Summary

Bildebehandling og analyse av vevsorientering og vekstdynamikk i developing Drosophila Epithelia under pupal stadier

Published: June 02, 2020
doi:

Summary

Denne protokollen er designet for avbildning og analyse av dynamikken i celleorientering og vevsvekst i Drosophila abdominal epithelia som fruktfluen gjennomgår metamorfose. Metodikken som er beskrevet her, kan brukes på studiet av ulike utviklingsstadier, vev og subcellulære strukturer i Drosophila eller andre modellorganismer.

Abstract

Innenfor flercellede organismer viser modne vev og organer høye grader av orden i de romlige arrangementene til deres bestanddeler celler. Et bemerkelsesverdig eksempel er gitt av sensorisk epithelia, hvor celler av samme eller distinkte identiteter er samlet via cellecelleadhesjon som viser svært organiserte planarmønstre. Celler justeres til hverandre i samme retning og viser tilsvarende polaritet over store avstander. Denne organiseringen av den modne epithelia er etablert i løpet av morfogenese. For å forstå hvordan den planære ordningen av den modne epithelia oppnås, er det avgjørende å spore celleorientering og vekstdynamikk med høy spatiotemporal gjengivelse under utviklingen in vivo. Robuste analytiske verktøy er også avgjørende for å identifisere og karakterisere lokale til globale overganger. Drosophila pupa er et ideelt system for å evaluere orientert celleform endrer underliggende epitelmorogenese. Det pupale utviklende epitelet utgjør den ytre overflaten av immobile kroppen, slik at langsiktig avbildning av intakte dyr. Protokollen som er beskrevet her er utformet for å bilde og analysere celleatferd på både globale og lokale nivåer i pupal abdominal epidermis som den vokser. Metodikken som er beskrevet, kan enkelt tilpasses avbildningen av celleatferd i andre utviklingsstadier, vev, subcellulære strukturer eller modellorganismer.

Introduction

For å oppnå sine roller, epitelvev fullt ut stole på den romlige organiseringen av sine cellulære komponenter. I de fleste epithelia er celler ikke bare pakket mot hverandre for å skape et presist brosteinslag, men de orienterer seg i forhold til kroppsaksene.

Den funksjonelle betydningen av presis vevsorganisasjon er åpenbar i sensorisk epithelia, som virveldyr indre øre og netthinnen. I det første tilfellet justerer hår- og støtteceller i en bestemt aksial retning for effektivt å føle mekaniske innganger som lyd og bevegelse1,2. På samme måte er fotoreseptorcelle romlig organisasjon avgjørende for å oppnå optimale optiske egenskaper ved netthinnen3. Romlig kontroll av celleposisjon og orientering er dermed av særlig relevans for riktig fysiologisk funksjon.

Drosophila er et holometaboløs insekt som gjennomgår en fullstendig transformasjon av larvalkroppsstrukturene gjennom metamorfose, noe som gir opphav til sitt voksne vev. Drosophila pupa er en utmerket modell for noninvasiv levende avbildning av en rekke dynamiske hendelser, inkludert utviklingscellemigrasjon4,celledeling og vekstdynamikk5,muskelsammentrekning6,celledød7,sårreparasjon8og celleorientering9. I den voksne Drosophilaviser det eksterne epitelet en høy grad av orden. Dette observeres lett på arrangementer av trichomes (dvs. celle fremspring som stammer fra enkelt epitelceller) og sensoriske bust over hele flyets kroppsoverflate10. Faktisk er trichomes justert i parallelle rader som styrer luftstrømmen11. Morfogenesen til den voksne epithelia og det bestilte arrangementet av de enkelte cellene starter under embryogenese og kulminerer under pupale stadier. Mens i embryoer celledelinger, intercalations, og form endrer alle redusere vevsorden12,13, dette er tilbake på senere stadier av utviklingen, spesielt på pupal stadier, når flyet nærmer modenhet9.

Immobile Drosophila pupa gir et ideelt system for å evaluere celleform og orienteringsendringer. Den pupale abdominal epidermis presenterer spesielle fordeler. Mens forløperne til det voksne hodet, thorax, kjønnsorganer og vedlegg vokser og blir mønstret fra larvestadier, histoblasts, som er integrert i larval epidermis, begynner å vokse og differensiere bare ved pupariation14. Denne funksjonen tillater sporing av alle spatiotemporal hendelser involvert i etableringen av vev orden i sin helhet9.

Histoblasts er spesifisert under embryonal utvikling ved kontralaterale stillinger i hvert presumptivt buksegment. Den dorsale abdominal epidermis av den voksne stammer fra dorsolaterally plassert histoblast reir tilstede i fremre og bakre rom15,16. Etter hvert som histoblaster utvides, erstatter larval epitelceller (LECer), smelter de kontralaterale reirene ved dorsalmidlinjen som danner et sammenføyningsark17,,18,,19,,20.

