Summary

Mätning av de Dissimilatory Nitratminskningens potentiella frekvenser till ammonium Baserat på 14NH4+/15NH4+ Analyser via Sekventiell omvandling till N2O

Published: October 07, 2020
doi:

Summary

En serie metoder för att fastställa den potentiella DNRA-frekvensen baserat på 14NH4+/15NH4+ analyser tillhandahålls i detalj. NH4+ omvandlas till N2O via flera steg och analyseras med hjälp av quadrupole gaskromatografi–masspektrometri.

Abstract

Vikten av att förstå nitrats öde (NO3), som är den dominerande N-arten som överförs från terrestra till akvatiska ekosystem, har ökat eftersom de globala kvävebelastningarna har ökat dramatiskt efter industrialiseringen. Dissimilerande nitratreduktion till ammonium (DNRA) och denitrifikation är båda mikrobiella processer som använder NO3 för respiration. Jämfört med denitrifikationen har kvantitativa bestämningar av DNRA-verksamheten endast genomförts i begränsad omfattning. Detta har lett till en otillräcklig förståelse för DNRA:s betydelse i NO3 transformationer och de reglerande faktorerna i denna process. Målet med detta dokument är att tillhandahålla ett detaljerat förfarande för mätning av den potentiella DNRA-satsen i miljöprover. I korthet kan den potentiella DNRA-takten beräknas från den 15N-märkta ammonium (15NH4+) ackumulationshastighet i 15NO3 tillsatt inkubation. Fastställandet av de 14NH4+ och 15NH4+ koncentrationer som beskrivs i detta dokument består av följande steg. Först extraheras NH4+ i provet och fastnar på ett surt glasfilter som ammoniumsalt. För det andra eluteras och oxideras den fångade ammonium till NO3 via persulfatoxidation. För det tredje omvandlas NO3 till N2O via en N2O-reduktas-bristfällig denitrifier. Slutligen analyseras den konverterade N2O med hjälp av en tidigare utvecklad quadrupole gaskromatografi–masspektrometri system. Vi tillämpade denna metod på saltkärrsediment och beräknade deras potentiella DNRA-satser, vilket visar att de föreslagna förfarandena möjliggör en enkel och snabbare bestämning jämfört med tidigare beskrivna metoder.

Introduction

Den artificiella syntesen av kvävegödselmedel och dess utbredda tillämpning har kraftigt stört den globala kvävecykeln. Man uppskattar att överföringen av reaktivt kväve från land- till kustsystem har fördubblats sedan förindustriella tider1. En betydande del av gödselmedel som tillämpas på ett visst fält tvättas bort från jorden till floder eller grundvatten, främst som NO3 2. Detta kan orsaka miljöproblem såsom dricksvattenföroreningar, övergödning, och bildandet av hypoxi. NO3 i vattenmiljöer avlägsnas från eller behålls i ekosystemet via biologisk assimilering och olika mikrobiella dissimilatoriska processer. Denitrification och anammox är kända för att vara stora mikrobiella borttagningsprocesser för NO3. Denitrifikation är den mikrobiella reduktionen på NO3 till gasformiga N-produkter (NO, N2O, och N2) i kombination med oxidation av en elektrondonator, såsom organiska ämnen, och därigenom minska risken för de ovan nämnda problemen. Anammox producerar också N2 från NO2 och NH4+; därför tar den bort oorganiskt N från ett ekosystem. Omvänt arbetar DNRA för att behålla N i ett ekosystem; det är allmänt accepterat att DNRA utförs främst av fermentativa bakterier eller kemolithoautotrofa bakterier och att de minskar dissimilatoriska NO3 till biotillgängliga och mindre rörliga NH4+.

