Summary

التمايز من الثدي الماوس HC11 وخلايا EpH4

Published: February 27, 2020
doi:

Summary

نحن نصف تقنيات الاستقراء التمايز من اثنين من خطوط الظهارية الثدي، HC11 و EpH4. في حين أن كلا تتطلب مصل ربلة الساق الجنين, الأنسولين, والبرولاكتين لإنتاج بروتينات الحليب, خلايا EpH4 يمكن أن تفرق تماما في الغلاف الشعاعي للثدي في ثقافة ثلاثية الأبعاد. وهذه النماذج التكميلية مفيدة لدراسات نقل الإشارات عن التمايز والأورام.

Abstract

الكادهيرين تلعب دورا هاما في تنظيم التمايز الخلية وكذلك الأورام. هنا نصف أصول وأساليب تحريض التمايز من اثنين من خطوط الخلايا الظهارية الثدي الماوس، HC11 وEpH4، واستخدامها لدراسة المراحل التكميلية لتطوير الغدة الثديية والتحول النيوبلاستيك.

وHC11 الماوس الثدي الظهارية خط الخلية نشأت من الغدة الثديية من حبل الحمل / ج الماوس. فإنه يميز عندما نمت إلى التقاء تعلق على سطح طبق بيتري البلاستيك في المتوسط التي تحتوي على مصل ربلة الساق الجنين وHydrocortisone، أناnsulin وProlactin (HIP المتوسطة). في ظل هذه الظروف، تنتج خلايا HC11 بروتينات الحليب α-casein وبروتين مصل اللبن الحمضية (WAP)، على غرار الخلايا الظهارية الثديية المرضعة، وتشكل هياكل بدائية تشبه الغدة الثديية يطلق عليها “القباب”.

تم اشتقاق خط الخلية EpH4 من خلايا الغدة الثديية الظهارية للفأر ة الخالدة تلقائيًا والمعزولة عن فأر ة Balb/c الحامل. على عكس HC11، يمكن لخلايا EpH4 أن تفرق بشكل كامل إلى كرويدات (تسمى أيضًا الغلاف الشعاعي للثدي) عندما يتم استزراعها في ظل ظروف نمو ثلاثية الأبعاد (3D) في وسط HIP. الخلايا هي التربس، علقت في مصفوفة 20٪ تتكون من خليط من البروتينات مصفوفة خارج الخلية التي تنتجها Engelbreth-Holm-سرب (EHS) خلايا ساركوما الماوس، مطلي على الجزء العلوي من طبقة من مصفوفة مركزة طلاء طبق بيتري البلاستيك أو لوحة متعددة الآبار، وتغطي مع طبقة من 10٪ المتوسطة HIP التي تحتوي على مصفوفة. في ظل هذه الظروف، تشكل خلايا EpH4 كرويات جوفاء تحمل قطبية أبوية القاعدية، وهي تجويف أجوف، وتنتج الفيسين والواب.

باستخدام هذه التقنيات، أظهرت نتائجنا أن شدة إشارة الكادهيرين/راك أمر بالغ الأهمية للتمايز بين خلايا HC11. في حين أن Rac1 ضروري للتمايز والمستويات المنخفضة من تنشيط RacV12 زيادة التمايز، وارتفاع مستوياتV12 Rac كتلة التمايز في حين حفز الأورام. في المقابل ، تمثل خلايا EpH4 مرحلة مبكرة في التمايز الظهاري mammary ، والذي يتم تثبيطه حتى من خلال مستويات منخفضة من RacV12.

Introduction

في الأنسجة العادية أو الأورام ، والخلايا لديها فرص واسعة للالتصاق لجيرانها في منظمة ثلاثية الأبعاد ، وهذا يحاكي في الثقافة من قبل نمو الخلايا عالية الكثافة. يتم التوسط في الالتصاق من خلية إلى خلية بشكل رئيسي من خلال مستقبلات الكادهيرين ، والتي تحدد بنية الخلايا والأنسجة. ومن المثير للاهتمام، وقد ثبت مؤخرا أن الكاديرين تلعب أيضا دورا قويا في نقل الإشارات، وخاصة في البقاء على قيد الحياة إشارة1. ومن المفارقات أن بعض إشارات الالتصاق من الخلية إلى الخلية الصادرة من الكادهيرين وجدت مؤخراً أن كل من التمايز والأورام2مشتركة. هنا، ونحن نصف أساليب التعريفي وتقييم التمايز في نوعين تمثيليين من خطوط الخلايا الظهارية الثدي الماوس، HC11 وEpH4.

