Fluorescence Angiography for Evaluation of Aneurysm Perfusion and Parent Artery Patency in Rat and Rabbit Aneurysm Models Fluorescence Angiography for Evaluation of Aneurysm Perfusion and Parent Artery Patency in Rat and Rabbit Aneurysm Models Fluorescence Anorescence Angiography for Evaluation of Aneurysm Perfusion and Parent Artery Patency in Rat and Rabbit Aneurysm
Summary
Nous présentons un protocole pour évaluer efficacement la perfusion d’anévrisme et la patency de navire de l’aneurysm latéral chez les rats et les lapins, utilisant l’angiographie vidéo fluorescence fluorécéine à base de fluorénémine (FVA). Avec une valeur prédictive positive de 92,6 %, il s’agit d’une méthode simple mais très efficace et économique, sans équipement spécial requis.
Abstract
Le traitement de l’anévrisme cérébral se concentre sur la réalisation de l’occlusion complète, ainsi que la préservation du flux sanguin dans l’artère parente. Fluorescein sodium et vert endocyanine sont utilisés pour permettre l’observation de la circulation sanguine et l’état de perfusion des vaisseaux, respectivement. L’objectif de cette étude est d’appliquer fVA pour vérifier le flux sanguin en temps réel, l’état de perfusion des vaisseaux et l’occlusion des anévrismes après l’induction d’anévrismes latéraux chez les lapins et les rats, ainsi que de valider la procédure chez ces espèces.
Vingt aneurysms de paroi latérale ont été créés dans 10 lapins en suçant une poche décellularisée de récipient artérielle sur l’artère carotide d’un lapin de distributeur. En outre, 48 aneurysms microchirurgicaux de paroi latérale ont été créés chez 48 rats. Pendant le suivi à un mois après la création, le complexe d’artère/aneurysm de parent a été disséqué et FVA a été exécuté utilisant une injection intraveineuse de fluorescein (10%, 1 ml) par l’intermédiaire d’un cathéterization de veine d’oreille chez des lapins et d’une cathérisation fémorale de veine chez les rats. Des aneurysms ont alors été moissonnés, et la patency a été évaluée macroscopiquement.
Macroscopiquement, 14 aneurysms sur 16 chez les lapins n’ont indiqué aucune perfusion résiduelle d’artère parente avec le luminae totalement occluded, cependant 11 (79%) ont été détectés par FVA. Quatre anévrismes ont été exclus en raison de problèmes techniques. Chez les rats, la perfusion résiduelle d’anévrisme a été macroscopiquement observée dans 25 des 48 cas. Des 23 preuves macroscopiques de perfusion, FVA a confirmé l’incidence de 22 aneurysms (96%). Il n’y avait aucun événement défavorable lié à FVA. La fluorescéine est facilement applicable et aucun équipement spécial n’est nécessaire. Il s’agit d’une méthode sûre et extrêmement efficace pour évaluer l’intégrité de l’artère parente et la patence de l’anévrisme / perfusion résiduelle dans un cadre expérimental avec des lapins et des rats. FVA utilisant la fluorescéine comme agent de contraste semble être efficace en contrôlant la patency des aneurysms et du vaisseau sous-jacent et peut même être adapté à la chirurgie de déviation.
Introduction
L’évidence de l’oblitération complète d’aneurysm et de l’intégrité d’artère de parent est de la plus haute importance dans la chirurgie d’aneurysm. Il y a plusieurs options pour confirmer la patency d’artère de parent et l’occlusion d’aneurysm, telle que l’échographie de Doppler, l’angiographie cérébrale conventionnelle (DSA), l’angiographie calculée de tomographie (CTA) ou l’angiographie de résonance magnétique (MRA) 1,, 2. Cependant, il s’agit de méthodes coûteuses et longues qui ne sont souvent pas disponibles en laboratoire. En outre, ils peuvent avoir des effets secondaires pertinents tels que l’exposition aux radiations ou le besoin d’une sédation supplémentaire des animaux expérimentaux pour éviter l’artefact de mouvement.
