Summary

En mus modell av vascularized Heterotopic milt transplantasjon for å studere milt Cell Biology og Transplant immunitet

Published: June 11, 2019
doi:

Summary

Denne protokollen detaljer kirurgiske trinn av en mus modell av vascularized heterotopic milt transplantasjon, en teknisk utfordrende modell som kan tjene som et kraftig verktøy i å studere skjebnen og lang levetid på milt celler, mekanismene av distinkte milt celle populasjoner i sykdomsprogresjon, og transplantasjon immunitet.

Abstract

Milten er en unik lymfoide organ som spiller en avgjørende rolle i homeostase av immun-og blodkreft systemer. Pasienter som har gjennomgått splenektomi uavhengig av fremskynde årsaker er tilbøyelige til å utvikle en overveldende post-splenektomi infeksjon og oppleve økt risiko for dyp venetrombose og ondartet. Nylig Epidemiologiske studier indikerte at splenektomi kan være forbundet med forekomsten av hjerte-og karsykdommer, noe som tyder på at fysiologiske funksjoner av milten ennå ikke er fullstendig anerkjent. Her introduserer vi en mus modell av vascularized heterotopic milt transplantasjon, som ikke bare kan utnyttes til å studere funksjonen og atferdsdata aktivitet av milt immun celle undergrupper i ulike biologiske prosesser, men også kan være et kraftig verktøy for å teste terapeutisk potensialet av milt transplantasjon i visse sykdommer. De viktigste kirurgiske trinnene i denne modellen inkluderer donor milt innhøsting, fjerning av mottakeren innfødte milt, og milt pode revaskularisering. Ved hjelp av congenic mus stammer (f. eks, mus med CD 45.1/CD 45.2 bakgrunner), observerte vi at etter syngeneic transplantasjon, både donor-avledet milt lymfocytter og myelogen celler migrert ut av pode så tidlig som postoperativ dag 1, samtidig med tilstrømningen av flere typer mottaker celler, og dermed generere en unik Chimera.  Til tross for relativt utfordrende teknikker, kan denne fremgangsmåten utføres med > 90% suksess rate. Denne modellen gjør det mulig å spore skjebnen, lang levetid, og funksjon av splenocytes under steady state og i en sykdom innstilling etter en milt transplantasjon, og dermed tilbyr en flott mulighet til å oppdage den distinkte rolle for milt-avledet immunceller i ulike sykdoms prosesser.

Introduction

Milten er den største sekundære lymfoide organ i kroppen og er kritisk i immun-og blodkreft systemer. Dens funksjoner er hovedsakelig utført av to morfologisk distinkte rom, den røde massen og den hvite Pulp1. Den røde massen er en tredimensjonal meshwork av venøs bihulene og milt snorer som består av retikulære fibre, retikulære celler, og tilhørende makrofager. Denne unike strukturen gjør at den røde massen til å fungere som en effektiv blod filter som fjerner fremmede materialer og gamle eller ødelagte erytrocytter. Den hvite massen inneholder hårsekker, marginal sone, og periarteriolar lymfoide hylser (PALS) og er et viktig sted for antigen fangst og prosessering, lymfocytter homing, transformasjon, spredning, og modning2. Likevel, milten har ofte blitt betraktet som en unnværlig organ fordi andre lymfatisk organer, som lymfeknuter, kan også utføre noen av sine funksjoner og tap av milt ikke fører vanligvis til døden. Splenektomi har derfor vært mye utført som en terapeutisk metode for pasienter med milt Kader eller godartet Hematologic sykdommer3. Men pasienter med splenektomi står overfor en rekke langsiktige komplikasjoner. Bakterielle infeksjoner er de mest anerkjente komplikasjoner av splenektomi. Nylig har den overveldende post-splenektomi sepsis blitt anerkjent som en intensiv komplikasjon av splenektomi forbundet med en høy dødelighet6. Videre viser de siste epidemiologiske studiene at splenektomi kan knyttes til forekomsten av hjerte-og karsykdommer, noe som tyder på at ytterligere fysiologiske funksjoner i milten gjenstår å utforskes7,8.

Både milt autotransplantation og milt allografting har blitt utnyttet i klinikken. For tiden, milt autotransplantation av implanting deler av milt vev i poser opprettet i større segl regnes som den eneste muligheten for å bevare milt funksjon etter traumatisk splenektomi9,10. Imidlertid er effekten av denne operasjonen diskuteres som post-kirurgi komplikasjoner som aseptisk nekrose av milt vev og små tarm obstruksjon på grunn av postoperativ adhesjon kan forekomme11. Milt allografting er involvert i multivisceral transplantasjon12. Kliniske bevis fra multivisceral transplantasjon tyder på at milten allografting kan spille en beskyttende rolle i små tarm allograft avvisning uten å forårsake pode-versus-host sykdom (GVHD)12. Likevel litteratur om den gunstige effekten av milt allografting som en del av multivisceral transplantasjon er fortsatt begrenset, og de underliggende mekanismene gjenstår å bli definert. I 2006 rapporterte Yair Reisner et al. at transplantere gris embryonale milt vev som ikke har T-celler til mus kunne kurere hemofili A, en genetisk sykdom uten å forårsake GVHD13, som støtter at milt transplantasjon holder terapeutisk løfte i visse sykdommer. Derfor er det behov for videre undersøkelser om det terapeutiske potensialet for milt transplantasjon.

