Summary

Isolering og karakterisering av ekstracellulære blemmer produsert av Iron-Limited mykobakterier

Published: October 31, 2019
doi:

Summary

Mycobacterium tuberkulose viser økt produksjon og frigjøring av ekstracellulære blemmer som svar på lave jern forhold. Dette arbeidet detaljer en protokoll for generering av lave jern forhold og metoder for rensing og karakterisering av mykobakterieinfeksjoner ekstracellulære blemmer utgitt som svar på jernmangel.

Abstract

Mykobakterier, inkludert Mycobacterium tuberkulose (MTB), den utløsende Agent for menneskelig tuberkulose, naturlig utgivelse ekstracellulære blemmer (EV) som inneholder immunologisk aktive molekyler. Kunnskap om molekylære mekanismer av vesicle kognitiv, innholdet av blemmer, og deres funksjoner på patogen-vert grensesnittet er svært begrenset. Å ta opp disse spørsmålene krever strenge prosedyrer for isolering, rensing og validering av EV ‘ r. Tidligere ble det funnet vesicle produksjon som ble forsterket da M. tuberkulose ble utsatt for jern begrensning, en tilstand som ble oppdaget av MTB i vertsmiljøet. Her presenteres en komplett og detaljert protokoll for å isolere og rense EV ‘ r fra jern mangelfull mykobakterier. Kvantitative og kvalitative metoder brukes for å validere renset EV ‘ r.

Introduction

Mykobakterieinfeksjoner ekstracellulære blemmer (Model) er membran bundne nanopartikler, 60 − 300 NM i størrelse, naturlig utgitt av hurtig-og sakte voksende mykobakterier1. Model utgitt av patogene mykobakterier utgjør en mekanisme for å samhandle med verten via immunologisk aktive proteiner, lipider, og glykolipider skilles ut i en konsentrert og beskyttet måte2,3,4. Å karakterisere Model og oppfatte deres kognitiv og funksjonene, streng og effektiv metoder av vesicle rensing og godkjenningen er avgjørende. Hittil har Model blitt isolert fra kulturen filtrates av mykobakterier vokst i en jern-rik medium1,5,6,7,8.

Men tidligere arbeid demonstrerte at jern begrensning sterkt stimulerer vesicle utgivelse i MTB, muligens for å fange jern via mycobactin, en siderophore utskilles i Model9. Selv om prosedyrer for Model isolasjon fra MTB kultivert i høyt jern medium har blitt beskrevet, en effektiv metodikk for å få Model fra lav jern kulturer har ikke blitt rapportert. Derfor er målet med denne metoden å isolere, rense og kvantifisere Model innhentet fra lav jern kulturer slik at de kan brukes til biokjemiske og funksjonelle analyser og for analyse av genetiske faktorer for vesicle produksjon i mykobakterier.

Protocol

1. utarbeidelse av jern-utarmet definert medium Forbered 1 L av minimal medium (MM) ved å oppløse 5 g av KH2PO4,5g av L-asparagin, 20 ml glyserol og 2 g druesukker i 900 ml deionisert vann i en plastbeholder. Unngå glass for å hindre jern forurensning. Juster pH til 6,8 med 5 N NaOH og volumet til 1 L med vann. Tilsett 50 g metall chelaterande harpiks (MCR) og forsiktig agitere ved hjelp av en magnetisk røre bar i 24 timer ved 4 ° c. Sterilisere og fjern MCR ved filtrering …

Representative Results

Model ble renset ved differensial sedimentering i en tetthet gradient (figur 1, figur 2). Under forholdene beskrevet, Model separert det meste i gradient brøkdel 3 (F3), som tilsvarer 25% iodixanol. Denne konklusjonen er basert på påvisning av protein, membran lipid, mikroskopisk visualisering av intakt Model, nanopartikkel størrelsesfordeling, og positiv reaktivitet med en antivesicle antiserum (figur 2<…

Discussion

Flere metoder for å rense eukaryote celle-avledet exosomes har blitt utviklet12. I kontrast er det begrenset informasjon om effektive metoder for å rense bakterier-avledet EV7. Effektiv isolering av MTB-avledet EV ‘ r må vurdere de iboende vanskelighetene med å dyrke denne patogene Mycobacterium. MTB har en lang divisjon tid (~ 24 h) og bør håndteres i biosafety nivå tre (BSL-3) forhold. Derfor er det viktig å optimalisere effektiviteten av MEV isolasjons metoder. F…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi er takknemlige for Rafael Prados-Rosales for å dele anti-MEV antisera og Navneet Dogra for å utføre nanopartikkel sporings analyse.

