Summary

Análise da localização de snRNA Spliceosomal em células HeLa humanas usando microinjeção

Published: August 06, 2019
doi:

Summary

A biogênese de snRNAs spliceosomal é um processo complexo envolvendo vários compartimentos celulares. Aqui, nós empregamos o microinjection de snrnas cDNAs etiquetado a fim monitorar seu transporte dentro da pilha.

Abstract

A biogênese de snRNAs spliceosomal é um processo complexo envolvendo ambas as fases nuclear e citoplasmática e o último passo ocorre em um compartimento nuclear chamado corpo de Cajal. No entanto, as sequências que direcionam a localização de snRNA para esta estrutura subnuclear não foram conhecidas até recentemente. Para determinar seqüências importantes para a acumulação de snrnas em corpos de Cajal, nós empregamos o microinjection de snrnas cDNAs etiquetado seguido por sua localização dentro das pilhas. Primeiramente, nós preparamos mutantes do apagamento de snRNA, moldes sintetizados do ADN para in vitro a transcrição e transcrito snRNAs na presença de UTP acoplado com Alexa488. Os snRNAs rotulados foram misturados com 70 kDa-Dextran conjugados com TRITC, e microinjetado no núcleo ou no citoplasma de células HeLa humanas. As células foram incubadas por 1 h e fixadas e a coilina do marcador do corpo de Cajal foi visualizada por imunofluorescência indireta, enquanto snRNAs e Dextran, que serve como marcador de injeção nuclear ou citoplasmática, foram observados diretamente com um microscópio de fluorescência. Este método permite o teste eficiente e rápido de como as várias seqüências influenciam a localização do RNA dentro das pilhas. Aqui, mostramos a importância da sequência de ligação SM para uma localização eficiente de snRNAs no corpo de Cajal.

Introduction

A emenda do RNA é uma das etapas cruciais na expressão de Gene, que é catalisada por um grande complexo do ribonucleoprotein chamado o spliceosome. No total, mais de 150 proteínas e 5 RNAs nucleares pequenas (snrnas) são integrados no spliceossoma em estágios diferentes da via de emenda. U1, U2, U4, U5 e U6 snRNAs estão participando na emenda dos principais introns GU-AG. Estes snrnas juntam-se ao spliceossoma como partículas nucleares pequenas pré-formadas do ribonucleoprotein (snRNPs) que contêm snRNA, sete proteínas do SM associadas com o snRNA (ou proteínas de like-SM, que associam com o snRNA U6) e 1-12 proteínas específicas para cada snRNP.

A montagem de snRNPs envolve estágios citoplasmáticos e nucleares. O snRNA recentemente transcrito é exportado para o citoplasma onde adquire um anel montado a partir de sete proteínas SM. O anel SM, subsequentemente, serve como um sinal para snRNA re-importação de volta para o núcleo. SnRNAs defeituosos que não conseguem associar com proteínas SM são retidos no citoplasma1. Os snRNPs recém-importados aparecem pela primeira vez no corpo de Cajal, onde eles atendem às proteínas específicas de snRNP e terminam sua maturação (revisada na referência2,3). Nós mostramos recentemente que a inibição de etapas finais da maturação conduz ao sequestro de snRNPs imaturos em corpos de Cajal4,5. Nós propusemos um modelo onde a maturação final de snRNP esteja o controle de qualidade que monitora a adição de proteínas snRNP-específicas e a formação de snRNPs ativo. Entretanto, os detalhes moleculars de como as pilhas distinguem entre as partículas imaturas maduras e aberrantes corretamente montadas permanecem indescritível.