Dette arbeidet beskriver 1) en metodikk for disseksjon, montering og langsiktig levende avbildning av Drosophila-puppene, og 2) analytiske metoder for å studere dynamikken i cellulær orientering og vekst ved høy spatiotemporal oppløsning. En detaljert protokoll er gitt her, som dekker alle trinnene som kreves fra den første pupae forberedelse (dvs. iscenesettelse og bildebehandling) til utvinning og kvantifisering av retningsretningsitet og orientering funksjoner. Vi beskriver også hvordan man utlede lokale vevsegenskaper fra analysen av cellekloner. Alle de beskrevne trinnene er minimalt invasive og tillater langsiktige live analyser. Metodene som er beskrevet her, kan enkelt tilpasses og brukes på andre utviklingsstadier, vev eller modellorganismer.

Protocol

MERK: Denne protokollen er delt inn i fem trinn: (1) iscenesettelse av puppene, (2) forbereder puppene for avbildning, (3) levende avbildning av den voksende abdominale epithelia, (4) generasjon av genetiske mosaikker, (5) databehandling og analyse (inkludert seksjoner som beskriver hvordan man analyserer celleorienteringsdynamikk fra cellekryssskinser og vekstdynamikk fra cellekloner). 1. Iscenesettelse av Drosophila pupae før avbildning Kultur flyr av riktig genotype på …

Representative Results

Protokollen beskrevet ovenfor dekker utarbeidelsen av Drosophila pupae for langsiktig levende bildebehandling og prosedyrene for analyse av celleorientering og vekstdynamikk i abdominal epidermis. Ved å bruke denne metoden er det mulig å generere høyoppløselige filmer av den utviklende puppene i perioder på opptil 48 timer uten betydelig fotobleking eller fototoksisitet. Øyeblikksbilder som viser abdominal epidermis (f.eks. histoblasts og LECer) på forskjellige tidspunkter…

Discussion

Lang rekkevidde er en viktig egenskap ved de fleste funksjonelle fysiologiske enheter. Under morfogenese oppnås orden gjennom integrering av komplekse instruksjoner implementert med høy temporal og romlig presisjon. Flere og multilevel begrensninger er integrert i stereotype vev ordninger.

Polaritet og retningsbestemthet er avgjørende for å bestille romlig ordning under utvikling. Polaritet innebærer symmetribrudd under utviklingen. Oppnåelse av asymmetri er nødvendig for fastsettelse a…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gjerne takke medlemmer av Martín-Blanco-laboratoriet for nyttige diskusjoner. Vi takker også Nic Tapon (The Crick Institute, London, STORBRITANNIA), Bloomington Stock Center (University of Indiana, USA) og FlyBase (for Drosophila genmerknad). Federica Mangione ble støttet av et JAE-CSIC predoktorstipend. Martín-Blanco-laboratoriet ble finansiert fra Programa Estatal de Fomento de la Investigación Científica y Técnica de Excelencia (BFU2014-57019-P og BFU2017-82876-P) og fra Fundación Ramón Areces.

Materials

Analysis Software ImageJ Analyzing data
Drosophila Atpa::GFP Strains employed for data collection
Drosophila hsflp1.22;FRT40A/FRT40A Ubi.RFP.nls Strains employed for data collection
Dumont 5 Forceps FST 11251-20 1.5 mm diameter for dissection
Glass Bottom Plates Mat Tek P35G-0.170-14-C Mounting pupae for data collection
Halocarbon Oil 27 Sigma-Aldrich 9002-83-9 mounting pupae
Inverted Confocal microscope Zeiss LSM700 Data collection
Stereomicroscope Leica DFC365FX Visualization of the pupae during dissection

