Summary

Måling av BK-polyomavirus ikke-Coding Control region drevet Transcriptional aktivitet via Flow flowcytometri

Published: July 13, 2019
doi:

Summary

I dette manuskriptet presenteres en protokoll for å utføre FACS-basert måling av BK-polyomavirus transcriptional aktivitet ved å bruke HEK293T celler transfekterte med en toveis reporter plasmider som uttrykker tdTomato og eGFP. Denne metoden videre gjør det mulig å kvantitativt bestemme innflytelsen av romanen forbindelser på viral transkripsjon.

Abstract

Polyomaviruses, som BK-polyomavirus (BKPyV), kan forårsake alvorlige sykdommer hos immunsupprimerte pasienter. Men, siden svært effektive antivirale midler er for øyeblikket ikke tilgjengelig, metoder måle effekten av potensielle antivirale midler er nødvendig. Her, en dual fluorescens reporter som gjør at analysen av BKPyV ikke-koding kontroll-regionen (NCCR) drevet tidlig og sent promoter aktivitet ble konstruert for å kvantifisere effekten av potensielle antivirale legemidler på viral genuttrykk via tdTomato og eGFP Uttrykk. I tillegg, ved kloning BKPyV-NCCR amplicons som i denne protokollen har blitt eksempelvis innhentet fra blod-avledet DNA av immunsupprimerte nyretransplanterte pasienter, kan virkningen av NCCR-rearrangements på viral genuttrykk bestemmes. Etter kloning av pasienten avledet amplicons, HEK293T celler ble transfekterte med reporter-plasmider, og behandlet med potensielle antivirale midler. Deretter ble celler utsatt for FACS-analyse for måling bety fluorescens intensitet 72 h post transfeksjoner. Å også teste analyse av legemidler som har en potensiell celle syklus hemmende effekt, bare transfekterte og dermed fluorescerende celler brukes. Siden denne analysen er utført i store T antigen uttrykke celler, kan virkningen av tidlig og sent uttrykk analyseres på en gjensidig uavhengig måte.

Introduction

Polyomaviruses representerer en uavhengig familie av små dobbel-strandet DNA (dsDNA) virus med Simian virus 40 (SV40) som en prototype arter. Den primære infeksjonen oppstår hovedsakelig i løpet av barndommen, som vanligvis går uten sykdomssymptomer og vanligvis forårsake latente infeksjoner i uimottakelig kompetente verter. Den BK-polyomavirus (BKPyV) hovedsakelig vedvarer i renal tubuli celler uten å forårsake nephropathologies, men i tilfelle av svekkelse av immun-kompetanse etter nyre transplantasjon viruset kan reaktivere og forårsake alvorlige skader og nedsatt pode funksjon når man når en høy viremia (1 x 104 BKPyV DNA eksemplarer/ml)1,2. I ca 10% av nyre transplantasjon mottakere, reaktivering av BK-polyomavirus (BKPyV) resulterer i en polyomavirus assosiert nefropati (PyVAN), som var opp til 80% assosiert med en høy risiko for nyres allograft svikt3,4 . Siden ingen godkjente antivirale midler er tilgjengelig, er aktuell behandling basert på reduksjon av immunsuppresjon. Interessant, mTOR hemmere synes å ha en antiviral effekt; Dermed kan det å bytte immunsuppressiv-behandlingen til mTOR-baserte immunsuppresjon representere en alternativ tilnærming for å hindre progresjon av BKPyV viremia5,6,7. Imidlertid, det mTOR-basert antiviral mekanikk er aktuelle fremdeles ufullstendig forstod. Dermed kreves metoder som måler virkningen av potensielle antivirale midler i klinisk relevante konsentrasjoner.

