En serie metoder för att fastställa den potentiella DNRA-frekvensen baserat på 14NH4+/15NH4+ analyser tillhandahålls i detalj. NH4+ omvandlas till N2O via flera steg och analyseras med hjälp av quadrupole gaskromatografi–masspektrometri.
Vikten av att förstå nitrats öde (NO3−), som är den dominerande N-arten som överförs från terrestra till akvatiska ekosystem, har ökat eftersom de globala kvävebelastningarna har ökat dramatiskt efter industrialiseringen. Dissimilerande nitratreduktion till ammonium (DNRA) och denitrifikation är båda mikrobiella processer som använder NO3− för respiration. Jämfört med denitrifikationen har kvantitativa bestämningar av DNRA-verksamheten endast genomförts i begränsad omfattning. Detta har lett till en otillräcklig förståelse för DNRA:s betydelse i NO3− transformationer och de reglerande faktorerna i denna process. Målet med detta dokument är att tillhandahålla ett detaljerat förfarande för mätning av den potentiella DNRA-satsen i miljöprover. I korthet kan den potentiella DNRA-takten beräknas från den 15N-märkta ammonium (15NH4+) ackumulationshastighet i 15NO3− tillsatt inkubation. Fastställandet av de 14NH4+ och 15NH4+ koncentrationer som beskrivs i detta dokument består av följande steg. Först extraheras NH4+ i provet och fastnar på ett surt glasfilter som ammoniumsalt. För det andra eluteras och oxideras den fångade ammonium till NO3− via persulfatoxidation. För det tredje omvandlas NO3− till N2O via en N2O-reduktas-bristfällig denitrifier. Slutligen analyseras den konverterade N2O med hjälp av en tidigare utvecklad quadrupole gaskromatografi–masspektrometri system. Vi tillämpade denna metod på saltkärrsediment och beräknade deras potentiella DNRA-satser, vilket visar att de föreslagna förfarandena möjliggör en enkel och snabbare bestämning jämfört med tidigare beskrivna metoder.
Den artificiella syntesen av kvävegödselmedel och dess utbredda tillämpning har kraftigt stört den globala kvävecykeln. Man uppskattar att överföringen av reaktivt kväve från land- till kustsystem har fördubblats sedan förindustriella tider1. En betydande del av gödselmedel som tillämpas på ett visst fält tvättas bort från jorden till floder eller grundvatten, främst som NO3− 2. Detta kan orsaka miljöproblem såsom dricksvattenföroreningar, övergödning, och bildandet av hypoxi. NO3− i vattenmiljöer avlägsnas från eller behålls i ekosystemet via biologisk assimilering och olika mikrobiella dissimilatoriska processer. Denitrification och anammox är kända för att vara stora mikrobiella borttagningsprocesser för NO3−. Denitrifikation är den mikrobiella reduktionen på NO3− till gasformiga N-produkter (NO, N2O, och N2) i kombination med oxidation av en elektrondonator, såsom organiska ämnen, och därigenom minska risken för de ovan nämnda problemen. Anammox producerar också N2 från NO2− och NH4+; därför tar den bort oorganiskt N från ett ekosystem. Omvänt arbetar DNRA för att behålla N i ett ekosystem; det är allmänt accepterat att DNRA utförs främst av fermentativa bakterier eller kemolithoautotrofa bakterier och att de minskar dissimilatoriska NO3− till biotillgängliga och mindre rörliga NH4+.
Studier på DNRA har främst utförts i marina eller flodmynningsekosystem, såsom oceaniska eller flodmynningssediment och vatten, salt eller bräckt kärr jord, och mangrove jord. Kust- eller havsekosystem är viktiga som reservoarer för att avlägsnaNO 3− från terrestra ekosystem, och i tidigare studier har DNRA visats bidra över ett mycket brett spektrum av NO3− borttagning (0–99%)3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18. Vidare har förekomsten av DNRA visats i ett brett spektrum av miljöer inklusive sötvatten miljöer19, ris paddy jordar20, och skogsjordar21. Medan dessa studier har visat att DNRA är potentiellt jämförbart med denitrifikation för NO3− borttagning, är studier som mäter DNRA-aktiviteten fortfarande mycket begränsade jämfört med dem som mäter denitrifikation.