Studier på DNRA har främst utförts i marina eller flodmynningsekosystem, såsom oceaniska eller flodmynningssediment och vatten, salt eller bräckt kärr jord, och mangrove jord. Kust- eller havsekosystem är viktiga som reservoarer för att avlägsnaNO 3 från terrestra ekosystem, och i tidigare studier har DNRA visats bidra över ett mycket brett spektrum av NO3 borttagning (0–99%)3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18. Vidare har förekomsten av DNRA visats i ett brett spektrum av miljöer inklusive sötvatten miljöer19, ris paddy jordar20, och skogsjordar21. Medan dessa studier har visat att DNRA är potentiellt jämförbart med denitrifikation för NO3 borttagning, är studier som mäter DNRA-aktiviteten fortfarande mycket begränsade jämfört med dem som mäter denitrifikation.

DNRA-frekvensen har utvärderats med hjälp av 15N-märkningstekniker i samband med dataanalys via analytiska eller numeriska modeller. En analytisk lösning för att beräkna DNRA-räntan baseras på ökningen av 15N-anrikningen av NH4+ poolen efter tillsats av 15NO3 som spårämne. 15 år N-märkt NO3 läggs till ett prov och inkuberas, och DNRA-satsen kan sedan beräknas utifrån koncentrations- och isotopkvotens förändringar i NH4+ före och efter en viss tidsperiod. I detta dokument beskrivs en metod för att kvantifiera NH4+ -koncentrationen och isotopförhållandet, som krävs för att beräkna DNRA-satsen, i detalj. I grund och botten, den metod som rapporteras här är en kombination av flera tidigare rapporteradetekniker 22,23,24,25,26 med ändringar läggas till vissa förfaranden. Metoden består av en serie av fem komponentförfaranden: (1) inkubering av ett miljöprov med ändring av en stabil isotopspårare, 15NO3, (2) utvinning och återvinning av NH4+ med hjälp av ett “diffusionsförfarande” med ändringar, (3) persulfat oxidation av NH4+ i provet, bestående av inhemska NH4+och 15NH4+ som härrör från 15NO3 via DNRA-aktivitet, till NO3 och 15NO3, (4) efterföljande mikrobiell omvandling av NO3 och 1 15NO3 till N2O isotopomerer via den modifierade denitrifiermetoden, och (5) kvantifiering av N2O-isotopomerna med hjälp av gaskromatografi–masspektrometri (GC/MS). I följande avsnitt beskrivs först förberedelserna för förfarandena (2) och (4) och därefter beskrivs därefter alla fem komponentförfarandena i detalj.

Protocol

1. Beredning av ett PTFE-kuvert för kvantitativt fångande av gasformiga NH3 Placera en 60-mm bit polytetrafluoreten (PTFE) tejp (25 mm i bredd) på ett litet ark aluminiumfolie (cirka 300 mm x 450 mm i storlek, torkas av med etanol). Aska ett glasfiberfilter (10 mm i diameter med en porstorlek på 2,7 μm) vid 450 °C i 4 h i en muffleugn. Placera glasfiberfiltret lite ovanför mittpunkten på tejpens längre axel (Bild 1a). Spot 20 μL av 0,9-mol/L…

Representative Results

De representativa resultat som presenteras i detta dokument härstammar från 15N-tracing experiment av salt kärr sediment. Den provade saltkärret var nyskapat i efterdyningarna av 2011 Great East Japan Jordbävning i Moune området Kesen-numa stad i Miyagi prefektur, Japan. I september 2017 samlades ytsediment (0–3 cm) upp på två platser i deltidal- och intertidalzonerna. Först, omedelbart efter insamlingen, var sedimentet siktas genom en 4-mm maska för att ta bort vä…

Discussion

Koncentrationen och isotopförhållandet av NH4+ för DNRA-analysen kvantifierades med hjälp av flera metoder. Koncentrationerna och isotopkvoterna på NH4+ mäts i allmänhet separat. Koncentrationen NH4+ mäts typiskt med hjälp av koloromiska metoder inklusive en autoanalyzer4,10,15,16,17. I…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Naoto Tanaka för att ha hjälpt till att datainsamling och utveckla protokollet. Insamlingen av prover stöddes av JSPS KAKENHI Grant Number 17K15286.

