Summary

Levering av antistoffer inn i murine Brain via konveksjon-forbedret levering

Published: July 18, 2019
doi:

Summary

Konveksjon-forbedret levering (CED) er en metode som muliggjør effektiv levering av legemiddel i hjernen ved direkte tilførsel av store vev volumer. Prosedyren krever bruk av katetre og en optimalisert injeksjon prosedyre. Denne protokollen beskriver en metode for CED av et antistoff til en mus hjerne.

Abstract

Konveksjon-forbedret levering (CED) er en nevrokirurgisk teknikk som muliggjør effektiv tilførsel av store hjerne volumer ved hjelp av et kateter system. En slik tilnærming gir en trygg leveringsmetode by-bestått blod hjerne barrieren (BBB), og dermed tillater behandling med legemidler med dårlig BBB-permeabilitet eller de som systemisk eksponering ikke er ønskelig, f. eks på grunn av toksisitet. CED krever optimalisering av kateteret design, injeksjon protokollen, og egenskapene til infusate. Med denne protokollen beskriver vi hvordan du utfører CED av en løsning som inneholder opptil 20 μg av et antistoff i nucleus caudatus putamen av mus. Den beskriver utarbeidelse av trinn katetre, teste dem in vitro og utføre CED i mus ved hjelp av en gradvis injeksjon program. Protokollen kan lett justeres for andre infusjons volumer og kan brukes til sprøytebruk av ulike Bevegelsesuskarphet eller farmakologisk aktive eller inaktive stoffer, inkludert chemotherapeutics, cytokiner, virale partikler og liposomer.

Introduction

Blod hjerne barrieren (BBB) danner en semipermeable grense som skiller det sentrale nervesystemet (CNS) fra blodsirkulasjonen. Å nå CNS med legemiddel selskap er imidlertid nødvendig i sammenheng med ulike sykdommer, som hjernesvulster, Alzheimers sykdom (AD) eller Parkinsons sykdom (PD) blant andre1. Dette blir viktig i utviklingen av nye terapier, spesielt hvis testet stoffet utstillinger dårlig BBB permeabilitet eller systemisk eksponering kan føre til farlig toksisitet1,2. Noen av de klinisk brukte Antistoffene viser begge disse funksjonene. En løsning på dette problemet ville være å levere legemiddel selskap direkte bak BBB.

Konveksjon-forbedret levering (CED) er en nevrokirurgisk teknikk som muliggjør effektiv tilførsel av store hjerne volumer. Dette oppnås ved kirurgisk å installere en eller flere katetre i målområdet. Under stoffet søknaden, en trykk gradient dannes ved åpningen av kateteret, som blir drivkraften av infusate dispersjon i vevet3,4. Det er således varigheten av infusjon og ikke diffusjon koeffisienter som bestemmer spekteret2,4,5. Dette gir ensartet levering av infusate over en mye større hjerne volum sammenlignet med konvensjonell, diffusjon basert intracerebrale injeksjon metoder2,6. På samme tid, denne leveransen modalitet har en lavere risiko for vevsskade2. Følgelig kan CED muliggjøre sikker og effektiv administrering av konvensjonelle chemotherapeutics for behandling av CNS-svulster, samt levering av immunmodulerende midler eller agonistic og fiendtlige antistoffer i en rekke andre CNS-lidelser2 ,7,8,9. CED er for tiden testet i behandling av Parkinsons sykdom, Alzheimers sykdom, samt høyverdig glioma2,7,8,10,11.

Kateter design og injeksjons regimet er blant de viktigste faktorene som påvirker utfallet av CED 10,12,13,14,15,16. Videre krever det spesifikke fysikalsk egenskaper av infusate, inkludert moderat størrelse på partiklene, en anioniske ladning, og lav vev affinitet 10,17. Hver av disse parametrene må være potensielt justeres i henhold til histologiske funksjoner i hjernens region skal være målrettet2,10,17.

Her beskriver vi metodikk for å utføre CED av en antistoff løsning i nucleus caudatus putamen (striatum) av mus. Videre inkluderer protokollen utarbeidelse av trinn katetre i et laboratorium oppsett, teste dem in vitro og utføre CED.