يمكن أن يوفر خط الخلية الظهارية للثدي من طراز HC11 نموذجًا مفيدًا لدراسة تمايز الخلايا الظهارية. خلايا HC11 هي خط خلية مشتق من COMMA-1D ، منتقاة من الغدة الثديية لفأرة Balb/c 3 الحامل متوسطةالحمل. على النقيض من غيرها من المستنسخين المشتقة COMMA-1D ، فإن استنساخ HC11 ليس لديه أي شرط لمصفوفة خارج الخلية المضافة أو الزراعة المشتركة مع أنواع الخلايا الأخرى للتحريض المختبري لجين اللاكسين الذاتي ة الذاتية بواسطة الهرمونات اللاكتراجينية3. وقد استخدم هذا الخط الخلية على نطاق واسع في دراسات التمايز لأنه احتفظ بخصائص هامة للظهارة الثديية العادية: يمكن لخلايا HC11 إعادة تشكيل ظهارة القناة جزئيًا فيوسادةالدهون الثديية 4 . وعلاوة على ذلك، فإنها يمكن أن تميز في ثقافة ثنائية الأبعاد (2D) عندما نمت إلى التقاء تعلق على سطح طبق بيتري البلاستيك في وجود الستيرويد مثل H ydrocortisone أو ديكساميثازون، بالإضافة إلى أناnsulin و P rolactin (HIP المتوسطة) تفتقر إلى عامل نمو البشرة (EGF)، وهو مثبط للتمايز 7. في ظل هذه الظروف، تنتج خلايا HC11 بروتينات الحليب مثل الفيسين والواب، والتي يمكن اكتشافها عن طريق النشاف الغربي في غضون 4 أيام بعد الحث. في الوقت نفسه ، يشكل جزء من خلايا HC11 هياكل بدائية تشبه الغدة الثديية يطلق عليها “القباب” بطريقة عشوائية. القباب مرئية 4-5 أيام بعد الاستقراء وزيادة تدريجية في الحجم حتى اليوم 10، بالتزامن مع زيادة في إنتاج الكيسينα 8. ومن المثير للاهتمام، خلايا HC11 تمتلك متحولة p53وبالتالي تمثل حالة preneoplastic. لهذا السبب، فإن نموذج HC11 مناسب بشكل مثالي لدراسة إشارات شبكات التمايز بالاقتران مع الأورام في نفس نظام الخلية.

خلايا EpH4 ، وهي مشتقة من خلايا IM-2 ، هي خط خلية غير مورم مشتق في الأصل من خلايا الغدة الثديية الماوس الخالدة تلقائيًا المعزولة عن الفأر ة Balb /c متوسطة الحمل10. تشكل خلايا EpH4 أحادية ظهارية مستمرة في ثقافة ثنائية الأبعاد ، ولكنها لا تفرق إلى هياكل تشبه الغدية10،11. ومع ذلك، بعد نمو 3D في مادة تتكون من خليط من البروتينات مصفوفة خارج الخلية التي تنتجها خلايا ساركوما الماوس EHS12 (مصفوفة EHS، مصفوفة، أو Matrigel، انظر جدول المواد)،بالإضافة إلى التحفيز مع HIP، يمكن لخلايا EpH4 تلخيص المراحل الأولية للتمايز الغدة الثديية. في ظل هذه الظروف، تشكل خلايا EpH4 كرويات (تسمى أيضًا الغلاف الشعاعي للثدي) التي تحمل قطبية أبوية والقاعدية وتجويف أجوف، وهي قادرة على إنتاج بروتينات الحليب α-casein و WAP، على غرار الخلايا الظهارية الثديية المرضعة. على عكس خلايا HC11 ، والتي هي غير متمايزة ، وبعض علامات mesenchymal التعبير13، EpH4 الخلايا يحمل مورفولوجيا مضيئة بحتة14. وقد أفيد أيضا خلايا EpH4 لإنتاج بروتينات الحليب في ثقافة 2D من خلال التحفيز مع ديكساميثازون, الأنسولين, والبرولاكتين15. ومع ذلك، فإن هذا النهج يمنع دراسة الآثار التنظيمية التي تحاكي البيئة الدقيقة للغدة الثديية في الثقافة ثلاثية الأبعاد.

