen var grundig preget for deres motstand mot mage fordøyelsen, tilstedeværelse av gjenværende bakteriell og sekundære metabolske profilen, gir en oversikt over prosessen produksjon for å benytte planter for muntlig direktelevering en heterologous protein. Vår analyse viste nesten fullstendig nedvurdering frysetørket kandidat oral vaksine etter en simulert mage fordøyelsen, tyder på at det kreves en innkapsling strategi i produksjon av plante-avledet GAD vaksinen.

Introduction

Siden anlegget molekylærbiologi revolusjonen i 1980, kan plante-baserte systemer for produksjon av biopharmaceuticals betraktes som et alternativ til tradisjonelle systemer basert på mikrobiell og pattedyr celler1. Planter vise flere fordeler sammenlignet med tradisjonelle plattformer, skalerbarhet, kostnadseffektivitet og sikkerhet blir de mest relevante2. Rekombinant produktet kan renset fra transformert anlegget vev og deretter administreres, enten parenterally eller muntlig, og dessuten transformert spiselig plante kan brukes direkte for muntlig levering. Muntlig ruten fremmer samtidig slimhinnene og systemisk immunitet, og det eliminerer behovet for nåler og spesialiserte medisinske personell. Videre eliminerer muntlig levering den komplekse nedstrøms behandlingen, som vanligvis står for 80% av totale produksjonskostnadene for en rekombinante proteiner3. Alle disse fordelene kan oversettes til besparelser i produksjon, utstyr og arbeidskraft redusere kostnadene for hver dose, gjør stoffet rimelig for de fleste av den globale befolkningen.

Flere strategier, både for stabil transformasjon og forbigående uttrykk, ble utviklet for produksjon av rekombinante proteinene i planter. Blant dem gir en høy avkastning dekonstruerte plante virus-basert uttrykk systemet (f.eks magnICON) overlegen ytelse fører høy avkastning av rekombinante proteinene over relativt korte tidsskalaer4. Mange eksempler på forbigående uttrykk ved hjelp av plante virus-basert uttrykk systemet i Nicotiana benthamiana planter rapporteres, være gullstandarden produksjon verten. Men regnes denne modellen anlegget ikke som en spiselig Art i alkaloider og andre giftige metabolitter som er akkumuleres i bladene.

I dette arbeidet, beskriver vi sammenligningen mellom to spiselig plante systemer, red bete (Beta vulgaris cv Moulin Rouge) og spinat (Spinacea oleracea cv Industria), for uttrykket av to kandidat former for 65 kDa isoformen av Glutaminsyre dekarboksylasehemmer (GAD65), utført av anlegget virus-basert vektorer5. GAD65 er en stor autoantigen knyttet til Type 1 Diabetes (T1D) og det er under etterforskning i menneskets kliniske forsøk å forebygge eller utsette T1D ved å fremkalle toleranse6. Produksjonen av GAD65 i planter har vært grundig studert i modellen plantearter Nicotiana tabacum og N. benthamiana4,5,6,7. Her beskriver vi bruk av spiselige planter for produksjon av molekylet i vev som kan være ment for en muntlig direktelevering. Fra et teknisk synspunkt, vi studerte og valgt systemet for anlegget agroinfiltration og spiselig plante plattformen for GAD65 produksjon ved å evaluere ulike parametere: rekombinante proteiner uttrykket nivåer, gjenværende mikrobiell tillegget i anlegget vev ment for muntlig levering, motstanden av GAD65 til mage fordøyelsen, og bioequivalence av transformert planter med vill-type.