Avec l’émergence d’un nombre croissant de nouveaux dispositifs endovasculaires, il y a un besoin consécutif d’essais précliniques de tels dispositifs. Cependant, ces études s’appuient souvent sur l’analyse post mortem (p. ex., macropathologie et histologie) et manquent d’information sur la perfusion dynamique. En outre, pour le chercheur, il peut être crucial d’obtenir des informations immédiates et fiables au cours d’une intervention chirurgicale expérimentale. L’angiographie fluorescence est une technique de visualisation rentable et facile à réaliser1,3,4.
En tant que tel, l’angiographie vidéo en vert endocyanine (ICG) est souvent utilisée dans les procédures neurochirurgicales cliniques et a été largement étudiée5,6. L’angiographie vidéo fluorescéine (FVA) est une technique alternative, avec l’avantage supplémentaire de créer un signal de fluorescence qui est dans la plage de longueur d’onde de la vision humaine, et peut donc être vu à l’œil nu sans une caméra infrarouge à spectre étendu 7. L’angiographie vidéo de fluorescein est moins souvent employée dans la chirurgie cérébrovasculaire clinique et les rapports sur FVA dans les arrangements expérimentaux sont rares1,4.
L’objectif de ce rapport est de démontrer la faisabilité et la portée des applications de l’AVA dans la recherche cérébrovasculaire préclinique de rat et de lapin.
Protocol
Representative Results
Discussion
FVA est une méthode prometteuse et simple pour examiner les navires chez les rongeurs et peut être effectuée avec des dispositifs commerciaux et de l’équipement sur le marché. FVA peut être mis en œuvre au cours de toute chirurgie où l’évaluation peropératoire de l’intégrité des navires est nécessaire que les vaisseaux ont besoin d’une dissection appropriée d’abord.
Les auteurs ont préféré l’injection veineuse à l’injection artérielle due au plus faible risque d’événements…
Divulgazioni
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Cette étude a été soutenue en partie par une subvention de recherche du Kantonsspital Aarau, en Suisse.
Materials
| For rabbits | |||
| Aluminium foil | |||
| Animal shaver | |||
| Black tape | |||
| Blue filter | Thorlabs MF475-35 | ||
| Body warm plate | |||
| Camera | Sony NEX-5R | ||
| Catheter | 22G Vasofix Safety | ||
| Disinfictant | |||
| Fluorescein sodium | Fluorescein Faure 10% | ||
| Glas plate | |||
| Green filter | Thorlabs MF539-43 | ||
| Incontinence pad | |||
| Infusion pump | Perfusor Secura | ||
| Ketamine hydrochloride | any generic products | ||
| Needle | 25G | ||
| Oxygen | |||
| Ringer's Solution | |||
| Sterile sheets | |||
| Surgical instruments | micro forceps, micro scissor, blunt surgical scissor | ||
| Surgical microscope | OPMI, Carl Zeiss AG, Oberkochen, Germany | ||
| Syringe 2ml, 5ml, 50ml | |||
| Tape | |||
| Three-way-stopcock | |||
| Torch light | |||
| Xylazin | any generic products | ||
| For rats | |||
| Aluminium foil | |||
| Animal shaver | |||
| Black tape | |||
| Blue filter | Thorlabs MF475-35 | ||
| Body warm plate | |||
| Camera | Sony NEX-5R | ||
| Disinfictant | |||
| Fluorescein sodium | Fluorescein Faure 10% | ||
| Green filter | Thorlabs MF539-43 | ||
| Incontinence pad | |||
| Isoflurane | |||
| Ketamine hydrochloride | any generic products | ||
| Medetomidine hydrochloride | any generic products | ||
| Needle | 25G | ||
| Oxygen | |||
| Plate | |||
| Ringer's Solution | |||
| Sterile sheets | |||
| Surgical instruments | micro forceps, micro scissor, blunt surgical scissor | ||
| Surgical microscope | OPMI, Carl Zeiss AG, Oberkochen, Germany | ||
| Syringe 2ml, 5ml | |||
| Tape | |||
| Torch light | |||
Riferimenti
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