Den sirkulære Genova av BKPyV består av ca 5 kb harboring en ikke-koding kontroll region (NCCR) som fungerer som en opprinnelse av replikering og samtidig en toveis promoter kjører uttrykk for tidlig og sent fase mRNA transkripsjoner. Siden spontant forekommende NCCR-rearrangements, slettinger og duplikasjoner finnes i patogene BKPyV8 og signifikant akkumulert hos pasienter som lider av PVAN5,9, en sammenligning av arketypiske (WT) og re-arrangert (RR) NCCR-aktiviteter er nyttig å karakterisere viral replicative fitness.

Som oppsummert i figur 1, beskriver denne protokollen en vanlig brukt metode for å måle BKPyV NCCR transcriptional aktivitet ved kvantifisere fluorescens av to fluorophores TdTomato og eGFP uttrykt fra en reporter plasmider5, 9,10,11. Prosedyren utføres i nærvær av SV40 store T antigen (lTAg), som gjør det mulig å analysere virkningen av potensielle antivirale midler på tidlig og sent NCCR-aktivitet separat5. Denne analysen analyserer videre virkningen av rearrangements på NCCR aktivitet og sammenligning med WT-NCCRs5,9. Reporteren plasmider havner i SV40 sent polyadenylation signal nedstrøms for hver fluoroforen åpne lese ramme for å sikre sammenlignbare og effektiv behandling av både transkripsjoner for tdTomato og eGFP, henholdsvis. Sammenlignet med qRT-PCR baserte metoder5,12, denne FACS-basert tilnærming representerer en lav kostnad og høy gjennomstrømming kompatibelt alternativ siden ingen kompliserte utvinning protokoller for infiserte cellekultur og ingen dyre antistoffer for immun fluorescens farging er nødvendig. Videre, siden en definert mengde fluorescerende celler er analysert via Flow flowcytometri, analyse av celle syklus hemme agenter er også mulig i en kvantitativ måte.

Protocol

Denne protokollen følger retningslinjene for menneskelig forskning som godkjent av ethic Committee av medisinsk fakultet ved Universitetet i Duisburg-Essen (14-6028-BO). 1. innsamling av blod-eller urinprøver og isolering av polyomavirus DNA Samle minst 3 mL blod i EDTA-rør eller urin i oppkjøpet rør. Sentrifuger prøven ved 2 500 x g i 15 min. Hvis nødvendig, pipette plasma inn i et nytt rør og oppbevar plasma prøvene ved 4 ° c i flere dager eller fryse v…

Representative Results

I dette representative eksperimentet ble BK-polyomavirus non-Coding Control region drevet transcriptional aktivitet målt via strømnings flowcytometri. I tillegg, en mTOR inhibitor, som kan brukes til å behandle pasienter etter BKPyV reaktivering, ble testet for sin hemming av viral tidlig genuttrykk. For å gjøre dette, en dual fluorescens-reporter analysen ble brukt som publisert tidligere5. Det generelle arbeidsflytoppsettet for det eksperimentelle oppsettet …

Discussion

I denne artikkelen presenteres en ofte brukt metode som gjør det mulig for analyse av BKPyV ikke-koding kontroll-region (NCCR) drevet tidlig og sent promoter aktivitet. Den NCCR aktivitet kan måles samtidig og trenger ikke lyse av transfekterte celler. Videre kan et relativt stort antall celler bli analysert og co-transfeksjoner av ekstra markører for normalisering av de fluorescens verdiene er ikke nødvendig.

En kritisk del av denne metoden er at klonet NCCR skal inneholde nøyaktig de sa…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Barbara Bleekmann for utmerket teknisk assistanse. Disse studiene ble støttet av IFORES-programmet ved Universitetet i Duisburg-Essen Medical School og RIMUR-programmet ved University Alliance Ruhr and Mercator Research Center Ruhr (MERCUR). Forfatterne takker Jürgen-Manchot-Stiftung for doktorgrads fellesskap av Helene Sertznig og konstant støtte. Innsamling og bruk av pasient materiale har blitt godkjent av etikk komité for medisinsk fakultet ved Universitetet Duisburg-Essen (14-6028-BO).