Protocol

1. Red bete og spinat dyrking Vokse red bete (B. vulgaris cv Moulin Rouge) og spinat (S. oleracea cv Industria) planter i en vekst kammer, med 150 µE lysintensiteten, 65% relativ fuktighet, 12t lys/mørke syklus ved 23/21 ° C, henholdsvis. Etter frø spiring, gjødsle plantene to ganger i uken med en 1 g/L løsning på en kommersielt tilgjengelig gjødsel (Tabell for materiale). Agroinfiltration bruke fem-uke-gamle spinat og seks-uke-gamle red bete planter. </…

Representative Results

I dette arbeidet presenteres arbeidsflyten for utviklingen av en oral vaksine spiselig plante vev. Fokus for dette arbeidet er uttrykk for et mål protein i en spiselig vert plantearter og karakterisering av potensielle oral vaksine. Det første trinnet involvert evalueringen av hensiktsmessigheten av plante virus-basert uttrykk teknologien å produsere rekombinante proteinene i spiselig plante systemer. For denne internettsiden…

Discussion

I denne studien viste vi foreløpig analyse for design av en kandidat oral vaksine for autoimmune diabetes. Målet protein for dette eksperimentet var en mutated form av den menneskelige 65 kDa glutamat dekarboksylasehemmer, hvilke produksjon og funksjonalitet er lett synlig og målbare12. Uttrykket i forskjellige spiselig plante vev ble formidlet av vektorer5, som megle høy rekombinante proteiner produksjon i et svært kort tidsperspektiv. Valg av beste kandidat anlegget …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av samarbeidsprosjektet “Bruk av anlegg for produksjon av en autoimmun diabetes spiselige vaksine (eDIVA)” (prosjekt-ID: 891854) finansiert av universitetet i Verona i rammen av samtalen 2014.

