Summary

En muse model af vascularized Heterotopic milt transplantation for at studere milt cellebiologi og transplantations immunitet

Published: June 11, 2019
doi:

Summary

Denne protokol beskriver de kirurgiske trin af en musemodel af vaskulariseret heterotop milt transplantation, en teknisk udfordrende model, der kan tjene som et kraftfuldt værktøj til at studere skæbne og levetiden af milt celler, mekanismerne i distinkte milt cellepopulationer i sygdomsprogression og transplantations immunitet.

Abstract

Milten er et unikt lymfoid organ, der spiller en afgørende rolle i homøostase af immun-og hæmatopoietiske systemer. Patienter, der har gennemgået splenektomi uanset udfældende årsager, er tilbøjelige til at udvikle en overvældende post-splenektomi infektion og opleve øget risiko for dyb venetrombose og maligniteter. For nylig indikerede epidemiologiske undersøgelser, at splenektomi kan være forbundet med forekomsten af hjerte-kar-sygdomme, hvilket tyder på, at de fysiologiske funktioner i milten endnu ikke er fuldt ud anerkendt. Her introducerer vi en musemodel af vaskulariseret heterotop milt transplantation, som ikke kun kan udnyttes til at studere funktion og adfærdsmæssige aktivitet af spleniske immuncelle undersæt i forskellige biologiske processer, men også kan være et kraftfuldt værktøj til at teste det terapeutiske potentiale af milt transplantation i visse sygdomme. De vigtigste kirurgiske trin i denne model omfatter donor milt høst, fjernelse af recipient indfødte milt, og milt graft revascularization. Ved hjælp af kongeniske muse stammer (f. eks. mus med CD 45.1/CD 45.2 baggrunde) observerede vi, at både donor-afledte spleniske lymfocytter og myeloide celler, der blev migreret ud af transplantatet så tidligt som postoperative dag 1, samtidig med tilstrømningen af flere typer af modtager celler, hvilket skaber en unik Chimera.  På trods af relativt udfordrende teknikker, denne procedure kan udføres med > 90% succesrate. Denne model gør det muligt at spore den skæbne, levetid, og funktion af splenocytes under Steady State og i en sygdom indstilling efter en milt transplantation, hvilket giver en stor mulighed for at opdage den særskilte rolle for milt-afledte immunceller i forskellige sygdomsprocesser.

Introduction

Milten er den største sekundære lymfoide organ i kroppen og er kritisk i immun og hæmatopoietiske systemer. Dens funktioner er primært udført af to morfologisk adskilte rum, den røde pulp og den hvide pulp1. Den røde pulp er en tredimensionel trabekelværket af venøse bihuler og milt ledninger, der består af rekulære fibre, rekulære celler, og tilhørende makrofager. Denne unikke struktur gør det muligt for den røde Pulp at fungere som et effektivt blod filter, der fjerner fremmede materialer og gamle eller beskadigede erythrocytter. Den hvide pulp omfatter follikler, marginal zone, og periarteriolar lymfoide skeder (Pals) og er et vigtigt sted for antigen fældefangst og forarbejdning, lymfocyt homing, transformation, proliferation, og modning2. Ikke desto mindre, milten har almindeligvis været betragtet som en udgivende organ, fordi andre lymfe organer, såsom lymfeknuder, kan også udføre nogle af sine funktioner og tabet af milt ikke normalt fører til døden. Splenektomi er derfor blevet bredt udført som en terapeutisk metode til patienter med milt skade eller benign hæmatologiske sygdomme3. Men, patienter med splenektomi står over for en række langsigtede komplikationer. Bakterielle infektioner er de bedst kendte komplikationer af splenektomy4,5. For nylig, den overvældende post-splenektomi sepsis er blevet anerkendt som en intensiv komplikation af splenektomi forbundet med en høj dødelighed6. Desuden tyder nylige epidemiologiske undersøgelser på, at splenektomi kan være forbundet med forekomsten af hjerte-kar-sygdomme, hvilket tyder på, at yderligere fysiologiske funktioner i milten stadig skal udforskes med7,8.

Både milt autotransplantation og milt allotransplantation er blevet udnyttet i klinikken. I øjeblikket anses milt autotransplantation ved at implanterer sektioner af splenisk væv i poser, der er skabt i Greater omentum, som den eneste mulighed for at bevare splenisk funktion efter traumatisk splenektomi9,10. Men, effekten af denne operation kan diskuteres som post-kirurgi komplikationer som aseptisk nekrose af milt væv og små tarmobstruktion på grund af postoperative klæbestoffer kan forekomme11. Milt allotransplantation er involveret i multi visceral transplantation12. Klinisk evidens fra multi visceral transplantation tyder på, at milt allotransplantation kan spille en beskyttende rolle i små tarm allograft afvisning uden at forårsage graft-versus-Host sygdom (GVHD)12. Men litteraturen om den gavnlige virkning af milt allotransplantation som bestanddel af multi visceral transplantation er stadig begrænset, og de underliggende mekanismer mangler at blive defineret. I 2006, Yair Reisner et al. rapporterede, at transplantations svin embryonale milt væv, der ikke har T-celler til mus kan helbrede hæmofili A, en genetisk sygdom uden at forårsage GVHD13, støtte, at milt transplantation holder terapeutiske løfte i visse sygdomme. Der er derfor behov for yderligere undersøgelser af det terapeutiske potentiale ved milt transplantation.