Materials

15N-KNO3 SHOKO SCIENCE N15-0197
15N-NH4Cl SHOKO SCIENCE N15-0034
20 mL PP bottle SANPLATEC 61-3210-18 Wide-mouth
Aluminum cap Maruemu 1307-13 No. 20, with hole
Boric acid Wako 021-02195
Centrifuge HITACHI Himac CR21G II
Deoxygenized Gas Pressure & Replace Injector SANSIN INDUSTRIAL IP-12
Disposable cellulose acetate membrane filter ADVANTEC 25CS020AS Pore size 0.22 µm, 25 mm in diameter
Disposable syringe Termo SS-10SZ 10 mL
Disposable syringe Termo SS-01T 1 mL
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (-) NISSUI PHARMACEUTICAL 5913
Gastight syringe VICI Valco Instruments 4075-15010 Series A-2, 100 µL
GC/MS shimadzu GCMS-QP2010ultra
GF/D Whatman 1823-010 10 mm in diameter
Glass vial Maruemu 0501-06 20 mL
Gray butyl rubber stopper Maruemu 1306-03 No.20-S
H2SO4 Wako 192-04696 Guaranteed Reagent
K2S2O8 Wako 169-11891 Nitrogen and Phosphorus analysis grade
KCl Wako 163-03545 Guaranteed Reagent
KNO3 Wako 160-04035 Guaranteed Reagent
NaOH Wako 191-08625 Nitrogen compounds analysis grade
NH4Cl Wako 017-02995 Guaranteed Reagent
Plastic centrifuge tube ASONE 1-3500-22 50 mL, VIO-50BN
Pseudomonas chlororaphis subsp. aureofaciens American Type Culture Collection (ATCC) ATCC 13985 Freeze-dried, the type strain of Pseudomonas aureofaciens
PTFE sealing tape Sigma-Aldrich Z221880 25 mm in width
Reciprocating shaker TAITEC 0000207-000 NR-10
Screw-cap test tube IWAKI 84-0252 11 mL
PTFE-lined cap for test tube IWAKI 84-0262
Tryptic Soy Broth Difco Laboratories 211825

