Summary

Løse vann, proteiner og lipider fra in vivo Konfokalmikroskopi Raman Spectra av stratum corneum gjennom en Chemometric Approach

Published: September 26, 2019
doi:

Summary

Her presenterer vi en protokoll for innsamling av konfokalmikroskopi Raman Spectra fra menneskelige i kliniske studier kombinert med chemometric tilnærminger for Spectral avvikende fjerning og den påfølgende ekstraksjon av viktige funksjoner.

Abstract

Utvikling av denne in vivo konfokalmikroskopi Raman spektroskopiske metoden muliggjør direkte måling av vann, proteiner og lipider med dybde oppløsning i menneskelige. Denne informasjonen er svært viktig for hud-relaterte sykdommer og karakteriserer hudpleieprodukt ytelse. Denne protokollen illustrerer en metode for konfokalmikroskopi Raman Spectra samling og den påfølgende analyse av Spectral datasettet utnytte kjemometri. Målet med denne metoden er å etablere en standard protokoll for datainnsamling og gi generell veiledning for dataanalyse. Forbehandling (for eksempel fjerning av avvikende Spectra) er et kritisk trinn ved behandling av store datasett fra kliniske studier. Som et eksempel gir vi veiledning basert på tidligere kjennskap til et datasett for å identifisere outliers og utvikle spesifikke strategier for å fjerne dem. En hovedkomponent analyse utføres, og lasting Spectra sammenlignes med Spectra fra referansemateriale for å velge antall komponenter som brukes i den endelige multivariabel kurve oppløsning (MCR) analyse. Denne tilnærmingen er vellykket for å utvinne meningsfull informasjon fra en stor Spectral datasett.

Introduction

I kliniske studier har in vivo konfokalmikroskopi Raman spektroskopi vist sin unike evne til å bestemme stratum corneum tykkelse og vanninnhold1,2,3,4, og sporing av inntrengning av aktivt materiale lokalt påføres huden5,6. Som en ikke-invasiv tilnærming, konfokalmikroskopi Raman spektroskopi oppdager molekylære signaler basert på vibrasjonen moduser. Dermed er merking ikke nødvendig7. In vivo konfokalmikroskopi Raman spektroskopi gir kjemisk informasjon med dybde oppløsning basert på den konfokalmikroskopi natur teknikken. Denne dybde avhengige informasjonen er svært nyttig i å studere virkningene av hudpleieprodukter4,8, aldring9,10, sesongmessige endringer3, samt hudbarriere funksjon sykdommer, som atopisk dermatitt11,12. Det er mye informasjon i høy frekvens regionen konfokalmikroskopi Raman spektroskopi (2500-4000 cm-1), der vann produserer distinkte topper i regionen mellom 3250-3550 cm-1. Men Raman toppene av proteiner og lipider, som er sentrert mellom ca 2800-3000 cm-1, overlapper hverandre fordi signalene er hovedsakelig produsert fra metylen (-CH2-) og methyl (-CH3) grupper13 . Dette overlappet informasjon presenterer en teknisk utfordring ved innhenting relative mengder av individuelle molekylære arter. Toppmontering14,15 og selektiv topp posisjon12,16 tilnærminger har blitt brukt til å løse denne utfordringen. Det er imidlertid vanskelig for disse enkelt topp-baserte metoder for å trekke ut ren komponentinformasjon fordi flere Raman topper fra samme komponent endres samtidig17. I vår nylige utgivelse18ble en MCR-tilnærming foreslått for å belyse den rene komponentinformasjonen. Ved hjelp av denne tilnærmingen, tre komponenter (vann, proteiner og lipider) ble utvunnet fra en stor in vivo konfokalmikroskopi Raman spektroskopiske datasett.

