Summary

비오틴 라벨을 사용하여 단백질-핵산 상호 작용을 연구하는 생체외 생화학 적 분석을 통해

Published: July 17, 2019
doi:

Summary

여기에 제시된 단백질-핵산 상호작용을 연구하기 위해 널리 적용될 수 있는 비오틴 라벨을 이용한 시험관내 생화학적 분석에 대한 프로토콜이다.

Abstract

단백질 핵산 상호 작용은 전사, 재조합 및 RNA 대사와 같은 생물학적 과정에 중요한 역할을 합니다. 단백질-핵산 상호 작용을 연구하는 실험 방법은 특정 표적 분자를 검출하고 분석하기 위해 형광 태그, 방사성 동위원소 또는 기타 라벨을 사용해야 합니다. 비방사성 핵산 라벨인 비오틴은 전기영동 이동성 이동 분석(EMSA)에 일반적으로 사용되지만 핵산 과정 중 단백질 활성을 모니터링하기 위해 정기적으로 사용되지는 않았습니다. 이 프로토콜은 시험관 내 효소 반응 동안 비오틴 라벨링의 유용성을 보여 주며, 이 라벨이 다양한 생화학 적 분석과 잘 작동한다는 것을 보여줍니다. 구체적으로, 방사성 동위원소 32P표지 기판을 이용한 이전 연구 결과와 일치하여, BIOTin 표지된 EMSA를 통해 MEIOB(특히 메오틱 재조합에 관여하는 단백질)가 DNA 결합 단백질인 MOV10( RNA 헬리콥터)는 비오틴 표지RNA 이중 구조를 해결하고, MEIOB는 바이오틴 표지된 단일 가닥 DNA를 절단한다. 이 연구는 비오틴이 시험관 내에서 다양한 핵산 관련 생화학 적 세포학적 인 세포학적 인 세포학적 인 분석을 32 P로 대체 할 수 있음을 보여줍니다.

Introduction

단백질 핵산 상호 작용은 DNA 복구, 복제, 전사, RNA 처리 및 번역과 같은 많은 필수 세포 프로세스에서 관련시다. 염색질 내의 특정 DNA 서열과의 단백질 상호 작용은 전사 수준 1에서유전자 발현의 엄격한 제어를 위해 요구된다. 수많은 코딩 및 비코딩 RNA의 정확한 사후 상사 조절은 어떤 단백질과 RNA2사이 광범위하고 복잡한 상호 작용을 필요로 합니다. 유전자 발현 조절 메커니즘의 이 층은 그들의 핵산 표적을 가진 전사/후성 유전학 요인 또는 RNA 결합 단백질의 상호 작용에 의해 조정되는 동적 분자 간 사건의 폭포를 포함합니다, 뿐만 아니라 단백질-단백질 상호 작용. 생체 내 단백질이 핵산과 직간접적으로 연관되어 있는지, 그러한 연관성이 어떻게 발생하고 절정에 이르는지 에 대해 해부하기 위해, 시험관내 생화학적 세포학적 인 화학 적 분석을 실시하여 관심 있는 단백질의 결합 친화도 또는 효소 활성을 조사하기 위해 수행됩니다. DNA 및/또는 RNA의 설계 기판.

전기영동성이동분석법(EMSA)을 포함한 핵산-단백질 복합체를 검출하고 특성화하기 위해 많은 기술이 개발되었으며, 겔 지연 분석 또는밴드 시프트 분석법 3,4,5 . EMSA는 핵산과 단백질의 직접 결합을 연구하는 데 널리 사용되는 다재다능하고 민감한 생화학 적 방법입니다. EMSA는 비오틴 라벨6,7, 형광 표지8,9,또는 에 의해 검출하기 위해 화학 발광을 사용하여 일상적으로 시각화되는 밴드의 겔 전기 영동 변화에 의존합니다. 방사성 32P 라벨10,11의자가 방사선 사진 . 생화학적 연구의 다른 목적은 핵산 기질(12)으로부터 의 분열 생성물을 평가하기 위한 뉴클레아제 기반 반응과 같은단백질의 핵산 처리 활성의 식별 및 특성화이다. 13세 , 도 14 및 DNA/RNA 구조-풀림-풀림 검사-헬리콥터 활동을 평가 하는15,16,17.