Materials

100 bp ladder NEB N3231 Any ladder with a range up to 1 kb can be substituted
2-log ladder NEB N0550 Any ladder with a range up to 10 kb can be substituted
Agar-Agar, Kobe I Carl Roth 5210.3
AgeI-HF NEB R3552
Ampicillin Natriumsalz Cellpure Carl Roth HP62.1
Aqua ad iniectabilia Bbraun 2351744 can be substituted by any manufacturer
BD FACSCanto™ II BD Biosciences
BD FACSDiva BD Biosciences
DAPI Sigma 10236276001
DFC450C camera module Leica Any camera can be used
DMEM Gibco 41966-029 can be substituted by any manufacturer
DMIL LED microscope Leica Any fluorescence microscope can be used
DNA Blood Mini Kit Qiagen 51104 can be substituted by any manufacturer
E.coli DH5alpha Competent Cells Thermo Scientific 18258012
FBS Superior MerckMillipore 50615 Any FBS can be used
FlowJo v10.5.3 FlowJo, LLC Any flow cytometry software FBS can be used
Gel Loading Dye, Purple (6X)  NEB B7024 Any 6x loading dye can be substituted
HEK293T cells ATCC 11268 These cells constitutively express the simian virus 40 (SV40) large T antigen, and clone 17 was selected specifically for its high transfectability.
HERAcell® 240i CO2 Incubator Thermo Scientific can be substituted by any manufacturer
HotStar PCR kit Qiagen 203203
Intas Gel documentation system Intas Any visualisation system for stained DNA containing agarose gels can be used
Low Melt Agarose Biozym 850081 can be substituted by any manufacturer
Opti-MEM Invitrogen 31985070 can be substituted by any manufacturer
pBKV (34-2) ATCC 45025 Plasmid harboring the full-length genome of BKPyV strain Dunlop; was used as a positive control; DNA Seq. Acc.: KP412983
PBS Gibco 14190-136
PCR Cycler MJ Mini 48-Well Personal Cycler Bio-Rad discontinued product Any thermocycler can be used
PCR Nucleotide Mix, 10 mM Promega #C1145 can be substituted by any manufacturer
PCR1 and PCR2 Primers metabion not applicable Desalted. Dilute to (10 µM) with PCR grade water
PenStrep (100x) Gibco 15140-122 can be substituted by any manufacturer
Roti®-GelStain Carl Roth 3865 A fluorescence based stain for measuring dsDNA concentration
SpeI-HF NEB R3133
T4-DNA Ligase NEB M0202
TransIT LT1 Mirus MIR2300
Trypsin 0.05% – EDTA Gibco 25300-054 can be substituted by any manufacturer
ZymoPURE II Plasmid Kit Zymo D4201 can be substituted by any manufacturer