Protocol

1. طلاء خلايا HC11 في غطاء تدفق لامينار باستخدام تقنيات معقمة إعداد زجاجة مع 50 مل من وسط الخلية HC11: RPMI-1640 مع 10٪ مصل الأبقار الجنين (FBS)، 5 ميكروغرام / مل الأنسولين، و 10 نانوغرام / مل EGF (انظر جدول المواد). لوحة ما يقرب من 400،000 خلية لكل 3 سم طبق بيتري: تمرير اثنين من 10 سم، 50٪ أطباق بي…

Representative Results

ومن المعروف منذ فترة طويلة أن التمايز من الخلايا الظهارية والخلايا الشحمية يتطلب التقاء والاشتباك من الكاديرين2. نحن وآخرون أظهرنا أن الالتصاق من خلية إلى خلية والاشتباك من E- أو N-cadherin وcadherin-11، كما يحدث مع التقاء الخلايا المستزرعة، يؤدي إلى زيادة كبيرة في نشاط GTPases الصغير وخلي…

Discussion

خلايا HC11 مناسبة بشكل مثالي لدراسة التمايز بالتزامن مع التحول النيوبلاستيك. وتتمثل الميزة المضافة في أن خلايا HC11 يمكن أن تصيب بسهولة بناقلات الفيروسات الرجعية المستندة إلى Mo-MLV للتعبير عن مجموعة متنوعة من الجينات. في أيدينا، كانت خلايا EpH4 أكثر صعوبة لتصيب بنفس ناقلات الفيروسات الرجعية من H…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وتكرم د. د. مدينا (هيوستن، تكساس) بتوفير خط الخلايا HC11. المؤلفون ممتنون للدكتور أندرو كريغ من جامعة كوينز للعديد من الكواشف والاقتراحات القيمة. كانت خلايا EpH4 هدية من الدكتور سي روسكيلي (UBC ، فانكوفر). قدمت كولين شيك مساعدة تقنية ممتازة لدراسات الثقافة ثلاثية الأبعاد.

المساعدة المالية من مجلس البحوث الطبيعية والهندسية في كندا ( NSERC ) ، المعاهد الكندية للبحوث الصحية (CIHR) ، المؤسسة الكندية لسرطان الثدي (CBCF ، أونتاريو ) ، التحالف الكندي لأبحاث سرطان الثدي ، ومراكز أونتاريو للتميز، وسرطان الثدي العمل كينغستون (BCAK) وصندوق كلير نيلسون الوصية من خلال المنح إلى LR هو موضع تقدير بامتنان. كن تتلقى منحة الدعم من CIHR، CBCF، BCAK وجمعية أبحاث السرطان شركة PTG بدعم من رئيس البحوث الكندية، والمؤسسة الكندية للابتكار، CIHR، NSERC وجمعية السرطان الكندية. تم دعم MN من قبل الطلاب من برنامج تدريب تيري فوكس في أبحاث السرطان عبر التخصصات من NCIC، وجائزة الدراسات العليا (QGA)، وجائزة عميد من جامعة كوينز. تم دعم MG من خلال زمالات ما بعد الدكتوراه من برنامج الجيش الأمريكي لسرطان الثدي، ووزارة البحث والابتكار في مقاطعة أونتاريو ولجنة البحوث الاستشارية في جامعة كوينز. تم دعم VH من خلال زمالة الدكتوراه CBCF وزمالة ما بعد الدكتوراه من برنامج تدريب مؤسسة تيري فوكس في أبحاث السرطان عبر التخصصات بالشراكة مع CIHR. كان هاناد دان متلقياً لطالب صيفي من NSERC. تم دعم البكالوريس من قبل جائزة الدراسات العليا في جامعة كوينز.