이러한 효소 활성 검법에서, 방사성 동위원소 표지 또는 형광부 표지 핵산은 그들의 높은 감도로 인해 종종 기질로서 사용된다. 32P 표지된 방사선 추적기를 관련시키는 효소 반응의 방사선 사진의 분석은 민감하고 재현 가능한18인것을 발견되었습니다. 그러나 전 세계적으로 점점 더 많은 실험실에서 방사성 동위원소의 사용은 잠재적 노출과 관련된 건강 위험으로 인해 제한되거나 심지어 금지됩니다. 생체 안전 문제 외에도 방사성 동위원소, 필요한 방사능 허가, 32P의 짧은 반감기 (약 14 일), 프로브 품질의 점진적 저하로 인해 작업을 수행하는 데 필요한 장비가 필요합니다. 방사선 요법. 따라서, 대체 비동위원소 적 방법이 개발되었다(즉, 형광로 프로브에 라벨을 부착하면 형광이미징(19)에의한 검출이 가능하게 된다). 그러나 형광 표지 프로브를 사용할 때는 고해상도 이미징 시스템이 필요합니다. 일반적으로 사용되는 라벨인 비오틴은 단백질과 핵산과 같은 생물학적 거대분자에 쉽게 결합합니다. 비오틴-스트렙타비딘 시스템은 비특이적배경(20,21)을증가시키지 않고 효율적으로 작동하고 검출 감도를 향상시킨다. EMSA 외에, 비오틴은 단백질 정제 및 RNA 풀다운에 널리 사용되며, 그 중에서도22,23,24.

이 프로토콜은 성공적으로 BIOTIN이 일반적으로 사용되지 않은 효소 반응 이외에 EMSA를 포함하는 시험관 내 생화학 분석문을 위한 기질로 비오틴 표지된 핵산을 이용합니다. MEIOB OB 도메인은 생성되고 2개의 돌연변이체(잘림 및 점 돌연변이)는 GST 융합 단백질25,26,27뿐만아니라 마우스 MOV10 재조합 FLAG 융합 단백질16으로발현된다. 이 보고는 그잡다한 실험 목적을 위한 단백질 정제 및 비오틴 표지된 분석실험을 위한 이 결합된 프로토콜의 효과를 강조합니다.

Protocol

1. 단백질 준비 MEIOB 및 MOV10 식 구문cDNA 발현 구문 생성 마우스 MEIOB-A, C 및 E(도1A)및 MOV10을 인코딩한다. 각 단편에 대한 중합효소 연쇄 반응(PCR) 반응을 설정합니다. 마우스 cDNA 1 μL(C57BL/6 마우스 고환), dNTP 1 μL, 10 μM 포워드 프라이머 2 μL, 10 μM 리버스 프라이머 2 μL, DNA 폴리머라제 1μL, 2x PCR 완충제 25μL, 이중 증류H2O(ddH 2O) 18μL 5…

Representative Results

본 연구에서 사용되는 MEIOB및 발현 구조의 단백질 구조는 도 1A에예시되어 있다. MEIOB의 OB 접기는 단일 가닥 핵산을 인식하고 상호 작용할 수 있는 소형 배럴형 구조입니다. OB 도메인 중 하나(aa 136-307, 구성 A)는 단일 가닥 DNA(ssDNA), 잘린 단백질(aa 136-178 잘림, 구성 C) 및 MEIOB의 점 돌연변이 형태(R235A 돌연변이, 구성 E)를 결합하여 DNA 결합 활성26을?…

Discussion

단백질-핵산 상호 작용을 조사하는 것은 다양한 생물학적 과정의 근본적인 분자 메커니즘에 대한 우리의 이해에 매우 중요합니다. 예를 들어, MEIOB는 포유류25,26,27에서만이기와 불임에 필수적인 고환 특이적 단백질이다. MEIOB는 단일 가닥 DNA에 결합하고 meiotic 재결합 동안 의 생리적 관련성에 직접적으로 관련되는 3′ 5′ 외핵활?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

우리는 도움이 편집 및 토론에 대한 P. 제레미 왕 (펜실베니아 대학)에 감사드립니다. 우리는 또한 언어 편집시그리드 에카르트에게 감사드립니다. K. Z.는 중국의 국가 핵심 R&D 프로그램(2016YFA0500902, 2018YFC1003500)과 중국 국립자연과학재단(31771653)의 지원을 받았습니다. L. Y.는 중국 국립 자연 과학 재단 (81471502, 31871503)과 장쑤성의 혁신및 기업가 프로그램에 의해 지원되었습니다. J. N. 절강 의료 과학 기술 프로젝트 (2019KY499)에 의해 지원되었다. M. L.은 중국 국립 자연과학 재단(31771588)과 1000청소년 인재 계획의 보조금으로 지원되었습니다.