Gjennomføringen av store kliniske studier kan være krevende for enkeltpersoner å samle inn vivo spektroskopiske data. I noen tilfeller kan Spectral oppkjøp kreve drifts utstyr i mange timer på en dag, og studien kan forlenge opp til uker eller måneder. Under disse forholdene kan spektroskopiske data genereres av utstyrs operatører som mangler teknisk ekspertise for å identifisere, ekskludere og korrigere for alle kilder til spektroskopiske artefakter. Det resulterende datasettet kan inneholde en liten brøkdel av spektroskopiske outliers som må identifiseres og ekskluderes fra dataene før analysen. Dette papiret illustrerer i detalj en chemometric analyse prosess for å “rydde opp” et klinisk Raman datasett før analysere dataene med MCR. Å med hell fjerne det outliers, typene av outliers og det muligheter anledning for det generasjon av det avvikende Spectra nød å bli kjennemerke. Deretter kan en bestemt tilnærming utvikles for å fjerne målrettede outliers. Dette krever forhåndskunnskap om datasettet, inkludert en detaljert forståelse av dataene og studie utformingen. I dette datasettet, flertallet av outliers er lav signal-til-støy Spectra og kommer først og fremst fra 1) Spectra samlet over hudoverflaten (6 208 av 30 862), og 2) sterkt bidrag til spekteret fra fluorescerende rom lys (67 ut av 30 862). Spectra samlet over hudoverflaten produsere en svak Raman respons, som laser fokuspunktet nærmer seg hudoverflaten og er for det meste i instrumentet vinduet under huden. Spectra med et sterkt bidrag fra fluorescerende rom lys genereres på grunn av enten instrument operatørfeil eller motivbevegelse, som produserer en tilstand der konfokalmikroskopi Raman samling vinduet ikke er fullt ut dekket av faget kropp nettsted. Selv om disse typene av Spectral artefakter kunne identifiseres og utbedres i løpet av Spectral oppkjøp av en spektroskopiske-ekspert på tidspunktet for datainnhenting, ble de trente instrument operatørene som ble brukt i denne studien, instruert til å samle inn alle data med katastrofal svikt ble observert. Oppgaven med å identifisere og ekskludere outliers er innlemmet i dataanalyse protokollen. Protokollen som presenteres er utviklet for å løse denne utfordringen. For å møte den lave signal-til-støy Spectra over hudens overflate, må plasseringen av hudoverflaten bestemmes først for å tillate fjerning av Spectra samlet over hudoverflaten. Plasseringen av hudoverflaten er definert som dybden der Raman laser knutepunkt er halvparten i huden og halvparten ut av huden som illustrert i supplerende figur 1. Etter å ha fjernet lav signal-til-støy Spectra, en rektor komponent analyse (PCA) er implementert for å trekke ut faktoren dominert av fluorescerende rom lys topper. Disse outliers er fjernet basert på score verdien av den tilsvarende faktoren.

Denne protokollen gir detaljert informasjon om hvordan seks hovedkomponenter bestemmes i MCR-prosessen. Dette gjøres gjennom en PCA-analyse etterfulgt av Spectral figur sammenligning mellom belastninger for modeller generert med et ulikt antall hovedkomponenter. Den eksperimentelle prosessen for datainnsamling av referansematerialer så vel som de menneskelige fagene er også forklart i detalj.

Protocol

Denne studien ble godkjent av den institusjonelle gjennomgangen komité Beijing Children ‘ s Hospital i samsvar med de etiske retningslinjene i 1975 erklæringen av Helsingfors. Det ble gjennomført i henhold til ICH retningslinjer for god klinisk praksis. Studien fant sted fra mai til juli 2015. 1. innsamling av in vivo konfokalmikroskopi Raman Spectra fra menneskelige motiver med atopisk dermatitt Inkluder emner i samsvar med følgende kriterier. Ta med emner mellom 4 – 1…