Animal modeller av milt transplantasjon er verdifulle for å utforske verdsatt funksjon av milt-avledet immunceller i sykdomsprogresjon, samt å teste den potensielle terapeutiske effekten av milt transplantasjon. Det er dokumentert at de har blitt sett på som en av de eksperimentelle hel miltenmodellene siden tidlig på 1900-tallet. I 1969, Coburn Richard J. og Lee et al. detaljert teknikken for milt transplantasjon hos rotter15,16. Flere nylig, Swirski FK et al. beskrev en mus modell av milt transplantasjon17. Sammenlignet med rotte modeller, mus modeller av milt transplantasjon er mer attraktive på grunn av sine mange iboende fordeler. Ved å bruke en musemodell, kan vi for eksempel få tilgang til et omfattende utvalg av reagenser som ikke er tilgjengelige for rotte modellene. Videre, ved å bruke congenic mus (f. eks, mus med CD 45.1/CD 45.2 bakgrunn), en syngeneic milt transplantasjon gjør det mulig å spore skjebnen, lang levetid, og funksjon av splenocytes18. Basert på arbeidet med Swirski FK et al.17, vi videre etablert denne forenklet og forbedret protokoll for milt transplantasjon i mus. Protokollen beskrevet nedenfor kombinerer både pålitelighet og gjennomførbarhet på en standardisert måte og kan benyttes som et verktøy for å studere milt biologi og transplantasjon immunitet.

Protocol

Alle prosedyrer og dyr bruk i denne studien ble utført i henhold til protokoller godkjent av Northwestern University intern Animal Care og use Committee (IACUC). I denne studien, 8 til 10 uker gamle mannlige CD 45.2 og CD 45.1 mus (både på BALB/c bakgrunn, fra Jackson laboratorium) ble brukt som milt donorer og mottakere, henholdsvis å lage syngeneic milt transplantasjon modeller. Alle dyrene ble plassert i det sterile miljøet i dyret fasiliteter ved Northwestern University. Øye smøremiddelet ble påført alle mus…

Representative Results

Hele prosedyren for mus milt transplantasjon kan gjennomføres innen 90 min av erfarne microsurgeons. Vårt laboratorium har utført over 100 milt transplantasjon hos mus. Suksessen rate er over 90%, som definert av overlevelse av både mottaker mus og milt pode til post-operative dag (POD) 1 eller POD 7 (vår studie endepunkt). Overlevelsen av milten pode ble bekreftet av makroskopisk utseende og flyt flowcytometri analyse av splenocytes. Basert på vår erfaring, er flyt flowcytometri a…

Discussion

Overbevisende bevis tyder på at milt-avledet monocytter spiller en viktig rolle i sterile inflammatoriske prosesser som aterosklerose19, akutt iskemiske hjerne20 eller lungeskade18, samt hjerte-i/R skade og remodeling21,22,23. Disse rapportene markere under-anerkjennelse rolle milten i mange kroniske sykdommer, hvorav hjerte-og karsykdommer er en viktig en …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfattere takker Northwestern University omfattende Transplant Center og Feinberg School of Medicine Research Cores program for ressurs-og finansierings støtte. Nærmere bestemt, flyt flowcytometri og histologi tjenester ble levert av Northwestern University Flow flowcytometri Core Facility og Mouse histologi og bestemmelse av fenotype Laboratory, henholdsvis, som begge er støttet av NCI P30-CA060553 tildelt Robert H Lurie omfattende Cancer Center. Vi takker Mr. Nate Esparza for korrekturlesing dette manuskriptet.

Materials

Ketamine Wyeth 206205-01
Xylazine Lloyd Laboratories 139-236
Heparin solution Abraxis Pharmaceutical Products 504031
Injection grade normal saline Hospira Inc. NDC 0409-4888-20
70% Ethanol Pharmco Products Inc. 111000140
ThermoCare Small Animal ICU System Thermocare, Inc.
Adson Forceps Roboz Surgical Instruments RS-5230
Derf Needle Holder Roboz Surgical Instruments RS-7822
Extra Fine Micro Dissecting Scissors Roboz Surgical Instruments RS-5881
Micro-clip Roboz Surgical Instruments RS-5420
7-0 silk Braintree Scientific SUT-S 103
11-0 nylon on 4-mm (3/8) needle Sharpoint DR4 AK-2119
Ms CD45.2 antibody BD Bioscience 553772
Ms CD45.1 antibody BD Bioscience 553776
Ms CD11b antibody BD Bioscience 557657
Ms B220 antibody BD Bioscience 553089
Ms Ly6C antibody eBioscience 48-5932-80
Ms Ly6G antibody BD Bioscience 561236
Ms F4/80 antibody BD Bioscience 565614
Ms CD11c antibody BD Bioscience 558079
Ms CD3 antibody eBioscience 48-0032-82
Ms CD4 antibody BD Bioscience 552051
Ms CD8 antibody BD Bioscience 563786
LIVE/DEAD™ Fixable Violet Dead Cell Stain Kit Thermo Fisher L34955