DNRA-frekvensen har utvärderats med hjälp av 15N-märkningstekniker i samband med dataanalys via analytiska eller numeriska modeller. En analytisk lösning för att beräkna DNRA-räntan baseras på ökningen av 15N-anrikningen av NH4+ poolen efter tillsats av 15NO3− som spårämne. 15 år N-märkt NO3− läggs till ett prov och inkuberas, och DNRA-satsen kan sedan beräknas utifrån koncentrations- och isotopkvotens förändringar i NH4+ före och efter en viss tidsperiod. I detta dokument beskrivs en metod för att kvantifiera NH4+ -koncentrationen och isotopförhållandet, som krävs för att beräkna DNRA-satsen, i detalj. I grund och botten, den metod som rapporteras här är en kombination av flera tidigare rapporteradetekniker 22,23,24,25,26 med ändringar läggas till vissa förfaranden. Metoden består av en serie av fem komponentförfaranden: (1) inkubering av ett miljöprov med ändring av en stabil isotopspårare, 15NO3−, (2) utvinning och återvinning av NH4+ med hjälp av ett “diffusionsförfarande” med ändringar, (3) persulfat oxidation av NH4+ i provet, bestående av inhemska NH4+och 15NH4+ som härrör från 15NO3− via DNRA-aktivitet, till NO3− och 15NO3−, (4) efterföljande mikrobiell omvandling av NO3− och 1 15NO3− till N2O isotopomerer via den modifierade denitrifiermetoden, och (5) kvantifiering av N2O-isotopomerna med hjälp av gaskromatografi–masspektrometri (GC/MS). I följande avsnitt beskrivs först förberedelserna för förfarandena (2) och (4) och därefter beskrivs därefter alla fem komponentförfarandena i detalj.
Koncentrationen och isotopförhållandet av NH4+ för DNRA-analysen kvantifierades med hjälp av flera metoder. Koncentrationerna och isotopkvoterna på NH4+ mäts i allmänhet separat. Koncentrationen NH4+ mäts typiskt med hjälp av koloromiska metoder inklusive en autoanalyzer4,10,15,16,17. I…
The authors have nothing to disclose.
Vi tackar Naoto Tanaka för att ha hjälpt till att datainsamling och utveckla protokollet. Insamlingen av prover stöddes av JSPS KAKENHI Grant Number 17K15286.
15N-KNO3 | SHOKO SCIENCE | N15-0197 | |
15N-NH4Cl | SHOKO SCIENCE | N15-0034 | |
20 mL PP bottle | SANPLATEC | 61-3210-18 | Wide-mouth |
Aluminum cap | Maruemu | 1307-13 | No. 20, with hole |
Boric acid | Wako | 021-02195 | |
Centrifuge | HITACHI | Himac CR21G II | |
Deoxygenized Gas Pressure & Replace Injector | SANSIN INDUSTRIAL | IP-12 | |
Disposable cellulose acetate membrane filter | ADVANTEC | 25CS020AS | Pore size 0.22 µm, 25 mm in diameter |
Disposable syringe | Termo | SS-10SZ | 10 mL |
Disposable syringe | Termo | SS-01T | 1 mL |
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (-) | NISSUI PHARMACEUTICAL | 5913 | |
Gastight syringe | VICI Valco Instruments | 4075-15010 | Series A-2, 100 µL |
GC/MS | shimadzu | GCMS-QP2010ultra | |
GF/D | Whatman | 1823-010 | 10 mm in diameter |
Glass vial | Maruemu | 0501-06 | 20 mL |
Gray butyl rubber stopper | Maruemu | 1306-03 | No.20-S |
H2SO4 | Wako | 192-04696 | Guaranteed Reagent |
K2S2O8 | Wako | 169-11891 | Nitrogen and Phosphorus analysis grade |
KCl | Wako | 163-03545 | Guaranteed Reagent |
KNO3 | Wako | 160-04035 | Guaranteed Reagent |
NaOH | Wako | 191-08625 | Nitrogen compounds analysis grade |
NH4Cl | Wako | 017-02995 | Guaranteed Reagent |
Plastic centrifuge tube | ASONE | 1-3500-22 | 50 mL, VIO-50BN |
Pseudomonas chlororaphis subsp. aureofaciens | American Type Culture Collection (ATCC) | ATCC 13985 | Freeze-dried, the type strain of Pseudomonas aureofaciens |
PTFE sealing tape | Sigma-Aldrich | Z221880 | 25 mm in width |
Reciprocating shaker | TAITEC | 0000207-000 | NR-10 |
Screw-cap test tube | IWAKI | 84-0252 | 11 mL |
PTFE-lined cap for test tube | IWAKI | 84-0262 | |
Tryptic Soy Broth | Difco Laboratories | 211825 |