Riferimenti

  1. Gruber, N., Galloway, J. N. An Earth-system perspective of the global nitrogen cycle. Nature. 451 (7176), 293-296 (2008).
  2. Galloway, J. N., et al. The Nitrogen Cascade. Bioscience. 53 (4), 341-356 (2003).
  3. Rysgaard, S., Risgaard-Petersen, N., Sloth, N. P., Caumette, P., Castel, J., Herbert, R. Nitrification, denitrification, and nitrate ammonification in sediments of two coastal lagoons in Southern France. Coastal Lagoon Eutrophication and Anaerobic Processes (C.L.E.AN.). Developments in Hydrobiology. 117, 133-141 (1996).
  4. Christensen, P. B., Rysgaard, S., Sloth, N. P., Dalsgaard, T., Schwærter, S. Sediment mineralization, nutrient fluxes, denitrification and dissimilatory nitrate reduction to ammonium in an estuarine fjord with sea cage trout farms. Aquatic Microbial Ecology. 21, 73-84 (2000).
  5. Tobias, C. R., Anderson, I. C., Canuel, E. A., Macko, S. A. Nitrogen cycling through a fringing marsh-aquifer ecotone. Marine Ecology Progress Series. 210, 25-39 (2001).
  6. An, S. M., Gardner, W. S. Dissimilatory nitrate reduction to ammonium (DNRA) as a nitrogen link, versus denitrification as a sink in a shallow estuary (Laguna Madre/Baffin Bay, Texas). Marine Ecology Progress Series. 237, 41-50 (2002).
  7. Gardner, W. S., et al. Nitrogen fixation and dissimilatory nitrate reduction to ammonium (DNRA) support nitrogen dynamics in Texas estuaries. Limnology & Oceanography. 51 (1), 558-568 (2006).
  8. Preisler, A., et al. Biological and chemical sulfide oxidation in a Beggiatoa inhabited marine sediment. The ISME Journal. 1 (4), 341-353 (2007).
  9. Gardner, W. S., McCarthy, M. J. Nitrogen dynamics at the sediment-water interface in shallow, sub-tropical Florida Bay: why denitrification efficiency may decrease with increased eutrophication. Biogeochemistry. 95 (2-3), 185-198 (2009).
  10. Dong, L. F., et al. Changes in benthic denitrification, nitrate ammonification, and anammox process rates and nitrate and nitrite reductase gene abundances along an estuarine nutrient gradient (the Colne estuary, United Kingdom). Applied and Environmental Microbiology. 75 (10), 3171-3179 (2009).
  11. Koop-Jakobsen, K., Giblin, A. E. The effect of increased nitrate loading on nitrate reduction via denitrification and DNRA in salt marsh sediments. Limnology & Oceanography. 55 (2), 789-802 (2010).
  12. Dong, L. F., et al. Dissimilatory reduction of nitrate to ammonium, not denitrification or anammox, dominates benthic nitrate reduction in tropical estuaries. Limnology & Oceanography. 56 (1), 279-291 (2011).
  13. Fernandes, S. O., Bonin, P. C., Michotey, V. D., Garcia, N., LokaBharathi, P. A. Nitrogen-limited mangrove ecosystems conserve N through dissimilatory nitrate reduction to ammonium. Scientific Reports. 2, 419 (2012).
  14. Behrendt, A., de Beer, D., Stief, P. Vertical activity distribution of dissimilatory nitrate reduction in coastal marine sediments. Biogeosciences. 10 (11), 7509-7523 (2013).
  15. Song, G. D., Liu, S. M., Marchant, H., Kuypers, M. M. M., Lavik, G. Anammox denitrification and dissimilatory nitrate reduction to ammonium in the East China Sea sediment. Biogeosciences. 10 (11), 6851-6864 (2013).
  16. Yin, G., Hou, L., Liu, M., Liu, Z., Gardner, W. S. A novel membrane inlet mass spectrometer method to measure 15NH4+15+ for isotope-enrichment experiments in aquatic ecosystems. Environmental Science & Technology. 48 (16), 9555-9562 (2014).
  17. Zheng, Y., et al. Tidal pumping facilitates dissimilatory nitrate reduction in intertidal marshes. Scientific Reports. 6, 21338 (2016).
  18. Bu, C., et al. Dissimilatory Nitrate Reduction to Ammonium in the Yellow River Estuary: Rates, Abundance, and Community Diversity. Scientific Reports. 7, 6830 (2017).
  19. Scott, J. T., McCarthy, M. J., Gardner, W. S., Doyle, R. D. Denitrification, dissimilatory nitrate reduction to ammonium, and nitrogen fixation along a nitrate concentration gradient in a created freshwater wetland. Biogeochemistry. 87 (1), 99-111 (2008).
  20. Shan, J., et al. Dissimilatory Nitrate Reduction Processes in Typical Chinese Paddy Soils: Rates, Relative Contributions, and Influencing Factors. Environmental Science & Technology. 50 (18), 9972-9980 (2016).
  21. Silver, W. L., Herman, D. J., Firestone, M. K. Dissimilatory nitrate reduction to ammonium in upland tropical forest soils. Ecology. 82 (9), 2410-2416 (2001).