Riferimenti

  1. Cesta, M. F. Normal structure, function, and histology of the spleen. Toxicologic Pathology. 34 (5), 455-465 (2006).
  2. Mebius, R. E., Kraal, G. Structure and function of the spleen. Nature Reviews Immunology. 5 (8), 606-616 (2005).
  3. Misiakos, E. P., Bagias, G., Liakakos, T., Machairas, A. Laparoscopic splenectomy: Current concepts. World Journal of Gastrointestinal Endoscopy. 9 (9), 428-437 (2017).
  4. Kristinsson, S. Y., Gridley, G., Hoover, R. N., Check, D., Landgren, O. Long-term risks after splenectomy among 8,149 cancer-free American veterans: a cohort study with up to 27 years follow-up. Haematologica. 99 (2), 392-398 (2014).
  5. Thai, L. H., et al. Long-term complications of splenectomy in adult immune thrombocytopenia. Medicine (Baltimore). 95 (48), e5098 (2016).
  6. Sinwar, P. D. Overwhelming post splenectomy infection syndrome – review study. International Journal of Surgery. 12 (12), 1314-1316 (2014).
  7. Rorholt, M., Ghanima, W., Farkas, D. K., Norgaard, M. Risk of cardiovascular events and pulmonary hypertension following splenectomy – a Danish population-based cohort study from 1996-2012. Haematologica. 102 (8), 1333-1341 (2017).
  8. Crary, S. E., Buchanan, G. R. Vascular complications after splenectomy for hematologic disorders. Blood. 114 (14), 2861-2868 (2009).
  9. Di Carlo, I., Pulvirenti, E., Toro, A. A new technique for spleen autotransplantation. Surgical Innovation. 19 (2), 156-161 (2012).
  10. Holdsworth, R. J. Regeneration of the spleen and splenic autotransplantation. British Journal of Surgery. 78 (3), 270-278 (1991).
  11. Tzoracoleftherakis, E., Alivizatos, V., Kalfarentzos, F., Androulakis, J. Complications of splenic tissue reimplantation. Annals of the Royal College of Surgeons of England. 73 (2), 83-86 (1991).
  12. Kato, T., et al. Transplantation of the spleen: effect of splenic allograft in human multivisceral transplantation. Annals of Surgery. 246 (3), 436-444 (2007).
  13. Aronovich, A., et al. Correction of hemophilia as a proof of concept for treatment of monogenic diseases by fetal spleen transplantation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (50), 19075-19080 (2006).
  14. Cohen, E. A. Splenosis; review and report of subcutaneous splenic implant. Archives of surgery. 69 (6), 777-784 (1954).
  15. Coburn, R. J. Spleen transplantation in the rat. Transplantation. 8 (1), 86-88 (1969).
  16. Lee, S., Orloff, M. J. A technique for splenic transplantation in the rat. Surgery. 65 (3), 436-439 (1969).
  17. Swirski, F. K., et al. Identification of splenic reservoir monocytes and their deployment to inflammatory sites. Science. 325 (5940), 612-616 (2009).
  18. Hsiao, H. M., et al. Spleen-derived classical monocytes mediate lung ischemia-reperfusion injury through IL-1beta. Journal of Clinical Investigation. 128 (7), 2833-2847 (2018).
  19. Robbins, C. S., et al. Extramedullary hematopoiesis generates Ly-6C(high) monocytes that infiltrate atherosclerotic lesions. Circulation. 125 (2), 364-374 (2012).
  20. Kim, E., Yang, J., Beltran, C. D., Cho, S. Role of spleen-derived monocytes/macrophages in acute ischemic brain injury. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 34 (8), 1411-1419 (2014).
  21. Bronte, V., Pittet, M. J. The spleen in local and systemic regulation of immunity. Immunity. 39 (5), 806-818 (2013).
  22. Wang, N. P., et al. Recruitment of macrophages from the spleen contributes to myocardial fibrosis and hypertension induced by angiotensin II. Journal of the Renin-Angiotensin-Aldosterone System. 18 (2), 1470320317706653 (2017).
  23. Tian, Y., et al. The spleen contributes importantly to myocardial infarct exacerbation during post-ischemic reperfusion in mice via signaling between cardiac HMGB1 and splenic RAGE. Basic Research in Cardiology. 111 (6), 62 (2016).
  24. Jang, Y., et al. Cutting Edge: Check Your Mice-A Point Mutation in the Ncr1 Locus Identified in CD45.1 Congenic Mice with Consequences in Mouse Susceptibility to Infection. Journal of Immunology. 200 (6), 1982-1987 (2018).
check_url/it/59616?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Wang, J., Qiu, L., Fernandez, R., Yeap, X. Y., Lin, C. X., Zhang, Z. J. A Mouse Model of Vascularized Heterotopic Spleen Transplantation for Studying Spleen Cell Biology and Transplant Immunity. J. Vis. Exp. (148), e59616, doi:10.3791/59616 (2019).

View Video