Dyremodeller af milt transplantation er værdifulde til at udforske den upåskønnede funktion af milt-afledte immunceller i sygdomsprogression samt til at teste den potentielle terapeutiske virkning af milt transplantation. Eksperimentelle hele milt transplantations modeller er blevet dokumenteret siden begyndelsen af 1900-tallet, som revideret af Cohen14. I 1969, Coburn Richard J. og Lee et al. detaljeret teknikken til milt transplantation i rotter15,16. For nylig beskrev Swirski FK et al. en musemodel af milt transplantation17. Sammenlignet med rotte modeller, musemodeller af milt transplantation er mere attraktive på grund af dens mange iboende fordele. For eksempel ved at udnytte en musemodel, kan vi få adgang til en ekspansiv række reagenser utilgængelige for at af rotte modeller. Ved at bruge kongeniske mus (f. eks. mus med CD 45.1/CD 45.2 baggrund) gør en syngeneisk milt transplantation det muligt at spore den skæbne, levetid og funktion af splenocytter18. Baseret på det arbejde, som Swirski FK et al.17, vi yderligere etableret denne forenklede og forbedrede protokol af milt transplantation i mus. Den protokol, der er beskrevet nedenfor kombinerer både pålidelighed og gennemførlighed på en standardiseret måde og kan udnyttes som et redskab til at studere milt biologi og transplantation immunitet.

Protocol

Alle procedurer og dyre brug i denne undersøgelse blev udført i henhold til protokoller godkendt af det nordvestlige Universitets interne udvalg for dyrepasning og-brug (IACUC). I denne undersøgelse, 8 til 10 uge gamle mandlige CD 45.2 og CD 45.1 mus (både på Balb/c baggrund, fra Jackson laboratorium) blev brugt som milt donorer og recipienter, henholdsvis at skabe murinsynogene milt transplantation modeller. Alle dyr blev anbragt i det sterile miljø i dyre faciliteterne på Northwestern University. Øjen smøremid…

Representative Results

Hele proceduren for mus milt transplantation kan afsluttes inden for 90 min af erfarne mikrokirurger. Vores laboratorium har udført over 100 milt transplantationer i mus. Succesraten er over 90%, som defineret ved overlevelse af både modtager mus og milt transplantatet til postoperative dag (POD) 1 eller POD 7 (vores undersøgelse Endpoint). Overlevelsen af milt transplantatet blev bekræftet af splenocytterne ved makroskopisk udseende og flow cytometri analyse. Baseret på vores erfari…

Discussion

Overbevisende beviser antyder, at milt-afledte monocytter spiller en vigtig rolle i sterile inflammatoriske processer såsom åreforkalkning19, akut iskæmisk hjerne20 eller lungeskade18, samt myokardial I/R skade og remodeling21,22,23. Disse rapporter fremhæver under-anerkendelse rolle milten i mange kroniske sygdomme, hvoraf hjerte-kar-sygdom er en vigtig…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfattere tak Northwestern University omfattende transplantations Center og Feinberg School of Medicine Research Cores program for ressource-og finansieringsstøtte. Specifikt, flow cytometry og histologi tjenester blev leveret af Northwestern University flow cytometry Core Facility og Mouse histologi og phenotyping laboratorium, som begge er støttet af NIC P30-CA060553 tildelt Robert H Lurie Comprehensive Cancer Center. Vi takker hr. Nate Esparza for korrekturlæsning af dette manuskript.

Materials

Ketamine Wyeth 206205-01
Xylazine Lloyd Laboratories 139-236
Heparin solution Abraxis Pharmaceutical Products 504031
Injection grade normal saline Hospira Inc. NDC 0409-4888-20
70% Ethanol Pharmco Products Inc. 111000140
ThermoCare Small Animal ICU System Thermocare, Inc.
Adson Forceps Roboz Surgical Instruments RS-5230
Derf Needle Holder Roboz Surgical Instruments RS-7822
Extra Fine Micro Dissecting Scissors Roboz Surgical Instruments RS-5881
Micro-clip Roboz Surgical Instruments RS-5420
7-0 silk Braintree Scientific SUT-S 103
11-0 nylon on 4-mm (3/8) needle Sharpoint DR4 AK-2119
Ms CD45.2 antibody BD Bioscience 553772
Ms CD45.1 antibody BD Bioscience 553776
Ms CD11b antibody BD Bioscience 557657
Ms B220 antibody BD Bioscience 553089
Ms Ly6C antibody eBioscience 48-5932-80
Ms Ly6G antibody BD Bioscience 561236
Ms F4/80 antibody BD Bioscience 565614
Ms CD11c antibody BD Bioscience 558079
Ms CD3 antibody eBioscience 48-0032-82
Ms CD4 antibody BD Bioscience 552051
Ms CD8 antibody BD Bioscience 563786
LIVE/DEAD™ Fixable Violet Dead Cell Stain Kit Thermo Fisher L34955