Representative Results

I denne kliniske studien ble in vivo konfokalmikroskopi Raman Spectra samlet inn fra 28 fra 4 – 18 år gammel. Totalt 30 862 Raman Spectra ble samlet inn med datainnsamlings protokollen nevnt ovenfor. Denne store Spectral datasettet inneholder 20% Spectral outliers som vist i Figur 4A. Den lave signal-til-støy avvikende Spectra ble fjernet etter fastsettelse hudoverflaten, etterfulgt av PCA å identifisere Spectra med lysfunksjoner. Den tredje faktoren i denne PCA-modellen er identifi…

Discussion

I løpet av datainnsamlingen, som beskrevet i punkt 2 og 3 i protokollen, ble hver dybde profil samlet i et område med kontakt mellom instrument vinduet og huden ved å finne de mørkere områdene fra de mikroskopiske bildene som er uthevet i de røde sirklene i Figur 2C. Når disse områdene var plassert, var det avgjørende å starte dybde profilen over hudoverflaten for å nøyaktig bestemme plasseringen av hudens overflate for dataanalyse prosedyre. Plasseringen av hud…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne i stor grad erkjenner den økonomiske støtten fra bedriftens funksjon analytiske og personlige rensing omsorg avdeling. Vi ønsker å uttrykke vår takknemlighet til analytiske knytte direktører MS Jasmine Wang og Dr. Robb Gardner for deres veiledning og støtte og MS Li Yang for hennes hjelp på datainnsamling.

Materials

Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich
Cholesterol Sigma-Aldrich
Cholesterol 3-sulfate sodium Sigma-Aldrich
D-Erythro-Dihydrosphingosine Sigma-Aldrich
DI water Purified with Milipore(18.2MΩ)
Gen2-SCA skin analyzer River Diagnostics, Rotterdam, The Netherlands Gen2
Matlab 2018b Mathwork 2018b
N-behenoyl-D-erythro-sphingosine Avanti Polar Lipids, Inc.
N-Lignoceroyl-D-erythro-sphinganine(ceramide) Avanti Polar Lipids, Inc.
Oleic Acid Sigma-Aldrich
Palmitic Acid Sigma-Aldrich
Palmitoleic Acid Sigma-Aldrich
PLS_Toolbox version 8.2 Eigenvector Research Inc. 8.2
RiverICon River Diagnostics, Rotterdam, The Netherlands version 3.2
Squalene Sigma-Aldrich
Stearic Acid Sigma-Aldrich