Materials

30% Acrylamide/0.8% Bis Solution Bio Rad 1610154 Western Blotting
Anti-Cyclin D1 antibody rabbit, Santa Cruz sc-717 Western Blotting
Anti-p120 antibody mouse, Santa Cruz sc-373751 Western Blotting
Anti-β actin antibody mouse, Cell Signalling technology 3700 Western Blotting
Anti-β casein antibody goat, Santa Cruz Biotechnology sc-17971 Western Blotting
Aprotinin Bio Shop APR600 Lysis Buffer
Bicinchoninic Acid Solution Sigma B9643-1L-KC Protein Determination
Bovine serum albumin Bio Shop ALB007.500 Protein Determination
Clarity Western ECL Substrate Bio Rad 170-5061 Western Blotting
Copper(II) sulphate Sigma C2284-25ML Protein Determination
DAPI Thermofisher Scientific D1306 Staining
Digitonin Calbiochem, Cedarlane Laboratories Ltd 14952-500 Staining
EDTA Bio Shop EDT001.500
Epidermal Growth Factor Sigma E9644 Medium for HC11 Cells
Fetal calf serum PAA A15-751 Cell Culture Medium
Goat- Anti Rabbit-HRP Santa Cruz SC-2004 Western Blotting
Hepatocyte Growth Factor recombinant Gibco PHG0321
Hepes Sigma 7365-45-9 Cell Culture
Horse Anti-Mouse HRP Cell Signalling Technology 7076 Western Blotting
Hydrocortisone Sigma H0888 HIP Medium
insulin Sigma I6634 HIP Medium
Laminar-flow hood BioGard Hood Cell Culture
Leupeptin Bio Shop LEU001.10 Lysis Buffer
Matrix (Engelbreth-Holm-Swarm matrix, Matrigel) Corning CACB 354230
Mouse Anti-Goat HRP Santa Cruz sc-8360 Western Blotting
Mowiol 4-88 Reagent Calbiochem, Cedarlane Laboratories Ltd 475904-100GM Staining
Multi-photon confocal microscope Leica TCS SP2
Na3VO4 Bio Shop SOV850 Lysis Buffer
Na4P207 Sigma 125F-0262 Lysis Buffer
NaCl Bio Shop SOD001.1 Western Blotting
NaF Fisher Scientific 7681-49-4 Lysis Buffer
Nikon digital Camera Coolpix 995
Nitrocellulose Bio Rad 1620112 Western Blotting
NP-40 Sigma 9016-45-9
Paraformaldehyde Fisher Scientific 30525-89-4 Staining
Phase Contrast Microscope Olympus IX70 Cell Culture
Phenylmethylsuphonyl fluoride Sigma 329-98-6 Lysis Buffer
pMX GFP Rac G12V Addgene 14567
Prolactin Sigma L6520 HIP Medium
RPMI-1640 Sigma R8758 Cell Culture Medium
Tissue Culture Dish 35 Sarstedt 83.3900. Cell Culture
Tissue Culture Plate-24 well Sarstedt 83.1836.300 Cell Culture
Transfer Apparatus CBS Scientific Co EBU-302 Western Blotting
Tris Acetate Bio Shop TRA222.500 Western Blotting
Trypsin Sigma 9002-07-7. Cell Culture
Tween-20 Bio Shop TWN510.500 Western Blotting
Veritical Gel Electrophoresis System CBS Scientific Co MGV-202-33 Western Blotting

