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Articolo metodologico

Utilizzo di CRISPR/Cas9 per eliminare GM-CSF nelle celle CAR-T

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DOI:

10.3791/59629

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22 luglio 2019

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In questo articolo

Sommario

Qui, presentiamo un protocollo per modificare geneticamente le cellule CAR-T tramite un sistema CRISPR/Cas9.

Abstract

La terapia cellulare T (CAR-T) del recettore dell'antigene chimerico è una nuova opzione di trattamento all'avanguardia e potenzialmente rivoluzionaria per il cancro. Tuttavia, ci sono limitazioni significative al suo uso diffuso nel trattamento del cancro. Queste limitazioni includono lo sviluppo di tossicità uniche come la sindrome del rilascio di citochine (CRS) e neurotossicità (NT) e l'espansione limitata, le funzioni degli efumani e l'attività anti-tumorale nei tumori solidi. Una strategia per migliorare l'efficacia car-T e/o la tossicità del controllo delle cellule CAR-T consiste nel modificare il genoma delle cellule CAR-T stesse durante la produzione di cellule CAR-T. Qui, descriviamo l'uso dell'editing del gene CRISPR/Cas9 nelle cellule CAR-T attraverso la trasduzione con un costrutto lentivirale contenente un RNA guida al granulocito macrofato fattore stimolante della colonia (GM-CSF) e Cas9. Ad esempio, descriviamo CRISPR/Cas9 mediato knockout di GM-CSF. Abbiamo dimostrato che queste cellule GM-CSFk/o CAR-T producono efficacemente meno GM-CSF, pur mantenendo la funzione critica delle cellule T e si traducono in una maggiore attività antitumorale in vivo rispetto alle cellule CAR-T di tipo selvatico.

Introduzione

La terapia cellulare T (CAR-T) del recettore dell'antigene chimerico è una grande promessa nel trattamento del cancro. 1 : il nome del , 2 Due terapie cellulari CAR-T rivolte a CD19 (CART19) sono state recentemente approvate negli Stati Uniti e in Europa per l'uso in neoplasie delle cellule B dopo aver dimostrato risultati sorprendenti negli studi clinici multicentri. 3 (COM del nome , 4 DEL psu' , 5 Le barriere all'uso più diffuso delle cellule CAR-T sono attività limitate nei tumori solidi e nelle tossicità associat....

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Protocollo

Questo protocollo segue le linee guida dell'Institutional Review Board (IRB) di Mayo Clinic e del Institutional Biosafety Committee (IBC).

1. Produzione di cellule CART19

  1. Isolamento, stimolazione e cultura delle cellule T
    1. Eseguire tutto il lavoro di coltura cellulare in una cappa di coltura cellulare utilizzando attrezzature di protezione personale appropriate. Raccogliere le cellule mononucleari del sangue periferico (PBMC) da coni di sangue normali donatori de-identificati raccolti durante l'apheresi in quanto sono noti per essere una fonte vitale di PBMC.
    2. Per isolare i PBMC, aggiunger....

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Risultati

La figura 1 mostra la riduzione di GM-CSF nelle celle GM-CSFk/o CART19. Per verificare che il genoma delle cellule T sia stato alterato per eliminare la GM-CSF, il sequenziamento TIDE è stato utilizzato nelle cellule GM-CSFk/o CART19 (Figura 1A). La colorazione della superficie delle cellule CAR-T verifica che le cellule T esprimano con successo il recettore della superficie CAR in vitro gating su cellule CD.......

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Discussione

In questo rapporto, descriviamo una metodologia per utilizzare la tecnologia CRISPR/Cas9 per indurre modifiche secondarie nelle cellule CAR-T. In particolare, questo è dimostrato utilizzando la trasduzione lentivirale con un vettore virale che contiene gRNA mirando al gene di interesse e Cas9 per generare cellule GM-CSFk/o CART19. In precedenza avevamo dimostrato che la neutralizzazione GM-CSF migliora CRS e NT in un modello di xenotrapianto. 12 Come descritto in precedenza, le cellule .......

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Dichiarazioni

SSK è un inventore di brevetti nel campo della terapia CAR T-cell che sono autorizzati a Novartis (sotto un accordo tra Mayo Clinic, Università della Pennsylvania, e Novartis). Questi studi sono stati finanziati in parte da una sovvenzione di Humanigen (SSK). RMS, MJC, RS e SSK sono inventori di brevetti relativi a questo lavoro. Il laboratorio (SSK) riceve finanziamenti da Tolero, Humanigen, Kite, Lentigen, Morphosys e Actinium.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato sostenuto attraverso sovvenzioni da K12CA090628 (SSK), la National Comprehensive Cancer Network (SSK), il Mayo Clinic Center for Individualized Medicine (SSK), la Predolin Foundation (SSK), l'Ufficio Mayo Clinic of Translation to Practice (SSK) e il programma di formazione Per studenti della Mayo Clinic Medical Scientist Robert L. Howell Medical-Scientist Scholarship (RMS).