Riferimenti

  1. Cesta, M. F. Normal structure, function, and histology of the spleen. Toxicologic Pathology. 34 (5), 455-465 (2006).
  2. Mebius, R. E., Kraal, G. Structure and function of the spleen. Nature Reviews Immunology. 5 (8), 606-616 (2005).
  3. Misiakos, E. P., Bagias, G., Liakakos, T., Machairas, A. Laparoscopic splenectomy: Current concepts. World Journal of Gastrointestinal Endoscopy. 9 (9), 428-437 (2017).
  4. Kristinsson, S. Y., Gridley, G., Hoover, R. N., Check, D., Landgren, O. Long-term risks after splenectomy among 8,149 cancer-free American veterans: a cohort study with up to 27 years follow-up. Haematologica. 99 (2), 392-398 (2014).
  5. Thai, L. H., et al. Long-term complications of splenectomy in adult immune thrombocytopenia. Medicine (Baltimore). 95 (48), e5098 (2016).
  6. Sinwar, P. D. Overwhelming post splenectomy infection syndrome – review study. International Journal of Surgery. 12 (12), 1314-1316 (2014).
  7. Rorholt, M., Ghanima, W., Farkas, D. K., Norgaard, M. Risk of cardiovascular events and pulmonary hypertension following splenectomy – a Danish population-based cohort study from 1996-2012. Haematologica. 102 (8), 1333-1341 (2017).
  8. Crary, S. E., Buchanan, G. R. Vascular complications after splenectomy for hematologic disorders. Blood. 114 (14), 2861-2868 (2009).
  9. Di Carlo, I., Pulvirenti, E., Toro, A. A new technique for spleen autotransplantation. Surgical Innovation. 19 (2), 156-161 (2012).
  10. Holdsworth, R. J. Regeneration of the spleen and splenic autotransplantation. British Journal of Surgery. 78 (3), 270-278 (1991).
  11. Tzoracoleftherakis, E., Alivizatos, V., Kalfarentzos, F., Androulakis, J. Complications of splenic tissue reimplantation. Annals of the Royal College of Surgeons of England. 73 (2), 83-86 (1991).
  12. Kato, T., et al. Transplantation of the spleen: effect of splenic allograft in human multivisceral transplantation. Annals of Surgery. 246 (3), 436-444 (2007).
  13. Aronovich, A., et al. Correction of hemophilia as a proof of concept for treatment of monogenic diseases by fetal spleen transplantation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (50), 19075-19080 (2006).
  14. Cohen, E. A. Splenosis; review and report of subcutaneous splenic implant. Archives of surgery. 69 (6), 777-784 (1954).
  15. Coburn, R. J. Spleen transplantation in the rat. Transplantation. 8 (1), 86-88 (1969).
  16. Lee, S., Orloff, M. J. A technique for splenic transplantation in the rat. Surgery. 65 (3), 436-439 (1969).
  17. Swirski, F. K., et al. Identification of splenic reservoir monocytes and their deployment to inflammatory sites. Science. 325 (5940), 612-616 (2009).
  18. Hsiao, H. M., et al. Spleen-derived classical monocytes mediate lung ischemia-reperfusion injury through IL-1beta. Journal of Clinical Investigation. 128 (7), 2833-2847 (2018).
  19. Robbins, C. S., et al. Extramedullary hematopoiesis generates Ly-6C(high) monocytes that infiltrate atherosclerotic lesions. Circulation. 125 (2), 364-374 (2012).
  20. Kim, E., Yang, J., Beltran, C. D., Cho, S. Role of spleen-derived monocytes/macrophages in acute ischemic brain injury. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 34 (8), 1411-1419 (2014).
  21. Bronte, V., Pittet, M. J. The spleen in local and systemic regulation of immunity. Immunity. 39 (5), 806-818 (2013).
  22. Wang, N. P., et al. Recruitment of macrophages from the spleen contributes to myocardial fibrosis and hypertension induced by angiotensin II. Journal of the Renin-Angiotensin-Aldosterone System. 18 (2), 1470320317706653 (2017).
  23. Tian, Y., et al. The spleen contributes importantly to myocardial infarct exacerbation during post-ischemic reperfusion in mice via signaling between cardiac HMGB1 and splenic RAGE. Basic Research in Cardiology. 111 (6), 62 (2016).
  24. Jang, Y., et al. Cutting Edge: Check Your Mice-A Point Mutation in the Ncr1 Locus Identified in CD45.1 Congenic Mice with Consequences in Mouse Susceptibility to Infection. Journal of Immunology. 200 (6), 1982-1987 (2018).
check_url/it/59616?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Wang, J., Qiu, L., Fernandez, R., Yeap, X. Y., Lin, C. X., Zhang, Z. J. A Mouse Model of Vascularized Heterotopic Spleen Transplantation for Studying Spleen Cell Biology and Transplant Immunity. J. Vis. Exp. (148), e59616, doi:10.3791/59616 (2019).

View Video