Riferimenti

  1. Gillespie, P. G., Muller, U. Mechanotransduction by hair cells: models, molecules, and mechanisms. Cell. 139, 33-44 (2009).
  2. Deans, M. R. A balance of form and function: planar polarity and development of the vestibular maculae. Seminars in Cellular and Developmental Biology. 24, 490-498 (2013).
  3. Stell, W. K. The structure and morphologic relations of rods and cones in the retina of the spiny dogfish, Squalus. Comparative Biochemistry and Physiology – Part A: Comparative Physiology. 42, 141-151 (1972).
  4. Ninov, N., Chiarelli, D. A., Martin-Blanco, E. Extrinsic and intrinsic mechanisms directing epithelial cell sheet replacement during Drosophila metamorphosis. Development. 134, 367-379 (2007).
  5. Bosveld, F., et al. Mechanical control of morphogenesis by Fat/Dachsous/Four-jointed planar cell polarity pathway. Science. 336, 724-727 (2012).
  6. Puah, W. C., Wasser, M. Live imaging of muscles in Drosophila metamorphosis: Towards high-throughput gene identification and function analysis. Methods. 96, 103-117 (2016).
  7. Teng, X., Qin, L., Le Borgne, R., Toyama, Y. Remodeling of adhesion and modulation of mechanical tensile forces during apoptosis in Drosophila epithelium. Development. 144, 95-105 (2017).
  8. Weavers, H., et al. Systems Analysis of the Dynamic Inflammatory Response to Tissue Damage Reveals Spatiotemporal Properties of the Wound Attractant Gradient. Current Biology. 26, 1975-1989 (2016).
  9. Mangione, F., Martin-Blanco, E. The Dachsous/Fat/Four-Jointed Pathway Directs the Uniform Axial Orientation of Epithelial Cells in the Drosophila Abdomen. Cell Reports. 25, 2836-2850 (2018).
  10. Casal, J., Struhl, G., Lawrence, P. A. Developmental compartments and planar polarity in Drosophila. Current Biology. 12, 1189-1198 (2002).
  11. Wootton, R. How flies fly. Nature. 400, 112-113 (1999).
  12. Zallen, J. A., Wieschaus, E. Patterned gene expression directs bipolar planar polarity in Drosophila. Developmental Cell. 6, 343-355 (2004).
  13. Gibson, M. C., Patel, A. B., Nagpal, R., Perrimon, N. The emergence of geometric order in proliferating metazoan epithelia. Nature. 442, 1038-1041 (2006).
  14. Robertson, C. W. The metamorphosis of Drosophila melanogaster, including an accurately timed account of the principal morphological changes. Journal of Morphology. 59, 351-399 (1936).
  15. Mandaravally Madhavan, M., Schneiderman, H. A. Histological analysis of the dynamics of growth of imaginal discs and histoblast nests during the larval development of Drosophila melanogaster. Wilhelm Roux’s archives of Developmental Biology. 183, 269-305 (1977).
  16. Kornberg, T. Compartments in the abdomen of Drosophila and the role of the engrailed locus. Biologia dello sviluppo. 86, 363-372 (1981).
  17. Garcia-Bellido, A., Merriam, J. R. Clonal parameters of tergite development in Drosophila. Biologia dello sviluppo. 26, 264-276 (1971).
  18. Roseland, C. R., Schneiderman, H. A. Regulation and metamorphosis of the abdominal histoblasts of Drosophila melanogaster. Wilhelm Roux’s archives of Developmental Biology. 186, 235-265 (1979).
  19. Madhavan, M. M., Madhavan, K. Morphogenesis of the epidermis of adult abdomen of Drosophila. Journal of Embryology and Experimental Morphology. 60, 1-31 (1980).
  20. Bischoff, M., Cseresnyes, Z. Cell rearrangements, cell divisions and cell death in a migrating epithelial sheet in the abdomen of Drosophila. Development. 136, 2403-2411 (2009).
  21. Golic, K. G., Lindquist, S. The FLP recombinase of yeast catalyzes site-specific recombination in the Drosophila genome. Cell. 59, 499-509 (1989).
  22. Xu, T., Rubin, G. M. Analysis of genetic mosaics in developing and adult Drosophila tissues. Development. 117, 1223-1237 (1993).
  23. Fonck, E., et al. Effect of aging on elastin functionality in human cerebral arteries. Stroke. 40, 2552-2556 (2009).
  24. Rezakhaniha, R., Fonck, E., Genoud, C., Stergiopulos, N. Role of elastin anisotropy in structural strain energy functions of arterial tissue. Biomechanics and Modeling in Mechanobiology. 10, 599-611 (2011).
  25. Hammer, &. #. 2. 1. 6. ;., Harper, D. A., Ryan, P. D. PAST: paleontological statistics software package for education and data analysis. Palaeontologia electronica. 4, 1-9 (2001).
  26. Gray, R. S., Roszko, I., Solnica-Krezel, L. Planar cell polarity: coordinating morphogenetic cell behaviors with embryonic polarity. Developmental Cell. 21, 120-133 (2011).
  27. Vogg, M. C., Wenger, Y., Galliot, B. How Somatic Adult Tissues Develop Organizer Activity. Current Topics in Developmental Biology. 116, 391-414 (2016).
  28. Collinet, C., Rauzi, M., Lenne, P. F., Lecuit, T. Local and tissue-scale forces drive oriented junction growth during tissue extension. Nature Cell Biology. 17, 1247-1258 (2015).
  29. Martin-Blanco, E., et al. puckered encodes a phosphatase that mediates a feedback loop regulating JNK activity during dorsal closure in Drosophila. Genes and Development. 12, 557-570 (1998).
  30. Dye, N. A., et al. Cell dynamics underlying oriented growth of the Drosophila wing imaginal disc. Development. 144, 4406-4421 (2017).
  31. Williams-Masson, E. M., Malik, A. N., Hardin, J. An actin-mediated two-step mechanism is required for ventral enclosure of the C. elegans hypodermis. Development. 124, 2889-2901 (1997).
  32. Ferguson, M. W. Palate development. Development. 103, 41-60 (1988).
check_url/it/60282?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Mangione, F., Martin-Blanco, E. Imaging and Analysis of Tissue Orientation and Growth Dynamics in the Developing Drosophila Epithelia During Pupal Stages. J. Vis. Exp. (160), e60282, doi:10.3791/60282 (2020).

View Video