Para determinar as sequências de snRNA que são essenciais para o direcionamento e acúmulo de snrnas em corpos nucleares de Cajal, decidimos empregar microinjeção de snrnas rotulados com cDNAs. A microinjeção foi um método de escolha porque: 1) não requer uma tag de seqüência adicional para distinguir snRNAs sintéticos formam suas contrapartes endógenas que é especialmente importante para RNAs curtas com pouco espaço para inserção de seqüência de Tags extra; 2) permite a análise de sequências que são importantes para a biogênese. Por exemplo, a sequência SM é essencial para o conjunto do anel SM e re-importar para o núcleo6. Quando snRNAs são expressos na célula, snRNAs faltando a seqüência SM são degradadas no citoplasma e não atingem o núcleo e corpos Cajal7. Entretanto, snrnas sem a seqüência do SM pode diretamente ser injetado no núcleo e assim um papel potencial da seqüência do SM na localização do corpo de Cajal assayed.

Aqui, nós descrevemos em detalhe um método do microinjection que nós aplicamos para determinar as seqüências de snRNA necessárias para alvejar snRNAs no corpo5de Cajal. Nós mostramos que os locais obrigatórios do SM e do SMN são junto necessário e suficiente localizar não somente snRNAs mas vários RNAs não-codificando curtos no corpo de Cajal. Com base na microinjeção, bem como outras evidências, propusemos que o anel SM montado no local de ligação SM é o sinal de localização do corpo Cajal.

Protocol

1. preparação de snRNAs para microinjection Prepare um molde do ADN que contem a versão full-length ou truncada/Mutated de snRNA pelo PCR usando uma seguinte configuração do PCR: 98 ° c para 60 s, 98 ° c para 15 s, 68 ° c para 30 s, 72 ° c para 1 minuto, 98 ° c para 15 s para 35x e 72 ° c por 5 min. O primer dianteiro deve conter uma sequência de promotor para a transcrição in vitro apenas a montante do primeiro nucleotídeo transcrito. Amplify a seqüência de snRNA U2 usando o primer d…

Representative Results

Para monitorar a localização de snRNA e o papel do local obrigatório do SM na segmentação do corpo de Cajal, nós preparamos um molde do ADN que contem o promotor T7 e o snRNA U2 completo ou o snRNA U2 que faltam os sete nucleotídeos (auuuuug) que formam o local obrigatório do SM. os snRNAs foram transcritos in vitro, isolados e misturados com Dextran-70kDa acoplado ao TRITC. Nós injetado a mistura que contem in vitro o snRNA transcrito no núcleo ou no citoplasma de pilhas de Hela. Fo…

Discussion

Nós empregamos o microinjection de snrnas cDNAs etiquetado para determinar as seqüências importantes para a localização de snRNA em corpos nucleares de Cajal. Devido à preparação rápida e rather simples de RNAs etiquetado (preparação do molde do ADN pelo PCR seguido pela transcrição in vitro) o método oferece a análise eficaz de como as várias seqüências contribuem à localização do RNA. Em tempo relativamente curto, pudemos analisar dez diferentes exclusões ou substituições do snRNA U2 (referênci…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi apoiado pela Czech Science Foundation (18-10035S), o programa nacional de sustentabilidade I (LO1419), apoio institucional (RVO68378050), o Fundo Europeu de desenvolvimento regional (CZ. 02.1.01/0.0/0.0/16_013/0001775) e a agência de subvenção da Universidade de Charles (GAUK 134516). Nós reconhecemos mais a facilidade do núcleo da microscopia de luz, IMG CAS, Praga, República Checa (apoiado por concessões (Czech-BioImaging-LM2015062).

