Summary

Rapid Generation av primær murine melanocyte og Fibroblast kulturer

Published: June 26, 2019
doi:

Summary

Denne protokollen skisserer en rask metode for å samtidig generere melanocyte og Fibroblast kulturer fra huden på 0-4 dag gamle mus. Disse primære kulturene kan opprettholdes og manipuleres in vitro for å studere en rekke fysiologisk relevante prosesser, inkludert hud cellebiologi, pigmentering, sår helbredelse og melanom.

Abstract

Defekter i Fibroblast eller melanocyte funksjon er forbundet med hudsykdommer, inkludert dårlig barrierefunksjon, defekt sår helbredelse, pigmentering defekter og kreft. Avgjørende for forståelsen og forbedring av disse sykdommene er eksperimenter i primære Fibroblast og melanocyte kulturer. Likevel, gjeldende protokoller for melanocyte isolasjon krever at epidermal og dermal lag av huden er trypsinized og manuelt disassociated. Denne prosessen er tidkrevende, teknisk utfordrende og bidrar til inkonsekvent avkastning. Videre metoder for å samtidig generere rene Fibroblast kulturer fra samme Vevsprøve er ikke lett tilgjengelig. Her beskriver vi en forbedret protokoll for å isolere melanocytter og fibroblaster fra huden til mus på postnatal dager 0-4. I denne protokollen er hele huden mekanisk homogenisert ved hjelp av et vev helikopter og deretter kort fordøyd med kollagenase og Trypsin. Celle populasjoner blir deretter isolert gjennom selektiv plating etterfulgt av G418 behandling. Denne prosedyren resulterer i konsekvent melanocyte og Fibroblast gir fra en enkelt mus på mindre enn 90 min. Denne protokollen er også lett skalerbar, slik at forskerne kan behandle store kohorter av dyr uten en betydelig økning i hands-on tid. Vi viser gjennom Flow analytiske vurderinger som kulturer etablert ved hjelp av denne protokollen er svært beriket for melanocytter eller fibroblaster.

Introduction

Pattedyr hud er en flerlags organ som beskytter kroppen fra utenlandske patogener og Ultra Violet bestråling (UVR). Huden spiller også en avgjørende rolle i homøostatisk prosesser som sår helbredelse, temperaturregulering og vitamin D produksjon1,2,3. Pattedyr hud består av tre store celletyper: melanocytter, fibroblaster og keratinocytter. Disse celletyper fylle forskjellige lag av huden, med keratinocytter gjør opp epidermis, fibroblaster bosatt i dermis og melanocytter lokalisere til epidermal-dermal veikryss og hårsekker4. Her detalj vi en enkel prosedyre som gjør det mulig for samtidig generering av primære melanocyte og Fibroblast kulturer fra murine hud.

Melanocytter er pigment-produserende celler som finnes i mange steder i hele kroppen, inkludert basal epidermis, Iris, cochlea, hjerne og hårsekker5. Den primære funksjon av melanocytter er å generere og skiller melanin inneholder blemmer kalt melanosomer5,6. Melanosomer inneholder to store klasser av melanin: brun/svart eumelanin og gul/rød pheomelanin6,7. Biokjemiske prosesser innenfor melanocyte regulere den relative overflod av hver melanin arter og bidra til å bestemme hår, hud og øyenfarge8,9. Melanin tjener også til å absorbere UVR og beskytte sol-eksponert vev fra mutagenese10.

Melanocyte dysfunksjon kan forårsake pigmentær defekter og øke hudkreft mottakelighet. For eksempel, den hyper-pigmentert hud patcher karakteristisk for melasma er resultatet av fokal melanin overproduksjon, mens germline genetiske mutasjoner som kompromiss gener involvert i melanin syntese føre til albinisme11,12 . Intim kjennskap til melanocyte biologi er nødvendig for å utvikle strategier som vil rette opp slike pigmentær defekter og til slutt forbedre den psykososiale trivsel for individer plaget med disse sykdommene. Underskudd i melanin produksjon og/eller fortrinnsrett syntese av pheomelanin er også forbundet med økt hudkreft risiko10. Denne risikoen antas å skyldes redusert UVR Protection6,13. Således, metoder å forsterke eller restaurere eumelanin produksjon inne melanocytter kanskje nedskrive forekomsten av hud kreften inne disse befolkninger.

Mesenchymal fibroblaster etablere bindevev og strukturell støtte for alle organer i kroppen, inkludert dermal laget av huden14. Utskillelse av proteiner som kollagen, elastin, laminin og fibronektin muliggjør fibroblaster for å danne ekstracellulære Matrix (ECM) som er essensielt for vev integritet1,14. Fibroblaster spiller også viktige roller i prosesser som sår helbredelse, inflammasjon, angiogenese og kreft dannelse/progresjon1,15,16.