Det er flere kateter design tilgjengelig i litteraturen, ulik av formen på kanyle, materialene som brukes og antall kateter åpninger12,15,18,19,20 ,21,22. Vi bruker et trinn kateter laget av en smeltet silika kapillær stikker 1 mm fra en butt end metall nål. Dette kateter design kan lett produseres i et forskningslaboratorium og reproduserbar gir gode CED resultater når testet in vitro med agarose blokker med fysiske parametre ligner hjernen parenchyma in vivo23.

Videre implementerer vi en gradvis dose for å levere 5 μL av infusate in vivo. I en slik protokoll økes injeksjons raten fra 0,2 μL/min til maksimalt 0,8 μL/min, og dermed minimerer sjansene for infusate reflux langs kateteret, samt risiko for vevsskade16. Ved hjelp av denne protokollen har vi administrert mus med opptil 20 mikrogram antistoff i 5 μL av PBS i løpet av 11 min 30 s.

Protokollen kan lett justeres for andre infusjons volumer eller for injisering av andre stoffer, for eksempel chemotherapeutics, cytokiner, virale partikler eller liposomer2,10,14,18 ,22. Ved bruk av infusate med drastisk forskjellige fysikalsk egenskaper sammenlignet med en fosfat bufret saltvann (PBS) eller kunstig spinalvæske (aCSF)-løsning av antistoffer, anbefales ytterligere validerings trinn. For kateteret montering, validering og CED, beskriver vi alle trinn ved hjelp av en stereotactic robot med en drill og injeksjon enhet montert på en vanlig stereotactic ramme. Denne prosedyren kan også utføres med en manuell stereotactic ramme koblet til programmerbare microinfusion pumpe som kan kjøre den beskrevne glass microsyringes.

Protocol

Alle metodene som er beskrevet her har blitt godkjent av den sveitsiske kantonale veterinær kontor under lisensnummer ZH246/15. 1. utarbeidelse av Step katetre Utarbeidelse av en smeltet silica slange for trinn av kateteret Skjær smeltet silica kapillær med indre diameter på 0,1 mm og veggtykkelse på 0,0325 mm slange til en lengde på 30 mm. Undersøk slangen for sprekker og varme polish endene ved hjelp av en microforge for å sikre slange …

Representative Results

Denne protokollen gjør det mulig å klargjøre trinn katetre (figur 1) for bruk i CED-prosedyren i et laboratoriemiljø. For å kontrollere katetre for lekkasje, reflux langs nål kanalen og tilstopping, anbefaler vi å utføre injeksjoner av et fargestoff, f. eks, trypan blå løsning, i en agarose blokk. Figur 3 viser en sky av trypan blå forming etter injeksjon med 1 μL ved 0,5 μL/minutt ved bruk av et CED-kateter (figur 3a)….

Discussion

Konveksjon-forbedret levering, eller trykk-mediert legemiddel infusjon i hjernen, ble først foreslått i begynnelsen av 19903. Denne tilnærmingen løfter et stort hjerne bind bak blod hjerne barrieren på en kontrollert måte2. Men hittil har bare noen kliniske forsøk blitt utført ved hjelp av denne tilnærmingen, delvis fordi CED i et klinisk oppsett har vist seg å være teknisk krevende24,25. Den siste utvikl…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av tilskudd fra Universitetet i Zürich (FK-15-057), Novartis Foundation for medisinsk-biologisk forskning (16C231) og Swiss Cancer Research (KFS-3852-02-2016, KFS-4146-02-2017) til Johannes vom berg og BRIDGE proof of Concept (20B1-1 _177300) til Linda Schellhammer.

