Konveksjon-forbedret levering (CED) er en metode som muliggjør effektiv levering av legemiddel i hjernen ved direkte tilførsel av store vev volumer. Prosedyren krever bruk av katetre og en optimalisert injeksjon prosedyre. Denne protokollen beskriver en metode for CED av et antistoff til en mus hjerne.
Konveksjon-forbedret levering (CED) er en nevrokirurgisk teknikk som muliggjør effektiv tilførsel av store hjerne volumer ved hjelp av et kateter system. En slik tilnærming gir en trygg leveringsmetode by-bestått blod hjerne barrieren (BBB), og dermed tillater behandling med legemidler med dårlig BBB-permeabilitet eller de som systemisk eksponering ikke er ønskelig, f. eks på grunn av toksisitet. CED krever optimalisering av kateteret design, injeksjon protokollen, og egenskapene til infusate. Med denne protokollen beskriver vi hvordan du utfører CED av en løsning som inneholder opptil 20 μg av et antistoff i nucleus caudatus putamen av mus. Den beskriver utarbeidelse av trinn katetre, teste dem in vitro og utføre CED i mus ved hjelp av en gradvis injeksjon program. Protokollen kan lett justeres for andre infusjons volumer og kan brukes til sprøytebruk av ulike Bevegelsesuskarphet eller farmakologisk aktive eller inaktive stoffer, inkludert chemotherapeutics, cytokiner, virale partikler og liposomer.
Blod hjerne barrieren (BBB) danner en semipermeable grense som skiller det sentrale nervesystemet (CNS) fra blodsirkulasjonen. Å nå CNS med legemiddel selskap er imidlertid nødvendig i sammenheng med ulike sykdommer, som hjernesvulster, Alzheimers sykdom (AD) eller Parkinsons sykdom (PD) blant andre1. Dette blir viktig i utviklingen av nye terapier, spesielt hvis testet stoffet utstillinger dårlig BBB permeabilitet eller systemisk eksponering kan føre til farlig toksisitet1,2. Noen av de klinisk brukte Antistoffene viser begge disse funksjonene. En løsning på dette problemet ville være å levere legemiddel selskap direkte bak BBB.
Konveksjon-forbedret levering (CED) er en nevrokirurgisk teknikk som muliggjør effektiv tilførsel av store hjerne volumer. Dette oppnås ved kirurgisk å installere en eller flere katetre i målområdet. Under stoffet søknaden, en trykk gradient dannes ved åpningen av kateteret, som blir drivkraften av infusate dispersjon i vevet3,4. Det er således varigheten av infusjon og ikke diffusjon koeffisienter som bestemmer spekteret2,4,5. Dette gir ensartet levering av infusate over en mye større hjerne volum sammenlignet med konvensjonell, diffusjon basert intracerebrale injeksjon metoder2,6. På samme tid, denne leveransen modalitet har en lavere risiko for vevsskade2. Følgelig kan CED muliggjøre sikker og effektiv administrering av konvensjonelle chemotherapeutics for behandling av CNS-svulster, samt levering av immunmodulerende midler eller agonistic og fiendtlige antistoffer i en rekke andre CNS-lidelser2 ,7,8,9. CED er for tiden testet i behandling av Parkinsons sykdom, Alzheimers sykdom, samt høyverdig glioma2,7,8,10,11.
Kateter design og injeksjons regimet er blant de viktigste faktorene som påvirker utfallet av CED 10,12,13,14,15,16. Videre krever det spesifikke fysikalsk egenskaper av infusate, inkludert moderat størrelse på partiklene, en anioniske ladning, og lav vev affinitet 10,17. Hver av disse parametrene må være potensielt justeres i henhold til histologiske funksjoner i hjernens region skal være målrettet2,10,17.
Her beskriver vi metodikk for å utføre CED av en antistoff løsning i nucleus caudatus putamen (striatum) av mus. Videre inkluderer protokollen utarbeidelse av trinn katetre i et laboratorium oppsett, teste dem in vitro og utføre CED.