Materials

Amicon stirred cell Model 108 EMD Milipore UFSC40001 Cell Ultrafiltration system
BD Polypropilene 225 ml conical tubes Fisher 05-538-61 Conical centrifuge tubes
Biomax 100-kDa cut-off ultrafiltration membrane EMD Milipore PBHK07610 Ultrafiltration membrane
Chelex-100 resin Bio-Rad 142-2842 Metal chelating resin
Middlebrook 7H10 Agar BD Difco 262710 Mycobacterial Agar plates
Middlebrook 7H9 Broth BD Difco 271310 Mycobacterial broth medium
Nitro cellulose blotting membrane GE Healthcare 10600001 Blotting Membrane
Optiprep Sigma D1556 Iodixanol
Polycarbonate ultra centrifugation tubes 25 x 89 mm Beckman Coulter 355618 Polycarbonate ultra centrifugation tubes 25 x 89 mm
Polypropylene thin walled centrifuge tube 13×15 mm Beckman Coulter 344059 Polypropylene thin walled centrifuge tube 13×15 mm
Protein Assay dye BioRad 5000006 Bradford Protein Staining
SYPRO Ruby Molecular Probes S12000 Ultrasensitive protein stain
TMA-DPH Molecular Probes T204 1-(4-Trimethylammoniumphenyl)-6-Phenyl-1,3,5-Hexatriene p-Toluenesulfonate
Vacuum filtration flasks CellPro V50022 Filter Unit

Riferimenti

  1. Prados-Rosales, R., et al. Mycobacteria release active membrane vesicles that modulate immune responses in a TLR2-dependent manner in mice. Journal of Clinical Investigation. 121, 1471-1483 (2011).
  2. Gupta, S., Rodriguez, G. M. Mycobacterial extracellular vesicles and host pathogen interactions. Pathogens and Disease. 76 (4), (2018).
  3. Athman, J. J., et al. Bacterial Membrane Vesicles Mediate the Release of Mycobacterium tuberculosis Lipoglycans and Lipoproteins from Infected Macrophages. Journal of Immunology. 195, 1044-1053 (2015).
  4. Athman, J. J., et al. Mycobacterium tuberculosis Membrane Vesicles Inhibit T Cell Activation. Journal of Immunology. 198, 2028-2037 (2017).
  5. Rath, P., et al. Genetic regulation of vesiculogenesis and immunomodulation in Mycobacterium tuberculosis. Proceedings of the National Academy of Science U.S.A. 110, E4790-E4797 (2013).
  6. White, D. W., Elliott, S. R., Odean, E., Bemis, L. T., Tischler, A. D. Mycobacterium tuberculosis Pst/SenX3-RegX3 Regulates Membrane Vesicle Production Independently of ESX-5 Activity. mBio. 9, pii 00778 (2018).
  7. Dauros Singorenko, P., et al. Isolation of membrane vesicles from prokaryotes: a technical and biological comparison reveals heterogeneity. Journal of Extracellular Vesicles. 6, 1324731 (2017).
  8. Prados-Rosales, R., Brown, L., Casadevall, A., Montalvo-Quiros, S., Luque-Garcia, J. L. Isolation and identification of membrane vesicle-associated proteins in Gram-positive bacteria and mycobacteria. MethodsX. 1, 124-129 (2014).
  9. Prados-Rosales, R., et al. Role for Mycobacterium tuberculosis membrane vesicles in iron acquistion. Journal of Bacteriology. 196, 1250-1256 (2014).
  10. Sanders, E. Aseptic Laboratory Techniques: Plating Methods. Journal of Visualized Experiments. 63, e3064 (2012).
  11. Harlow, E., Lane, L. . Antibodies. A laboratory manual. , (1988).
  12. Lotvall, J., et al. Minimal experimental requirements for definition of extracellular vesicles and their functions: a position statement from the International Society for Extracellular Vesicles. Journal of Extracellular Vesicles. 3, 26913 (2014).
check_url/it/60359?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Gupta, S., Marcela Rodriguez, G. Isolation and Characterization of Extracellular Vesicles Produced by Iron-limited Mycobacteria. J. Vis. Exp. (152), e60359, doi:10.3791/60359 (2019).

View Video