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Anticorpo monoclonale CD3 (OKT3), PE, eBioscienceInvitrogen12-0037-42
Anticorpo monoclonale CD3 (UCHT1), APC, eBioscienceInvitrogen17-0038-42
Choice Taq Blue MastermixDenville ScientificC775Y51
CTS (Sistemi di terapia cellulare) Dynabeads CD3/CD28Gibco40203D
CytoFLEX System B4-R2-V2Beckman CoulterC10343citometro a flusso
dimetil solfossidoMillipore SigmaD2650-100ML
soluzione salina tamponata con fosfatodi Dulbecco Gibco14190-144 
Dynabeads MPC-S (concentratore di particelle magnetiche)Applied BiosystemsA13346
Easy 50 EasySep MagnetSTEMCELL Technologies18002
EasySep Kit di isolamento delle cellule T umane STEMCELL Technologies17951perle magnetiche a selezione negativa; 17951RF include punte e tampone
Siero fetale bovinoMillipore SigmaF8067
FITC Topo Anti-Umano CD107a BD Pharmingen555800
Terreno di fissazione (Medium A)InvitrogenGAS001S100
GenCRISPR gRNA Costrutto: Nome: CSF2
RNA guida CRISPR 1; Specie: Umana, Vettore:
pLentiCRISPR v2; Resistenza: Ampicillina; Numero di copia:
High; Preparazione del plasmide: Consegna standard: 4 μ g (Gratuito
di carica)
GenScriptN/A ordinepersonalizzato
Capra anti-topo IgG (H+L) Anticorpo secondario adsorbito incrociato, Alexa Fluor 647InvitrogenA-21235
https://tide.nki.nl.di genetica
; Donatori di sesso maschile; tipo AB; USCorning35-060-CI
IFN gamma anticorpo monoclonale (4S. B3), APC-eFluor 780, eBioscienceInvitrogen47-7319-42
Lipofectamine 3000 Reagente di trasfezioneInvitrogenL3000075
Kit di colorazione per cellule morte Aqua fissabile LIVE/DEAD, per eccitazione a 405 nmInvitrogenL34966
LymphoprepSTEMCELL Technologies07851
Soluzione di Monensin, 1000XBioLegend420701
Topo Anti-Umano CD28 Clone CD28.2BD Pharmingen559770
Topo Anti-Umano CD49d Clone 9F10BD Pharmingen561892
Topo Anti-Umano MIP-1β PE-Cy7BD Pharmingen560687
Contenitore per congelamento Mr. FrostyThermo Scientific5100-0001
NALM6, clone G5 cellulare per leucemia linfoblastica acutaATCCCRL-3273
Acqua priva di nucleasiPromegaP119C
Sistemi di filtri sottovuoto Olympus, 500 mL, membrana PES, 0,22uM, sterileGenesee Scientific25-227
Unità filtranti monouso sterili a flusso rapido Nalgene con membrana CN 0,45uMThermo Scientific Nalgene450-0045
Opti-MEM I a siero ridotto Medium (1X), LiquidGibco31985-070
PE-CF594 Mouse Anti-Human IL-2BD Horizon562384
Penicillina-Streptomicina-Glutammina (100X), LiquidGibco10378-016
Terreno di permeabilizzazione (Medium B)InvitrogenGAS002S100
PureLink Genomic DNA Mini KitInvitrogenK182001
Puromicina dicloridratoMP Biomedicals, Inc.Kit di estrazione su gel 0210055210
7144.8-16
X-VIVO 15 Terreno a cellule ematopoietiche senza sieroLonza04-418Q
Siero AB umano desktopLinea QIAquick QIAGEN 28704 Rat Anti-Human GM-CSF BV421 BD Horizon 562930 RoboSep-S STEMCELL Technologies 21000 Separatore cellulare completamente automatizzato SepMate-50 (IVD)STEMCELL Technologies 85450 Azoturo di sodio, 5% (p/v)Ricca Chemical

Riferimenti

  1. Kenderian, S. S., Ruella, M., Gill, S., Kalos, M. Chimeric antigen receptor T-cell therapy to target hematologic malignancies. Cancer Research. 74 (22), 6383-6389 (2014).
  2. Lim, W. A., June, C. H. The Principles of Engineering Immune Cells to Treat Cancer. Cell. 168

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Ristampe e permessi

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