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Articolo metodologico

Imaging calcio Dynamics in sottopopolazioni di cellule di islet pancreatica del topo

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DOI:

10.3791/59491

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26 novembre 2019

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In questo articolo

Sommario

Qui presentiamo un protocollo per l'imaging e la quantificazione della dinamica del calcio in popolazioni cellulari eterogenee, come le cellule delle isolotiche pancreatiche. I reporter fluorescenti vengono consegnati nello strato periferico delle cellule all'interno dell'isolotto, che viene poi immobilizzato e immagine, e viene eseguita l'analisi per cellula della dinamica dell'intensità della fluorescenza.

Abstract

Gli ormoni delle islet etiche regolano l'omeostasi della glicemia. I cambiamenti nella glicemia provocano oscillazioni di calcio citosolico nelle cellule delle issotiche pancreatiche che attivano la secrezione di tre ormoni principali: insulina (da cellule z), glucagone (cellule z) e somatostatina (cellule di zmetica). Le cellule z, che costituiscono la maggior parte delle cellule dell'isolotto e sono accoppiate elettricamente tra loro, rispondono allo stimolo del glucosio come un'unica entità. L'eccitabilità delle sottopopolazioni minori, le cellule zo-cellule e le cellule z e il 4% (10%) del roditore totale1 (umano2)impartita, rispettivamente) è meno prevedibile ed è quindi di particolare interesse.

I sensori di calcio vengono consegnati nello strato periferico delle cellule all'interno dell'isolotto isolato. L'isolotto o un gruppo di isolotti viene quindi immobilizzato e immagine utilizzando un microscopio a fluorescenza. La scelta della modalità di imaging è tra maggiore velocità effettiva (campo largo) e una migliore risoluzione spaziale (confocale). Convenzionalmente, la microscopia confocale a scansione laser viene utilizzata per l'imaging del tessuto, in quanto fornisce la migliore separazione del segnale tra le cellule vicine. Se il segnale contaminante proveniente dalla popolazione dominante delle cellule cellule è ridotto al minimo, è possibile utilizzare anche un sistema a campo largo, se il segnale contaminante proveniente dalla popolazione dominante delle cellule celle è ridotto al minimo.

Una volta registrate le dinamiche di calcio in risposta a stimoli specifici, i dati sono espressi in forma numerica come intensità di fluorescenza rispetto al tempo, normalizzati alla fluorescenza iniziale e corretti al basale, per eliminare gli effetti legati allo sbiancamento fluoroforo. Le variazioni della frequenza dei picchi o dell'area parziale sotto la curva (pAUC) vengono calcolate rispetto al tempo, per quantificare gli effetti osservati. pAUC è più sensibile e abbastanza robusto, mentre la frequenza di chiodare fornisce maggiori informazioni sul meccanismo di aumento del calcio.

Le sottopopolazioni di cellule minori possono essere identificate utilizzando risposte funzionali ai composti marcatori, come adrenalina e grelina, che inducono cambiamenti nel calcio citosolico in una specifica popolazione di cellule di isolotto.

Introduzione

Lo scopo del metodo è quello di immaginare cambiamenti in tempo reale nella concentrazione di calcio citosolico ([Ca2]cyt) nelle sottopopolazioni minori di cellule dell'isolotto pancreatico. Questo permette di scoprire i meccanismi che regolano la secrezione ormonale in queste cellule, rivelando dettagli sul discorso incrociato tra diversi tipi di cellule e, potenzialmente, introducendo una dimensione della popolazione nel quadro più ampio della segnalazione dell'isolotto.

Le isole sono costituite da diversi tipi di cellule. Oltre alle più note cellule z che secernono insulina, ci sono almeno due sottopopolazioni che s....

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Protocollo

Tutti i metodi qui descritti sono stati sviluppati in conformità con il United Kingdom Animals (Scientific Procedures) Act (1986) e l'University of Oxford ethical guidelines.

1. Isolare le isole pancreatiche del topo

  1. Preparare il supporto di coltura e la soluzione di isolamento.
    1. Comporre il mezzo di coltura: RMPI1640 (vedi Tabella dei materiali), integrato con il 10% del siero di vitello fetale, 100 unità/mL di penicillina, 100 streptomicino. Distribuisci il mezzo in due piatti Petri in plastica da 60 mm (non trattati con adesivo) e mantieni i piatti nell'incubatrice (37 gradi centigradi, 5% CO2....

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Risultati

Le isole si caricano abbastanza bene con i coloranti trappable (Figura 1A), a meno che la composizione lipidica della membrana non sia stata influenzata (ad esempio, dall'esposizione cronica agli acidi grassi). Il vettore adenovirus umano di tipo 5 (Ad5) si rivolge anche a tutte le celle dell'isolotto(Figura 1B). I problemi possono sorgere quando più di un sensore ricombinante viene espresso nella stessa cella. Inoltre, gli isol.......

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Discussione

Ci sono tre fasi del protocollo che sono fondamentali per il successo generale. Il successo dell'iniezione dell'enzima Liberase nel dotto biliare determina non solo il successo quantitativo della procedura di isolamento, ma influisce anche sulla qualità delle isole isolate. Pancreata non gonfiata può provocare la mancanza di alcune importanti risposte metaboliche nelle isole isolate. In secondo luogo, il caricamento del colorno/l'espressione del sensore definisce il rapporto segnale-rumore della registrazione time-lapse........

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Dichiarazioni

Gli Autori non dichiarano conflitti di interesse.

Ringraziamenti

AH ha ricevuto un Dottorato di ricerca nel Regno Unito sul diabete, EV è stato sostenuto dal programma di formazione post-dottorato OXION-Wellcome Trust, AIT.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Obiettivo 40x/1.3 Emissione
microscopio
Eccitazione Siero
fetale bovinoSigma-AldrichF7524-500ML
Fluo4Thermo Fisher (Life Technologies)F14201
GCaMP6f, in (tipo umano 5) vettore adenoviraleVector Biolabs1910
Soluzione di HanksThermo Fisher (GibCo, Life Technologies)
LiberaseSigma-Aldrich5401020001
penicillina/streptomicinaThermo Fisher (GibCo, Life Technologies)15140122
RPMI mediumThermo Fisher (GibCo, Life Technologies)61870044
Sistema confocale Zeiss LSM510-METACarl Zeiss
al Axiovert 200

Riferimenti

  1. Elayat, A. A., el-Naggar, M. M., Tahir, M. An immunocytochemical and morphometric study of the rat pancreatic islets. Journal of Anatomy. 186, Pt 3 629(1995).
  2. Cabrera, O., et al.

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Ristampe e permessi

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