Riferimenti

  1. Geletu, M., Guy, S., Arulanandam, R., Feracci, H., Raptis, L. Engaged for survival; from cadherin ligation to Stat3 activation. Jaks-Stat. 2, 27363-27368 (2013).
  2. Niit, M., et al. Regulation of HC11 mouse breast epithelial cell differentiation by the E-cadherin/Rac axis. Experimental Cell Research. 361 (1), 112-125 (2017).
  3. Ball, R. K., Friis, R. R., Schoenenberger, C. A., Doppler, W., Groner, B. Prolactin regulation of beta-casein gene expression and of a cytosolic 120-kd protein in a cloned mouse mammary epithelial cell line. The EMBO Journal. 7 (7), 2089-2095 (1988).
  4. Humphreys, R. C., Rosen, J. M. Stably transfected HC11 cells provide an in vitro and in vivo model system for studying Wnt gene function. Cell growth & differentiation. 8 (8), 839-849 (1997).
  5. Merlo, G. R., et al. differentiation and survival of HC11 mammary epithelial cells: diverse effects of receptor tyrosine kinase-activating peptide growth factors. European Journal of Cell Biology. 70 (2), 97-105 (1996).
  6. Wirl, G., Hermann, M., Ekblom, P., Fassler, R. Mammary epithelial cell differentiation in vitro is regulated by an interplay of EGF action and tenascin-C downregulation. Journal of Cell Science. 108, 2445-2456 (1995).
  7. Arbeithuber, B., et al. Aquaporin 5 expression in mouse mammary gland cells is not driven by promoter methylation. BioMed Research International. 2015, 460598 (2015).
  8. Morrison, B., Cutler, M. L. Mouse Mammary Epithelial Cells form Mammospheres During Lactogenic Differentiation. Journal of Visualized Experiments. (32), e1265 (2009).
  9. Merlo, G. R., et al. Growth suppression of normal mammary epithelial cells by wild-type p53. Oncogene. 9, 443-453 (1994).
  10. Reichmann, E., Ball, R., Groner, B., Friis, R. R. New mammary epithelial and fibroblastic cell clones in coculture form structures competent to differentiate functionally. Journal of Cell Biology. 108 (3), 1127-1138 (1989).
  11. Somasiri, A., Wu, C., Ellchuk, T., Turley, S., Roskelley, C. D. Phosphatidylinositol 3-kinase is required for adherens junction-dependent mammary epithelial cell spheroid formation. Differentiation. 66 (2-3), 116-125 (2000).
  12. Mroue, R., Bissell, M. J. Three-dimensional cultures of mouse mammary epithelial cells. Methods in Molecular Biology. 945, 221-250 (2013).
  13. Williams, C., Helguero, L., Edvardsson, K., Haldosen, L. A., Gustafsson, J. A. Gene expression in murine mammary epithelial stem cell-like cells shows similarities to human breast cancer gene expression. Breast Cancer Research. 11 (3), 26 (2009).
  14. Montesano, R., Soriano, J. V., Fialka, I., Orci, L. Isolation of EpH4 mammary epithelial cell subpopulations which differ in their morphogenetic properties. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Animal. 34 (6), 468-477 (1998).
  15. Nagaoka, K., Zhang, H., Watanabe, G., Taya, K. Epithelial cell differentiation regulated by MicroRNA-200a in mammary glands. PLoS One. 8 (6), 65127 (2013).
  16. Arulanandam, R., et al. Cadherin-cadherin engagement promotes survival via Rac/Cdc42 and Stat3. Molecular Cancer Research. 17, 1310-1327 (2009).
  17. Geletu, M., et al. Classical cadherins control survival through the gp130/Stat3 axis. BBA-Molecular Cell Research. 1833, 1947-1959 (2013).
  18. Raptis, L., Arulanandam, R., Geletu, M., Turkson, J. The R(h)oads to Stat3: Stat3 activation by the Rho GTPases. Experimental Cell Research. 317 (13), 1787-1795 (2011).
  19. Raptis, L., et al. Beyond structure, to survival: Stat3 activation by cadherin engagement. Biochemistry and Cell Biology. 87, 835-843 (2009).
  20. Niit, M., et al. Regulation of Differentiation of HC11 Mouse Breast Epithelial Cells by the Signal Transducer and Activator of Transcription-3. Anticancer Research. 39 (6), 2749-2756 (2019).
  21. Brinkmann, V., Foroutan, H., Sachs, M., Weidner, K. M., Birchmeier, W. Hepatocyte growth factor/scatter factor induces a variety of tissue-specific morphogenic programs in epithelial cells. Journal of Cell Biology. 131, 1573-1586 (1995).
  22. Starova, B. . Role of cell adhesion microevironment and the Src/Stat3 axis in autocrine HGF signaling during breast tumourigenesis. , (2008).
  23. Raptis, L., et al. Rasleu61 blocks differentiation of transformable 3T3 L1 and C3HT1/2-derived preadipocytes in a dose- and time-dependent manner. Cell Growth & Differentiation. 8, 11-21 (1997).
  24. Greer, S., Honeywell, R., Geletu, M., Arulanandam, R., Raptis, L. Housekeeping gene products; levels may change with confluence of cultured cells. Journal of Immunological Methods. 355, 76-79 (2010).
  25. Vultur, A., et al. Cell to cell adhesion modulates Stat3 activity in normal and breast carcinoma cells. Oncogene. 23, 2600-2616 (2004).
  26. Debnath, J., Muthuswamy, S. K., Brugge, J. S. Morphogenesis and oncogenesis of MCF-10A mammary epithelial acini grown in three-dimensional basement membrane cultures. Methods. 30 (3), 256-268 (2003).
  27. Lee, G. Y., Kenny, P. A., Lee, E. H., Bissell, M. J. Three-dimensional culture models of normal and malignant breast epithelial cells. Nature Methods. 4 (4), 359-365 (2007).
  28. Hoskin, V. C. . A novel regulatory role of Ezrin in promoting breast cancer cell invasion and metastasis. , (2015).
  29. Su, H. W., et al. Cell confluence-induced activation of signal transducer and activator of transcription-3 (Stat3) triggers epithelial dome formation via augmentation of sodium hydrogen exchanger-3 (NHE3) expression. Journal of Biological Chemistry. 282 (13), 9883-9894 (2007).
  30. Ostrovidov, S., et al. Skeletal muscle tissue engineering: methods to form skeletal myotubes and their applications. Tissue Engineering Part B: Reviews. 20 (5), 403-436 (2014).
  31. Cass, J. . Novel Stat3 and Stat5 pathways in epithelial cell differentiation. , (2013).
check_url/it/60147?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Geletu, M., Hoskin, V., Starova, B., Niit, M., Adan, H., Elliott, B., Gunning, P., Raptis, L. Differentiation of Mouse Breast Epithelial HC11 and EpH4 Cells. J. Vis. Exp. (156), e60147, doi:10.3791/60147 (2020).

View Video