  22. Holmes, R. M., McClelland, J. W., Sigman, D. M., Fry, B., Peterson, B. J. Measuring 15N–NH4+ in marine, estuarine and fresh waters: An adaption of the ammonia diffusion method for samples with low ammonium concentrations. Marine Chemistry. 60 (3-4), 235-243 (1998).
  23. Sigman, D. M., et al. A bacterial method for the nitrogen isotopic analysis of nitrate in seawater and freshwater. Analytical Chemistry. 73 (17), 4145-4153 (2001).
  24. Weigand, M. A., Foriel, J., Barnett, B., Oleynik, S., Sigman, D. M. Updates to instrumentation and protocols for isotopic analysis of nitrate by the denitrifier method. Rapid Communications in Mass Spectrometry. 30 (12), 1365-1383 (2016).
  25. Isobe, K., et al. Analytical techniques for quantifying 15N/14N of nitrate, nitrite, total dissolved nitrogen and ammonium in environmental samples using a gas chromatograph equipped with a quadrupole mass spectrometer. Microbes and Environments. 26 (1), 46-53 (2011).
  26. Miyajima, T., Tanaka, Y., Koile, Y. Determining 15N enrichment of dissolved organic nitrogen in environmental waters by gas chromatography/negative-ion chemical ionization mass spectrometry. Limnology and Oceanography. 3 (3), 164-173 (2005).
  27. Stevens, R. J., Laughlin, R. J., Burns, L. C., Arah, J. R. M., Hood, R. C. Measuring the contributions of nitrification and denitrification to the flux of nitrous oxide from soil. Soil Biology and Biochemistry. 29 (2), 139-151 (1997).
  28. Porubsky, W. P., Velasquez, L. E., Joye, S. B. Nutrient-replete benthic microalgae as a source of dissolved organic carbon to coastal waters. Estuaries and Coasts. 31 (5), 860-876 (2008).
  29. Huygens, D., et al. Mechanisms for retention of bioavailable nitrogen in volcanic rainforest soils. Nature Geoscience. 1 (8), 543-548 (2008).
  30. Rutting, T., Boeckx, P., Muller, C., Klemedtsson, L. Assessment of the importance of dissimilatory nitrate reduction to ammonium for the terrestrial nitrogen cycle. Biogeosciences. 8 (7), 1779-1791 (2011).
  31. Song, B., Lisa, J. A., Tobias, C. R. Linking DNRA community structure and activity in a shallow lagoonal estuarine system. Frontiers in Microbiology. 5, 460 (2014).
  32. Cheng, L., et al. Dissimilatory nitrate reduction processes in sediments of urban river networks: Spatiotemporal variations and environmental implications. Environmental Pollution. 219, 545-554 (2016).
  33. Lisa, J. A., Song, B., Tobias, C. R., Hines, D. E. Genetic and biogeochemical investigation of sedimentary nitrogen cycling communities responding to tidal and seasonal dynamics in Cape Fear River Estuary. Estuarine, Coastal and Shelf Science. 167, A313-A323 (2015).
  34. Deng, F. Y., et al. Dissimilatory nitrate reduction processes and associated contribution to nitrogen removal in sediments of the Yangtze Estuary. Journal of Geophysical Research: Biogeosciences. 120 (8), 1521-1531 (2015).
  35. Tiedje, J. M., Zehnder, A. J. B. . Biology of Anaerobic Microorganisms. , 179-244 (1988).
  36. Tiedje, J. M., Sexstone, A. J., Myrold, D. D., Robinson, J. A. Denitrification: ecological niches, competition and survival. Antonie van Leeuwenhoek. 48, 569-583 (1982).
  37. Hardison, A. K., Algar, C. K., Giblin, A. E., Rich, J. J. Influence of organic carbon and nitrate loading on partitioning between dissimilatory nitrate reduction to ammonium (DNRA) and N2 production. Geochimica et Cosmochimica Acta. , 164 (2015).
  38. Sigman, D. M., et al. Natural abundance-level measurement of the nitrogen isotopic composition of oceanic nitrate: an adaptation of the ammonia diffusion method. Marine Chemistry. 57 (3-4), 227-242 (1997).
  39. Risgaard-Petersen, N., Rysgaard, S., Revsbech, N. P. Combined microdiffusion-hypobromite oxidation method for determining nitrogen-15 isotope in ammonium. Soil Science Society of America Journal. 59 (4), (1995).
  40. Gardner, W. S., Bootsma, H. A., Evans, C., John, P. A. S. Improved chromatographic analysis of 15N:14N ratios in ammonium or nitrate for isotope addition experiments. Marine Chemistry. 48 (3-4), 271-282 (1995).
check_url/it/59562?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Kuroiwa, M., Fukushima, K., Hashimoto, K., Senga, Y., Sato, T., Katsuyama, C., Suwa, Y. Measurement of the Potential Rates of Dissimilatory Nitrate Reduction to Ammonium Based on 14NH4+/15NH4+ Analyses via Sequential Conversion to N2O. J. Vis. Exp. (164), e59562, doi:10.3791/59562 (2020).

View Video