Materials

0.2-μm Minisart RC4 membrane filters Sartorius-Stedim 17764
2–mercaptoethanol Sigma M3148 Toxic; 4 % to make loading buffer with glycerol, SDS and Tris-HCl
4-Morpholineethanesulfonic acid (MES) Sigma M8250 pH 5.5
96-well plate Sarstedt 833924
Acetic acid Sigma 27221 Corrosive
Acetonitrile LC-MS grade Sigma 34967
Acetosyringone Sigma D134406 Toxic – 0.1 M stock in DMSO
Agar Bacteriological Grade Applichem A0949 15 g/L to make LB medium (pH 7.5 with NaOH) with Yeast extract, NaCl and Tryptone
Ammonium formate Sigma 70221
Anti-eGFP antibody ABCam ab290
Anti-GAD 65/67 antibody Sigma G5163
Anti-LHCB2 antibody Agrisera AS01 003
Brilliant Blue R-250 Sigma B7920
C18 Column Grace    – Alltima HP C18 (150 mm x 2.1 mm; 3 μm) Column
C18 Guard Column Grace    – Alltima HP C18 (7.5 mm x 2.1 mm; 5 μm) Guard  Column
CalMag Grower Peter Excel 15-5-15 Fertilizer
Carbenicillin disodium Duchefa Biochemie C0109 Toxic
Chemiluminescence imaging system BioRad 1708370 ChemiDoc Touch Imaging System
Chloroform Sigma C2432
Detergent Sigma P5927 Polysorbate 20
Fluorescence reader Perkin-Elmer  1420-011 VICTOR Multilabel Counter
Formic acid LC-MS grade Sigma 94318
Glycerol Sigma G5516 15 % to make loading buffer with Tris-HCl, SDS and 2–mercaptoethanol
GoTaq G2 polymerase Promega M7841
HCl Sigma H1758 Corrosive
HILIC Column Grace    – Ascentis Express HILIC (150 mm x 2.1 mm; particles size 2.7 μm) Column
HILIC Guard Column Grace    – Vision HT HILIC (7.5 mm x 2.1 mm; 3 μm) Guard  Column
Horseradish peroxidase (HRP)-conjugate anti-rabbit antibody Sigma A6154 Do not freeze/thaw too many times
HPLC Autosampler Beckman Coulter    – System Gold 508 Autosampler
HPLC System Beckman Coulter    – System Gold 128 Solvent Module HPLC
Isopropanol Sigma 24137 Flamable
Kanamycin sulfate Sigma K4000 Toxic
KCl Sigma P9541 2 g/L with NaCl , Na2HPO4 and KH2PO4 to make PBS
KH2PO4 Sigma P9791 2.4 g/L with NaCl , Na2HPO4 and KCl to make PBS
Loading Buffer
Luminol solution Ge Healthcare RPN2232 Prepare the solution using the ECL Prime Western Blotting System commercial kit
Lyophilizator 5Pascal LIO5P0000DGT
Mass Spectometer Bruker Daltonics   – Bruker Esquire 6000; the mass spectrometer was equipped with an ESI source and the analyzer was an ion trap
Methanol Sigma 32213
MgSO4 Sigma M7506
Milk-blocking solution Ristora    – 3 % in PBS
Na2HPO4 Sigma S7907 Use with NaH2PO4 to make Sodium Phospate buffer
NaCl Sigma S3014 80 g/L with KCl, Na2HPO4 and KH2PO4 to make PBS; 10 g/L to make LB medium (pH 7.5 with NaOH) with Yeast extract, Tryptone and Agar Bacteriological Grade
NaH2PO4 Sigma S8282  Use with Na2HPO4 to make Sodium Phospate buffer; 14.4 g/L to make PBS
NaOH Sigma S8045
Nitrocellulase membrane Ge Healthcare 10600002
Pepsin from porcine gastric mucosa Sigma P7000
Peroxidase substrate ECL GE Healthcare RPN2235 Light sensitive material
Pump Vacuum Press VWR 111400000098
Reagent A Sigma B9643 Use 50 parts of this reagent with 1 part of reagent B to prepare BCA working solution
Reagent B Sigma B9643 Use 1 part of this reagent with 50 parts of reagent A to prepare BCA working solution
Rifampicin Duchefa Biochemie R0146 Toxic – 25 mg/mL stock in DMSO
SDS (Sodium dodecyl sulphate) Sigma L3771 Flamable, toxic, corrosive-10 % stock; 3 % to make loading buffer with Tris-HCl, Glycerol and 2–mercaptoethanol
Sodium metabisulphite Sigma 7681-57-4
Sonicator system Soltec 090.003.0003 Sonica® 2200 MH; frequency 40 khz
Syringe Terumo    –
Transparent fixed 300-µL insert glass tubes Thermo Scientific 11573680
Trizma Base Sigma T1503 Adjust pH with 1N HCl to make Tris-HCl buffer, use 1,5M Tris-HCl (pH 6.8) to make loading buffer with SDS, Glycerol and 2–mercaptoethanol
Tryptone Formedium TRP03 10 g/L to make LB medium (pH 7.5 with NaOH) with Yeast extract, NaCl and Agar Bacteriological Grade
Vacuum concentrator Heto 3878 F1-3 Speed-vac System
Water LC-MS grade Sigma 39253
Yeast extract Sigma Y1333 5 g/L to make LB medium (pH 7.5 with NaOH) with Tryptone, NaCl and Agar Bacteriological Grade