Materials

10 μL syringe Hamilton 7635-01
27 G blunt end needle Hamilton 7762-01
Agarose Promega V3121
Atipamezol Janssen
Bone wax Braun 1029754
Buprenorphine Indivior Schweiz AG
Carprofen Pfizer AG
Dental drill bits, steel, size ISO 009 Hager & Meisinger 1RF009
Ethanol 100% Reuss-Chemie AG 179-VL03K-/1
Fentanyl Helvepharm AG
FITC-Dextran, 2000 kDa Sigma Aldrich FD2000S
Flumazenil Labatec Pharma AG
Formaldehyde Sigma Aldrich F8775-500ML
High viscosity cyanoacrylate glue Migros
Iodine solution Mundipharma
Medetomidin Orion Pharma AG
Microforge Narishige MF-900
Midazolam Roche Pharma AG
Ophthalmic ointment Bausch + Lomb Vitamin A Blache
PBS ThermoFischer Scientific 10010023
Polyclonal goat anti-rat IgG (H+L) antibody coupled with Alexa Fluor 647 Jackson Immuno
Scalpels Braun BB518
Silica tubing internal diameter 0.1 mm, wall thickness of 0.0325 mm Postnova Z-FSS-100165
Stereotactic frame for mice Stoelting 51615
Stereotactic robot Neurostar Drill and Injection Robot
Succrose Sigma Aldrich S0389-500G
Topical tissue adhesive Zoetis GLUture
Trypan blue ThermoFischer Scientific 15250061
Water Bichsel 1000004