Riferimenti

  1. Drachenberg, C. B., et al. Histological patterns of polyomavirus nephropathy: correlation with graft outcome and viral load. American Journal of Transplant. 4 (12), 2082-2092 (2004).
  2. Korth, J., et al. Impact of low-level BK polyomavirus viremia on intermediate-term renal allograft function. Transplant Infectious Disease. 20 (1), (2018).
  3. Hirsch, H. H., et al. European perspective on human polyomavirus infection, replication and disease in solid organ transplantation. Clinical Microbiology and Infection. 20 Suppl 7, 74-88 (2014).
  4. Masutani, K., et al. The Banff 2009 Working Proposal for polyomavirus nephropathy: a critical evaluation of its utility as a determinant of clinical outcome. American Journal of Transplantation. 12 (4), 907-918 (2012).
  5. Korth, J., et al. Impact of immune suppressive agents on the BK-Polyomavirus non coding control region. Antiviral Research. 159, 68-76 (2018).
  6. Hirsch, H. H., Yakhontova, K., Lu, M., Manzetti, J. BK Polyomavirus Replication in Renal Tubular Epithelial Cells Is Inhibited by Sirolimus, but Activated by Tacrolimus Through a Pathway Involving FKBP-12. Amerian Journal of Transplantation. 16 (3), 821-832 (2016).
  7. Sanchez Fructuoso, A. I., et al. Mammalian target of rapamycin signal inhibitors could play a role in the treatment of BK polyomavirus nephritis in renal allograft recipients. Transplant Infectious Disease. 13 (6), 584-591 (2011).
  8. Moens, U., Johansen, T., Johnsen, J. I., Seternes, O. M., Traavik, T. Noncoding control region of naturally occurring BK virus variants: sequence comparison and functional analysis. Virus Genes. 10 (3), 261-275 (1995).
  9. Gosert, R., et al. Polyomavirus BK with rearranged noncoding control region emerge in vivo in renal transplant patients and increase viral replication and cytopathology. Journal of Experimental Medicine. 205 (4), 841-852 (2008).
  10. Bethge, T., et al. Sp1 sites in the noncoding control region of BK polyomavirus are key regulators of bidirectional viral early and late gene expression. Journal of Virology. 89 (6), 3396-3411 (2015).
  11. Gosert, R., Kardas, P., Major, E. O., Hirsch, H. H. Rearranged JC virus noncoding control regions found in progressive multifocal leukoencephalopathy patient samples increase virus early gene expression and replication rate. Journal of Virology. 84 (20), 10448-10456 (2010).
  12. Bernhoff, E., Gutteberg, T. J., Sandvik, K., Hirsch, H. H., Rinaldo, C. H. Cidofovir inhibits polyomavirus BK replication in human renal tubular cells downstream of viral early gene expression. American Journal of Transplantation. 8 (7), 1413-1422 (2008).
  13. Widera, M., et al. HIV-1 persistent viremia is frequently followed by episodes of low-level viremia. Medical Microbiology Immunology. , (2017).
  14. Zhang, S., Cahalan, M. D. Purifying plasmid DNA from bacterial colonies using the QIAGEN Miniprep Kit. Journal of Visualized Experiment. (6), 247 (2007).
  15. Drew, R. J., Walsh, A., Laoi, B. N., Crowley, B. Phylogenetic analysis of the complete genome of 11 BKV isolates obtained from allogenic stem cell transplant recipients in Ireland. Journal of Medical Virology. 84 (7), 1037-1048 (2012).
  16. Dorries, K., Vogel, E., Gunther, S., Czub, S. Infection of human polyomaviruses JC and BK in peripheral blood leukocytes from immunocompetent individuals. Virology. 198 (1), 59-70 (1994).
  17. Teutsch, K., et al. Early identification of renal transplant recipients with high risk of polyomavirus-associated nephropathy. Medical Microbiology Immunology. 204 (6), 657-664 (2015).
  18. Basu, S., Campbell, H. M., Dittel, B. N., Ray, A. Purification of specific cell population by fluorescence activated cell sorting (FACS). Journal of Visualized Experiment. (41), (2010).
  19. Korth, J., et al. The detection of BKPyV genotypes II and IV after renal transplantation as a simple tool for risk assessment for PyVAN and transplant outcome already at early stages of BKPyV reactivation. Journal of Clinical Virology. 113, 14-19 (2019).
  20. Caputo, A., Barbanti-Brodano, G., Wang, E., Ricciardi, R. P. Transactivation of BKV and SV40 early promoters by BKV and SV40 T-antigens. Virology. 152 (2), 459-465 (1986).
  21. Shaner, N. C., Steinbach, P. A., Tsien, R. Y. A guide to choosing fluorescent proteins. Nature Methods. 2 (12), 905-909 (2005).
check_url/it/59755?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Korth, J., Sertznig, H., Moyrer, S., Doevelaar, A. A. N., Westhoff, T. H., Babel, N., Witzke, O., Kribben, A., Dittmer, U., Widera, M. Measurement of BK-polyomavirus Non-Coding Control Region Driven Transcriptional Activity Via Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (149), e59755, doi:10.3791/59755 (2019).

View Video