Riferimenti

  1. Merlin, M., Pezzotti, M., Avesani, L. Edible plants for oral delivery of biopharmaceuticals. British Journal of Clinical Pharmacology. 83 (1), 71-81 (2017).
  2. Merlin, M., Gecchele, E., Capaldi, S., Pezzotti, M., Avesani, L. Comparative evaluation of recombinant protein production in different biofactories: The green perspective. BioMed Research International. , (2014).
  3. Menkhaus, T. J., Bai, Y., Zhang, C., Nikolov, Z. L., Glatz, C. E. Considerations for the recovery of recombinant proteins from plants. Biotechnology Progress. 20 (4), 1001-1014 (2004).
  4. Avesani, L., Bortesi, L., Santi, L., Falorni, A., Pezzotti, M. Plant-made pharmaceuticals for the prevention and treatment of autoimmune diseases: Where are we?. Expert Review of Vaccines. 9 (8), 957 (2010).
  5. Marillonnet, S., Thoeringer, C., Kandzia, R., Klimyuk, V., Gleba, Y. Systemic Agrobacterium tumefaciens-mediated transfection of viral replicons for efficient transient expression in plants. Nature Biotechnology. 23, (2005).
  6. Ludvigsson, J. Update on treatment of type 1 diabetes in childhood. Current Pediatric Reviews. 1 (2), 118-127 (2013).
  7. Merlin, M., et al. Enhanced GAD65 production in plants using the MagnICON transient expression system: Optimization of upstream production and downstream processing. Biotechnology Journal. 11 (4), 542-553 (2016).
  8. Gecchele, E., Merlin, M., Brozzetti, A., Falorni, A., Pezzotti, M., Avesani, L. A Comparative Analysis of Recombinant Protein Expression in Different Biofactories: Bacteria, Insect Cells and Plant Systems. Journal of Visualized Experiments. 23 (97), (2015).
  9. Dal Santo, S., et al. The terroir concept interpreted through grape berry metabolomics and transcriptomics. Journal of Visualized Experiments. 5 (116), (2016).
  10. Chen, Q., et al. Agroinfiltration as an effective and scalable strategy of gene delivery for production of pharmaceutical proteins. Advanced Techniques in Biology and Medicine. 1 (1), (2013).
  11. Bertini, E., et al. Design of a type-1 diabetes vaccine candidate using edible plants expressing a major autoantigen. Frontiers in Plant Science. 9, (2018).
  12. Avesani, L., et al. Improved in planta expression of the human islet autoantigen glutamic acid decarboxylase (GAD65). Transgenic Research. 12 (2), 203-212 (2003).
  13. Sepúlveda-Jiménez, G., Rueda-Benítez, P., Porta, H., Rocha-Sosa, M. A red beet (Beta vulgaris) UDP-glucosyltransferase gene induced by wounding, bacterial infiltration and oxidative stress. Journal of Experimental Botany. 56, (2005).
  14. Renukuntla, J., Vadlapudi, A. D., Patel, A., Boddu, S. H. S., Mitra, A. Approaches for enhancing oral bioavailability of peptides and proteins. International Journal of Pharmaceutics. 447, 75-93 (2013).
  15. . Encapsulation importance in pharmaceutical area, how it is done and issues about herbal extraction Available from: https://www.researchgate.net/publication/271702091_Encapsulation_importance_in_pharmaceutical_area_how_it_is_done_and_issues_about_herbal_extraction (2015)
  16. Kamei, N., et al. Complexation hydrogels for intestinal delivery of interferon beta and calcitonin. Journal of Controlled Release. 134, 98-102 (2009).
  17. Tuesca, A., et al. Complexation hydrogels for oral insulin delivery: effects of polymer dosing on in vivo efficacy. Journal of Pharmaceutical Sciences. 97, 2607-2618 (2008).
  18. Twyman, R. M., Schillberg, S., Fischer, R. Optimizing the yield of recombinant pharmaceutical proteins in plants. Current Pharmaceutical Design. 19, 5486-5494 (2013).
  19. Dhama, K., et al. Plant-based oral vaccines for human and animal pathogens – a new era of prophylaxis: current and future perspectives. Journal of Experimental Biology and Agricultural Sciences. 447, 75-93 (2013).
  20. Hefferon, K. Reconceptualizing cancer immunotherapy based on plant production systems. Future science. O3, (2017).
check_url/it/59298?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Santoni, M., Bertini, E., Zampieri, R., Cuccurullo, A., Commisso, M., Gecchele, E., Avesani, L. Transient Expression in Red Beet of a Biopharmaceutical Candidate Vaccine for Type-1 Diabetes. J. Vis. Exp. (145), e59298, doi:10.3791/59298 (2019).

View Video