Analog med melanocytter, feilene inne Fibroblast aktivisering og funksjonen kanne fremme tumorigenesis og sykdommen. For eksempel, upassende Fibroblast aktivering vanligvis fører til dannelsen av fibrose, som følge av den forbedrede deponering av overflødige ECM komponenter i det omkringliggende vevet. Som fibroblaster opprettholde mye av kroppens strukturelle integritet, fibrose fremmer sykdommer som påvirker mange vev og organer, inkludert idiopatisk lunge fibrose, systemisk sklerose, skrumplever og hjerte fibrose15. Fibroblaster spiller også en avgjørende rolle i kreft16. Kreft assosiert fibroblaster (CAFs) er den mest tallrike ikke-ondartet celler i mikromiljøet av mange svulster. CAFs har vist å fremme tumor spredning, progresjon og terapeutisk motstand ved modulerende vev stivhet, lokal cytokin produksjon og immun funksjon16.

Primær cellekulturer gi forskere med genetisk medgjørlig modeller for å identifisere og dempe melanocyte og Fibroblast defekter som fører til sykdom. Men dagens metoder for å etablere melanocyte kulturer er tidkrevende og teknisk utfordrende. Behovet for trypsinization og delikat separasjon av epidermis og dermis bidrar til variasjon i eksperimentell avkastning og gjør det vanskelig å utføre store eksperimenter. Videre, protokoller å samtidig isolere melanocytter og fibroblaster fra hele hud er aktuelle mangler inne feltet.

Vi har utviklet en metode for å redusere behandlingstrinnene, variasjonen og tiden som kreves for å etablere melanocyte og Fibroblast kulturer fra samme hele hud prøve. Ved hjelp av en mekanisk homogenisering metode etterfulgt av en kort fordøyelse, vår strategi betydelig reduserer mengden av hands-on tid som kreves for å isolere primære melanocytter mens muliggjør samtidige Fibroblast isolasjon. Den økte hastigheten, effektiviteten og konsistensen i denne protokollen, i kombinasjon med evnen til å isolere melanocytter fra 0-4 dag gamle mus, gir forskerne fleksibilitet til å utføre et bredere spekter av eksperimenter enn det som tidligere var mulig.

Protocol

Få godkjennelse fra din institusjonelle dyreetikk komité før du starter denne eller andre studier som involverer dyr. Eksperimenter utført i denne protokollen ble godkjent av Ohio State universitetets institusjonelle Animal Care og use Committee (IACUC, protokoll #2012A00000134). 1. klargjøring av protokoll Merk: Følgende instruksjoner for klargjøring av reagens er egnet for generering av 9 cm2 melanocyte og Fibroblast kulturer fra ?…

Representative Results

Mannlige og kvinnelige C57Bl/6J mus ble euthanized på postnatal dager 0-4 og koordinasjonen huden ble utsatt for mekaniske dissosiasjon som beskrevet ovenfor. Etter hakking, huden dannet en viskøs slurry mangler noen tegn på strukturelle vev. Sentrifugering av denne slurry resulterte i dannelsen av en stor celle pellet på bunnen av den koniske rør og et lag av fett flytende på toppen av supernatanten. Dette fettlaget ble forkastet med supernatanten mens den resterende celle pellet var resuspendert og overført til …

Discussion

Den in vitro kulturen i primær melanocytter og fibroblaster har ført til betydelige fremskritt i vår forståelse av hud biologi og sykdom. Denne protokollen forbedrer på tidligere melanocyte isolasjon metoder ved å redusere tiden og tekniske savvy nødvendig for å generere konsistente melanocyte kulturer samtidig som for samtidig isolering av huden fibroblaster. En roman, tidsbesparende element i denne prosedyren er at dermis og epidermis ikke trenger å skilles. I stedet, hudceller er isolert ved hjelp av konsekve…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Damon Runyon Foundation (Innovation Award #38-16 til C.E.B.) og Pelotonia (B.M.M.) for økonomisk støtte. Vi er takknemlige for C. Haines og C. Wormsbaecher som ga kommentarer for å forbedre manuskriptet tekst. Dette arbeidet dratt nytte av Ohio State Comprehensive Cancer Center ‘ s Analytical flowcytometri delt ressurs som er støttet av NIH P30 CA016058.