Materials

Equipment
Centrifuge Eppendorf, Germany 5242R
Chemiluminescent Imaging System Tanon, China 5200
Digital sonifer Branson, USA BBV12081048A 450 Watts; 50/60 HZ
Semi-dry electrophoretic blotter Hoefer, USA TE77XP
Tube Revolver  Crystal, USA 3406051
UV-light cross-linker UVP, USA CL-1000
Materials
Amicon Ultra-4 Centrifugal Filter  Milipore, USA UFC801096 4 ml/10 K
Nylon membrane Thermo Scientific, USA TG263940A
TC-treated Culture Dish Corning, USA 430167 100 mm 
TC-treated Culture Dish Corning, USA 430597 150 mm 
Microtubes tubes AXYGEN, USA MCT-150-C 1.5 mL 
Tubes Corning, USA 430791 15 mL
Reagents 
Ampicillin SunShine Bio, China 8h288h28
Anti-FLAG M2 magnetic beads Sigma, USA M8823
ATP Thermo Scientific, USA 591136
BCIP/NBT Alkaline Phosphatase Color Development Kit Beyotime, China C3206
CelLyticTM M Cell Lysis Reagent  Sigma, USA 107M4071V
ClonExpress II one step cloning kit  Vazyme, China C112
Chemiluminescent Nucleic Acid Detection Kit Thermo Scientific, USA T1269950
dNTP Sigma-Aldrich, USA DNTP100-1KT
DMEM Gibco, USA 10569044
DPBS buffer Gibco, USA 14190-136
EDTA Invitrogen, USA AM9260G 0.5 M
EDTA free protease inhibitor cocktail Roche, USA 04693132001
EndoFree Maxi Plasmid Kit  Vazyme, China  
DC202
FastPure Gel DNA Extraction Mini Kit Vazyme, China DC301-01
FBS Gibco, USA 10437028
FLAG peptide Sigma, USA F4799
Glycerol Sigma, USA SHBK3676
GST Bulk Kit GE Healthcare, USA 27-4570-01
HEPES buffer Sigma, USA SLBZ2837 1 M 
IPTG Thermo Scientific, USA 34060
KoAc Sangon Biotech, China 127-08-02
Lipofectamin 3000 Transfection Reagent Thermo Scientific, USA L3000001
MgCl2 Invitrogen, USA AM9530G 1 M
NaCl Invitrogen, USA AM9759
 
5 M 
NP-40 Amresco, USA M158-500ML
Opti-MEM medium Gibco, USA 31985062
PBS Gibco, USA 10010023 PH 7.4
RNase Inhibitor Promega, USA N251B
Streptavidin alkaline phosphatase Promega, USA V5591
TBE Invitrogen, USA 15581044
Tris-HCI Buffer  Invitrogen, USA 15567027 1 M, PH 7.4
Tris-HCI Buffer  Invitrogen, USA 15568025 1 M, PH 8.0
Tween-20 Sangon Biotech, China A600560