Det er flere kateter design tilgjengelig i litteraturen, ulik av formen på kanyle, materialene som brukes og antall kateter åpninger12,15,18,19,20 ,21,22. Vi bruker et trinn kateter laget av en smeltet silika kapillær stikker 1 mm fra en butt end metall nål. Dette kateter design kan lett produseres i et forskningslaboratorium og reproduserbar gir gode CED resultater når testet in vitro med agarose blokker med fysiske parametre ligner hjernen parenchyma in vivo23.
Videre implementerer vi en gradvis dose for å levere 5 μL av infusate in vivo. I en slik protokoll økes injeksjons raten fra 0,2 μL/min til maksimalt 0,8 μL/min, og dermed minimerer sjansene for infusate reflux langs kateteret, samt risiko for vevsskade16. Ved hjelp av denne protokollen har vi administrert mus med opptil 20 mikrogram antistoff i 5 μL av PBS i løpet av 11 min 30 s.
Protokollen kan lett justeres for andre infusjons volumer eller for injisering av andre stoffer, for eksempel chemotherapeutics, cytokiner, virale partikler eller liposomer2,10,14,18 ,22. Ved bruk av infusate med drastisk forskjellige fysikalsk egenskaper sammenlignet med en fosfat bufret saltvann (PBS) eller kunstig spinalvæske (aCSF)-løsning av antistoffer, anbefales ytterligere validerings trinn. For kateteret montering, validering og CED, beskriver vi alle trinn ved hjelp av en stereotactic robot med en drill og injeksjon enhet montert på en vanlig stereotactic ramme. Denne prosedyren kan også utføres med en manuell stereotactic ramme koblet til programmerbare microinfusion pumpe som kan kjøre den beskrevne glass microsyringes.
Konveksjon-forbedret levering, eller trykk-mediert legemiddel infusjon i hjernen, ble først foreslått i begynnelsen av 19903. Denne tilnærmingen løfter et stort hjerne bind bak blod hjerne barrieren på en kontrollert måte2. Men hittil har bare noen kliniske forsøk blitt utført ved hjelp av denne tilnærmingen, delvis fordi CED i et klinisk oppsett har vist seg å være teknisk krevende24,25. Den siste utvikl…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av tilskudd fra Universitetet i Zürich (FK-15-057), Novartis Foundation for medisinsk-biologisk forskning (16C231) og Swiss Cancer Research (KFS-3852-02-2016, KFS-4146-02-2017) til Johannes vom berg og BRIDGE proof of Concept (20B1-1 _177300) til Linda Schellhammer.
10 μL syringe | Hamilton | 7635-01 | |
27 G blunt end needle | Hamilton | 7762-01 | |
Agarose | Promega | V3121 | |
Atipamezol | Janssen | ||
Bone wax | Braun | 1029754 | |
Buprenorphine | Indivior Schweiz AG | ||
Carprofen | Pfizer AG | ||
Dental drill bits, steel, size ISO 009 | Hager & Meisinger | 1RF009 | |
Ethanol 100% | Reuss-Chemie AG | 179-VL03K-/1 | |
Fentanyl | Helvepharm AG | ||
FITC-Dextran, 2000 kDa | Sigma Aldrich | FD2000S | |
Flumazenil | Labatec Pharma AG | ||
Formaldehyde | Sigma Aldrich | F8775-500ML | |
High viscosity cyanoacrylate glue | Migros | ||
Iodine solution | Mundipharma | ||
Medetomidin | Orion Pharma AG | ||
Microforge | Narishige | MF-900 | |
Midazolam | Roche Pharma AG | ||
Ophthalmic ointment | Bausch + Lomb | Vitamin A Blache | |
PBS | ThermoFischer Scientific | 10010023 | |
Polyclonal goat anti-rat IgG (H+L) antibody coupled with Alexa Fluor 647 | Jackson Immuno | ||
Scalpels | Braun | BB518 | |
Silica tubing internal diameter 0.1 mm, wall thickness of 0.0325 mm | Postnova | Z-FSS-100165 | |
Stereotactic frame for mice | Stoelting | 51615 | |
Stereotactic robot | Neurostar | Drill and Injection Robot | |
Succrose | Sigma Aldrich | S0389-500G | |
Topical tissue adhesive | Zoetis | GLUture | |
Trypan blue | ThermoFischer Scientific | 15250061 | |
Water | Bichsel | 1000004 |