Materials

0.2 µm PES sterile syringe filter VWR 28145-501
10 cm cell culture dish Corning 430167
40 µm cell strainer Fisher Scientific 22363547
5 mL polystyrene round-bottom tubes Fisher Scientific 352008
6-well cell culture dish Sigma-Aldrich SIAL0516
70 µm cell strainer Fisher Scientific 22363548
Antibiotic Antimycotic Solution (100x) Sigma-Aldrich A5955
Bovine Serum Albumin Fisher Scientific BP9706-100
CF 488A Mix-n-Stain Antibody Labeling Kit Biotium 92273
CF 555 Mix-n-Stain Antibody Labeling Kit Biotium 92274
Cholera Toxin Sigma-Aldrich C8052
Collagen from rat tail Sigma-Aldrich C7661
Collagenase Type I Worthington Biochemicals LS004156
Corning Penicillin/Streptomycin Solution Fisher Scientific 30-002-CL
Cytokeratin 14 Antibody Alexa Fluor 647 Novus Biologicals NBP2-34403AF647
Deoxyribonuclease I Worthington Biochemicals LS002058
Di-butyryl cyclic AMP Sigma-Aldrich D0627
Dulbecco's Modified Eagle Medium Gibco 12800-082
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline Sigma-Aldrich D8537
eBioscience Fixable Viability Dye eFluor 780 Thermo Fisher 65-0865-14
Ethanol, 200 proof Fisher Scientific 22032601
Fetal Bovine Serum Sigma-Aldrich 12306C
FSP1/S100A4 antibody Millipore Sigma 07-2274
G418 Disulfide P212121 LGB-418-1
Glacial Acetic Acid VWR VWRV0714
Horse Serum Fisher Scientific 26050088
HyClone L-Glutamine Fisher Scientific SH3003402
McIlwain Tissue Chopper Ted Pella 10180
Melanoma gp100 antibody Abcam ab137078
Nutrient Mix F-12 Ham's Media Sigma-Aldrich N6760
Phorbol 12-Myristate 13-acetate Sigma-Aldrich P8139
Pierce 16% Formaldehyde Thermo Fisher 28908
Porcine Trypsin Sigma-Aldrich 85450C
RPMI 1640 media Sigma-Aldrich R8758
Saponin Sigma-Aldrich S-7900
Tissue Chopper Blade Ted Pella 121-6
Tissue Chopper Plastic Disk Ted Pella 10180-01
Trypsin VWR VWRL0154-0100

Riferimenti

  1. Rittie, L. Cellular mechanisms of skin repair in humans and other mammals. Journal of Cell Communucation and Signal. 10 (2), 103-120 (2016).
  2. Romanovsky, A. A. Skin temperature: its role in thermoregulation. Acta Physiologica (Oxf). 210 (3), 498-507 (2014).
  3. Holick, M. F., Smith, E., Pincus, S. Skin as the site of vitamin D synthesis and target tissue for 1,25-dihydroxyvitamin D3. Use of calcitriol (1,25-dihydroxyvitamin D3) for treatment of psoriasis. Archives of Dermatology. 123 (12), 1677-1683 (1987).
  4. Yamaguchi, Y., Hearing, V. J. Physiological factors that regulate skin pigmentation. Biofactors. 35 (2), 193-199 (2009).
  5. Yamaguchi, Y., Hearing, V. J. Melanocytes and their diseases. Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine. 4 (5), (2014).
  6. Brenner, M., Hearing, V. J. The protective role of melanin against UV damage in human skin. Photochemistry and Photobiology. 84 (3), 539-549 (2008).
  7. Thody, A. J., et al. Pheomelanin as well as eumelanin is present in human epidermis. The Journal of Investigative Dermatology. 97 (2), 340-344 (1991).
  8. Swope, V. B., Abdel-Malek, Z. A. MC1R: Front and Center in the Bright Side of Dark Eumelanin and DNA Repair. International Journal of Molecular Science. 19 (9), (2018).
  9. Barsh, G. S. What controls variation in human skin color. PLoS biology. 1 (1), 27 (2003).
  10. Abdel-Malek, Z., et al. The melanocortin-1 receptor is a key regulator of human cutaneous pigmentation. Pigment Cell Research. 13, 156-162 (2000).
  11. Gronskov, K., Ek, J., Brondum-Nielsen, K. Oculocutaneous albinism. Orphanet Journal of Rare Diseases. 2, 43 (2007).
  12. Kwon, S. H., Hwang, Y. J., Lee, S. K., Park, K. C. Heterogeneous Pathology of Melasma and Its Clinical Implications. International Journal of Molecular Sciences. 17 (6), (2016).
  13. D’Orazio, J., Jarrett, S., Amaro-Ortiz, A., Scott, T. UV radiation and the skin. International Journal of Molecular Science. 14 (6), 12222-12248 (2013).
  14. Bonnans, C., Chou, J., Werb, Z. Remodelling the extracellular matrix in development and disease. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 15 (12), 786-801 (2014).
  15. Kendall, R. T., Feghali-Bostwick, C. A. Fibroblasts in fibrosis: novel roles and mediators. Frontiers in Pharmacology. 5, 123 (2014).
  16. Kalluri, R. The biology and function of fibroblasts in cancer. Nature Reviews Cancer. 16 (9), 582-598 (2016).
  17. Dickson, M. A., et al. Human keratinocytes that express hTERT and also bypass a p16(INK4a)-enforced mechanism that limits life span become immortal yet retain normal growth and differentiation characteristics. Molecular and Cellular Biology. 20 (4), 1436-1447 (2000).
check_url/it/59468?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Murphy, B. M., Weiss, T. J., Burd, C. E. Rapid Generation of Primary Murine Melanocyte and Fibroblast Cultures. J. Vis. Exp. (148), e59468, doi:10.3791/59468 (2019).

View Video