Riferimenti

  1. Scherrmann, J. M. Drug delivery via the blood-brain barrier. Vascular Pharmacology. 38 (6), 349-354 (2002).
  2. Barua, N. U., Gill, S. S. Convection-enhanced drug delivery: prospects for glioblastoma treatment. CNS Oncology. 3 (5), 313-316 (2014).
  3. Bobo, R. H., et al. Convection-enhanced delivery of macromolecules in the brain. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91 (6), 2076-2080 (1994).
  4. Morrison, P. F., Laske, D. W., Bobo, H., Oldfield, E. H., Dedrick, R. L. High-flow microinfusion: tissue penetration and pharmacodynamics. American Journal of Physiology. 266 (1 Pt 2), R292-R305 (1994).
  5. Zhou, Z., Singh, R., Souweidane, M. M. Convection-Enhanced Delivery for diffuse intrinsic pontine glioma treatment. Current Neuropharmacology. 15 (1), 116-128 (2017).
  6. Barua, N. U., et al. Intrastriatal convection-enhanced delivery results in widespread perivascular distribution in a pre-clinical model. Fluids and Barriers of the CNS. 9 (1), 2 (2012).
  7. Shoji, T., et al. Local convection-enhanced delivery of an anti-CD40 agonistic monoclonal antibody induces antitumor effects in mouse glioma models. Neuro-Oncology. 18 (8), 1120-1128 (2016).
  8. Souweidane, M. M., et al. Convection-enhanced delivery for diffuse intrinsic pontine glioma: a single-centre, dose-escalation, phase 1 trial. The Lancet Oncology. , (2018).
  9. Zhang, X., et al. Targeting immune checkpoints in malignant glioma. Oncotarget. 8 (4), 7157-7174 (2017).
  10. Barua, N. U., Gill, S. S., Love, S. Convection-enhanced drug delivery to the brain: therapeutic potential and neuropathological considerations. Brain Pathology. 24 (2), 117-127 (2014).
  11. Mehta, A. M., Sonabend, A. M., Bruce, J. N. Convection-Enhanced Delivery. Neurotherapeutics. 14 (2), 358-371 (2017).
  12. Krauze, M. T., et al. Reflux-free cannula for convection-enhanced high-speed delivery of therapeutic agents. Journal of Neurosurgery. 103 (5), 923-929 (2005).
  13. Nash, K. R., Gordon, M. N. Convection Enhanced Delivery of Recombinant Adeno-associated Virus into the Mouse Brain. Methods in Molecular Biology. 1382, 285-295 (2016).
  14. Ohlfest, J. R., et al. Combinatorial antiangiogenic gene therapy by nonviral gene transfer using the sleeping beauty transposon causes tumor regression and improves survival in mice bearing intracranial human glioblastoma. Molecular Therapy. 12 (5), 778-788 (2005).
  15. Yin, D., Forsayeth, J., Bankiewicz, K. S. Optimized cannula design and placement for convection-enhanced delivery in rat striatum. Journal of Neuroscience Methods. 187 (1), 46-51 (2010).
  16. Mamot, C., et al. Extensive distribution of liposomes in rodent brains and brain tumors following convection-enhanced delivery. Journal of Neuro-Oncology. 68 (1), 1-9 (2004).
  17. Saito, R., et al. Tissue affinity of the infusate affects the distribution volume during convection-enhanced delivery into rodent brains: implications for local drug delivery. Journal of Neuroscience Methods. 154 (1-2), 225-232 (2006).
  18. Oh, S., et al. Improved distribution of small molecules and viral vectors in the murine brain using a hollow fiber catheter. Journal of Neurosurgery. 107 (3), 568-577 (2007).
  19. Barua, N. U., et al. A novel implantable catheter system with transcutaneous port for intermittent convection-enhanced delivery of carboplatin for recurrent glioblastoma. Drug Delivery. 23 (1), 167-173 (2016).
  20. Rosenbluth, K. H., et al. Design of an in-dwelling cannula for convection-enhanced delivery. Journal of Neuroscience Methods. 196 (1), 118-123 (2011).
  21. Debinski, W., Tatter, S. B. Convection-enhanced delivery for the treatment of brain tumors. Expert Review of Neurotherapeutics. 9 (10), 1519-1527 (2009).
  22. MacKay, J. A., Deen, D. F., Szoka, F. C. Distribution in brain of liposomes after convection enhanced delivery; modulation by particle charge, particle diameter, and presence of steric coating. Brain Research. 1035 (2), 139-153 (2005).
  23. Chen, Z. J., et al. A realistic brain tissue phantom for intraparenchymal infusion studies. Journal of Neurosurgery. 101 (2), 314-322 (2004).
  24. Sampson, J. H., et al. Poor drug distribution as a possible explanation for the results of the PRECISE trial. Journal of Neurosurgery. 113 (2), 301-309 (2010).
  25. Wick, W., Weller, M., et al. Trabedersen to target transforming growth factor-beta: when the journey is not the reward, in reference to Bogdahn et al. (Neuro-Oncology 2011;13:132-142). Neuro-Oncology. 13 (5), 559-560 (2011).
  26. Saito, R., Tominaga, T. Convection-enhanced delivery of therapeutics for malignant gliomas. Neurologia Medico-Chirurgica. 57 (1), 8-16 (2017).
  27. Bedussi, B., et al. Clearance from the mouse brain by convection of interstitial fluid towards the ventricular system. Fluids Barriers CNS. 12, 23 (2015).
  28. Noroxe, D. S., Poulsen, H. S., Lassen, U. Hallmarks of glioblastoma: a systematic review. ESMO Open. 1 (6), e000144 (2016).
  29. Boucher, Y., Salehi, H., Witwer, B., Harsh, G. R. t., Jain, R. K. Interstitial fluid pressure in intracranial tumours in patients and in rodents. British Journal of Cancer. 75 (6), 829-836 (1997).
  30. Glushakova, O. Y., et al. Prospective clinical biomarkers of caspase-mediated apoptosis associated with neuronal and neurovascular damage following stroke and other severe brain injuries: Implications for chronic neurodegeneration. Brain Circulation. 3 (2), 87-108 (2017).
  31. Vom Berg, J., et al. Inhibition of IL-12/IL-23 signaling reduces Alzheimer’s disease-like pathology and cognitive decline. Nature Medicine. 18 (12), 1812-1819 (2012).
  32. Vom Berg, J., et al. Intratumoral IL-12 combined with CTLA-4 blockade elicits T cell-mediated glioma rejection. Journal of Experimental Medicine. 210 (13), 2803-2811 (2013).
  33. Kurdi, A., et al. Continuous administration of the mTORC1 inhibitor everolimus induces tolerance and decreases autophagy in mice. British Journal of Pharmacology. 173 (23), 3359-3371 (2016).
check_url/it/59675?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Beffinger, M., Schellhammer, L., Pantelyushin, S., vom Berg, J. Delivery of Antibodies into the Murine Brain via Convection-enhanced Delivery. J. Vis. Exp. (149), e59675, doi:10.3791/59675 (2019).

View Video