Riferimenti

  1. Bai, S., et al. Sox30 initiates transcription of haploid genes during late meiosis and spermiogenesis in mouse testes. Development. 145 (13), (2018).
  2. Watanabe, T., Lin, H. Posttranscriptional regulation of gene expression by Piwi proteins and piRNAs. Molecular Cell. 56 (1), 18-27 (2014).
  3. Alonso, N., Guillen, R., Chambers, J. W., Leng, F. A rapid and sensitive high-throughput screening method to identify compounds targeting protein-nucleic acids interactions. Nucleic Acids Research. 43 (8), 52 (2015).
  4. Hwang, H., Myong, S. Protein induced fluorescence enhancement (PIFE) for probing protein-nucleic acid interactions. Chemical Society Reviews. 43 (4), 1221-1229 (2014).
  5. Gustafsdottir, S. M., et al. In vitro analysis of DNA-protein interactions by proximity ligation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (9), 3067-3072 (2007).
  6. Li, Y., Jiang, Z., Chen, H., Ma, W. J. A modified quantitative EMSA and its application in the study of RNA–protein interactions. Journal of Biochemical and Biophysical Methods. 60 (2), 85-96 (2004).
  7. Fahrer, J., Kranaster, R., Altmeyer, M., Marx, A., Burkle, A. Quantitative analysis of the binding affinity of poly(ADP-ribose) to specific binding proteins as a function of chain length. Nucleic Acids Research. 35 (21), 143 (2007).
  8. Hsieh, Y. W., Alqadah, A., Chuang, C. F. An Optimized Protocol for Electrophoretic Mobility Shift Assay Using Infrared Fluorescent Dye-labeled Oligonucleotides. Journal of Visualized Experiments. (117), (2016).
  9. Yan, G., et al. Orphan Nuclear Receptor Nur77 Inhibits Cardiac Hypertrophic Response to Beta-Adrenergic Stimulation. Molecular and Cellular Biology. 35 (19), 3312-3323 (2015).
  10. Hellman, L. M., Fried, M. G. Electrophoretic mobility shift assay (EMSA) for detecting protein-nucleic acid interactions. Nature Protocols. 2 (8), 1849-1861 (2007).
  11. Fillebeen, C., Wilkinson, N., Pantopoulos, K. Electrophoretic mobility shift assay (EMSA) for the study of RNA-protein interactions: the IRE/IRP example. Journal of Visualized Experiments. (94), (2014).
  12. Nishida, K. M., et al. Hierarchical roles of mitochondrial Papi and Zucchini in Bombyx germline piRNA biogenesis. Nature. 555 (7695), 260-264 (2018).
  13. Anders, C., Jinek, M. In vitro enzymology of Cas9. Methods in Enzymology. 546, 1-20 (2014).
  14. Zhao, H., Zheng, J., Li, Q. Q. A novel plant in vitro assay system for pre-mRNA cleavage during 3′-end formation. Plant Physiology. 157 (3), 1546-1554 (2011).
  15. Vourekas, A., et al. The RNA helicase MOV10L1 binds piRNA precursors to initiate piRNA processing. Genes & Development. 29 (6), 617-629 (2015).
  16. Gregersen, L. H., et al. MOV10 Is a 5′ to 3′ RNA helicase contributing to UPF1 mRNA target degradation by translocation along 3′ UTRs. Molecular Cell. 54 (4), (2014).
  17. Talwar, T., et al. The DEAD-box protein DDX43 (HAGE) is a dual RNA-DNA helicase and has a K-homology domain required for full nucleic acid unwinding activity. The Journal of Biological Chemistry. 292 (25), 10429-10443 (2017).
  18. Nagy, N. M., Konya, J. Study of fast and slow consecutive processes by heterogeneous isotope exchange using P-32 radiotracer. Journal of Radioanalytical And Nuclear Chemistry. 318 (3), 2349-2353 (2018).
  19. Wilson, D. L., Beharry, A. A., Srivastava, A., O’Connor, T. R., Kool, E. T. Fluorescence Probes for ALKBH2 Allow the Measurement of DNA Alkylation Repair and Drug Resistance Responses. Angewandte Chemie. 57 (39), 12896-12900 (2018).
  20. Wilchek, M., Bayer, E. A., Livnah, O. Essentials of biorecognition: the (strept)avidin-biotin system as a model for protein-protein and protein-ligand interaction. Immunology Letters. 103 (1), 27-32 (2006).
  21. Trippier, P. C. Synthetic strategies for the biotinylation of bioactive small molecules. ChemMedChem. 8 (2), 190-203 (2013).
  22. Rodgers, J. T., Patel, P., Hennes, J. L., Bolognia, S. L., Mascotti, D. P. Use of biotin-labeled nucleic acids for protein purification and agarose-based chemiluminescent electromobility shift assays. Analytical Biochemistry. 277 (2), 254-259 (2000).
  23. Panda, A. C., Martindale, J. L., Gorospe, M. Affinity Pulldown of Biotinylated RNA for Detection of Protein-RNA Complexes. Bio-Protocol. 6 (24), (2016).
  24. Bednarek, S., et al. mRNAs biotinylated within the 5′ cap and protected against decapping: new tools to capture RNA – protein complexes. Philosophical Transactions Of the Royal Society B-Biological Sciences. 373 (1762), (2018).
  25. Souquet, B., et al. MEIOB Targets Single-Strand DNA and Is Necessary for Meiotic Recombination. Plos Genetics. 9 (9), (2013).
  26. Luo, M., et al. MEIOB exhibits single-stranded DNA-binding and exonuclease activities and is essential for meiotic recombination. Nature Communications. 4, 2788 (2013).
  27. Xu, Y., Greenberg, R. A., Schonbrunn, E., Wang, P. J. Meiosis-specific proteins MEIOB and SPATA22 cooperatively associate with the single-stranded DNA-binding replication protein A complex and DNA double-strand breaks. Biology of Reproduction. 96 (5), 1096-1104 (2017).
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Citazione di questo articolo
Yu, L., He, W., Xie, J., Guo, R., Ni, J., Zhang, X., Xu, Q., Wang, C., Yue, Q., Li, F., Luo, M., Sun, B., Ye, L., Zheng, K. In Vitro Biochemical Assays using Biotin Labels to Study Protein-Nucleic Acid Interactions. J. Vis. Exp. (149), e59830, doi:10.3791/59830 (2019).

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