Materials

ChromaTide Alexa fluor 488-5-UTP ThermoFisher C11403 Stock concentration 1 mM
Dulbecco's Modified Eagle Medium – high glucose Sigma-Aldrich D5796 Containing 4.5 g⁄L D-glucose, Phenol red and antibiotics
FemtoJet express Injector Eppendorf 5247000013
Femtotips II Eppendorf 930000043 Microinjection needle of 0.5 µm inner and 0.7 µm outer diameter
Fluoromont G with DAPI SouthernBiotech 0100-20
Glycogen ThermoFisher AM9510 Stock concentration 5 mg/mL
Gridded Glass Coverslips Ibidi 10817 Coverslips with a grid, no direct experience with them
InjectMan NI 2 Micromanipulator Eppendorf 5181000017
m3-2,2,7G(5')ppp(5')G trimethyled cap analogue Jena Bioscience NU-853-1 Stock concentration 40 mM
MEGAshortscript T7 Transcription Kit ThermoFisher AM1354
Microscope Cover Glasses 12 mm, No. 1 Paul Marienfeld GmbH 111520 For routine work
Microscope Cover Glasses 12 mm, No. 1.5 Paul Marienfeld GmbH 117520 For high resolution images
Microscope DeltaVision GE Healthcare For image acquisition
Microscope DMI6000 Leica For microinjection
Paraformaldehyde 32% solution EM grade EMS 15714 Dissolved in PIPES to the final concentration 4%
Phenol:Chloroform 5:1 Sigma-Aldrich P1944
Primers for U2 amplification: Forward: 5’-TAATACGACTCACTATAGGGATCGCTTCTCGGCCTTTTGG,
Reverse: 5´ TGGTGCACCGTTCCTGGAGGT
Sigma-Aldrich T7 rpromoter sequence in italics
Phusion High Fidelity DNA polymerase BioLab M0530L
RNasin Plus Promega N2615 Stock concentration 40 mM
Tetramethylrhodamine isothiocyanate Dextran 65-85 kDa Sigma-Aldrich T1162 Dissolved in water, stock concentration 1 mg/mL
Triton-X100 Serva 37240 Dissolved in water, stock concentration 10%

Riferimenti

  1. Ishikawa, H., et al. Identification of truncated forms of U1 snRNA reveals a novel RNA degradation pathway during snRNP biogenesis. Nucleic Acids Research. 42 (4), 2708-2724 (2014).
  2. Stanek, D. Cajal bodies and snRNPs – friends with benefits. RNA Biology. 14 (6), 671-679 (2017).
  3. Stanek, D., Fox, A. H. Nuclear bodies: news insights into structure and function. Curentr Opinion in Cell Biology. 46, 94-101 (2017).
  4. Novotny, I., et al. SART3-Dependent Accumulation of Incomplete Spliceosomal snRNPs in Cajal Bodies. Cell Reports. 10, 429-440 (2015).
  5. Roithova, A., et al. The Sm-core mediates the retention of partially-assembled spliceosomal snRNPs in Cajal bodies until their full maturation. Nucleic Acids Research. 46 (7), 3774-3790 (2018).
  6. Fischer, U., Sumpter, V., Sekine, M., Satoh, T., Luhrmann, R. Nucleo-cytoplasmic transport of U snRNPs: definition of a nuclear location signal in the Sm core domain that binds a transport receptor independently of the m3G cap. EMBO Journal. 12 (2), 573-583 (1993).
  7. Shukla, S., Parker, R. Quality control of assembly-defective U1 snRNAs by decapping and 5'-to-3' exonucleolytic digestion. Proceeding of the National Academy of U S A. 111 (32), E3277-E3286 (2014).
  8. Weil, T. T., Parton, R. M., Davis, I. Making the message clear: visualizing mRNA localization. Trends in Cell Biology. 20 (7), 380-390 (2010).
  9. Klingauf, M., Stanek, D., Neugebauer, K. M. Enhancement of U4/U6 small nuclear ribonucleoprotein particle association in Cajal bodies predicted by mathematical modeling. Molecular Biology of the Cell. 17 (12), 4972-4981 (2006).
  10. Mhlanga, M. M., Vargas, D. Y., Fung, C. W., Kramer, F. R., Tyagi, S. tRNA-linked molecular beacons for imaging mRNAs in the cytoplasm of living cells. Nucleic Acids Research. 33 (6), 1902-1912 (2005).
check_url/it/59797?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Roithová, A., Staněk, D. Analysis of Spliceosomal snRNA Localization in Human Hela Cells Using Microinjection. J. Vis. Exp. (150), e59797, doi:10.3791/59797 (2019).

View Video