Riferimenti

  1. Caspers, P., Lucassen, G., Bruining, H., Puppels, G. Automated depth – scanning confocal Raman microspectrometer for rapid in vivo determination of water concentration profiles in human skin. Journal of Raman Spectroscopy. 31 (8-9), 813-818 (2000).
  2. Crowther, J., et al. Measuring the effects of topical moisturizers on changes in stratum corneum thickness, water gradients and hydration in vivo. British Journal of Dermatology. 159 (3), 567-577 (2008).
  3. Egawa, M., Tagami, H. Comparison of the depth profiles of water and water-binding substances in the stratum corneum determined in vivo by Raman spectroscopy between the cheek and volar forearm skin: effects of age, seasonal changes and artificial forced hydration. British Journal of Dermatology. 158 (2), 251-260 (2008).
  4. Crowther, J. M., Matts, P. J., Kaczvinsky, J. R. . Changes in Stratum Corneum Thickness, Water Gradients and Hydration by Moisturizers. , (2012).
  5. Pudney, P. D., Mélot, M., Caspers, P. J., Van, D. P. A., Puppels, G. J. An in vivo confocal Raman study of the delivery of trans retinol to the skin. Applied Spectroscopy. 61 (8), 804 (2007).
  6. Mohammed, D., Matts, P., Hadgraft, J., Lane, M. In vitro-in vivo correlation in skin permeation. Pharmaceutical Research. 31 (2), 394-400 (2014).
  7. Hanlon, E., et al. Prospects for in vivo Raman spectroscopy. Physics in Medicine and Biology. 45 (2), 1 (2000).
  8. Mohammed, D., Crowther, J. M., Matts, P. J., Hadgraft, J., Lane, M. E. Influence of niacinamide containing formulations on the molecular and biophysical properties of the stratum corneum. International Journal of Pharmaceutics. 441 (1-2), 192-201 (2013).
  9. Boireau-Adamezyk, E., Baillet-Guffroy, A., Stamatas, G. Age-dependent changes in stratum corneum barrier function. Skin Research and Technology. 20 (4), 409-415 (2014).
  10. Pezzotti, G., et al. Raman spectroscopy of human skin: looking for a quantitative algorithm to reliably estimate human age. Journal of Biomedical Optics. 20 (6), 065008 (2015).
  11. Mlitz, V., et al. Impact of filaggrin mutations on Raman spectra and biophysical properties of the stratum corneum in mild to moderate atopic dermatitis. Journal of the European Academy of Dermatology and Venereology. 26 (8), 983-990 (2012).
  12. Janssens, M., et al. Lipid to protein ratio plays an important role in the skin barrier function in patients with atopic eczema. British Journal of Dermatology. 170 (6), 1248-1255 (2014).
  13. Faiman, R., Larsson, K. Assignment of the C H stretching vibrational frequencies in the Raman spectra of lipids. Journal of Raman Spectroscopy. 4 (4), 387-394 (1976).
  14. Edwards, H. G., Farwell, D. W., Williams, A. C., Barry, B. W., Rull, F. Novel spectroscopic deconvolution procedure for complex biological systems: vibrational components in the FT-Raman spectra of ice-man and contemporary skin. Journal of the Chemical Society, Faraday Transactions. 91 (21), 3883-3887 (1995).
  15. Choe, C., Lademann, J., Darvin, M. E. Lipid organization and stratum corneum thickness determined in vivo in human skin analyzing lipid-keratin peak (2820-3030 cm- 1) using confocal Raman microscopy. Journal of Raman Spectroscopy. 47 (11), 1327-1331 (2016).
  16. Stamatas, G. N., de Sterke, J., Hauser, M., von Stetten, O., van der Pol, A. Lipid uptake and skin occlusion following topical application of oils on adult and infant skin. Journal of Dermatological Science. 50 (2), 135-142 (2008).
  17. Choe, C., Lademann, J., Darvin, M. E. Confocal Raman microscopy for investigating the penetration of various oils into the human skin in vivo. Journal of Dermatological Science. , (2015).
  18. Zhang, L., et al. A MCR approach revealing protein, water and lipid depth profile in atopic dermatitis patients’ stratum corneum via in vivo confocal Raman spectroscopy. Analytical Chemistry. , (2019).
  19. Caspers, P. J. . In vivo Skin Characterization by Confocal Raman Microspectroscopy. , (2003).
  20. Jaumot, J., de Juan, A., Tauler, R. MCR-ALS GUI 2.0: New features and applications. Chemometrics and Intelligent Laboratory Systems. 140, 1-12 (2015).
  21. Choe, C., Choe, S., Schleusener, J., Lademann, J., Darvin, M. E. Modified normalization method in in vivo stratum corneum analysis using confocal Raman microscopy to compensate nonhomogeneous distribution of keratin. Journal of Raman Spectroscopy. , (2019).
  22. Wise, B. M., et al. Chemometrics tutorial for PLS_Toolbox and Solo. Eigenvector Research, Inc. 3905, 102-159 (2006).
check_url/it/60186?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Zhang, L., Cambron, T., Niu, Y., Xu, Z., Su, N., Zheng, H., Wei, K., Ray, P. Resolving Water, Proteins, and Lipids from In Vivo Confocal Raman Spectra of Stratum Corneum through a Chemometric Approach. J. Vis. Exp. (151), e60186, doi:10.3791/60186 (2019).

View Video