Summary

使用天然多酚姜黄素对脑组织淀粉样斑块进行标记和成像

Published: November 01, 2019
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Summary

姜黄素是一种理想的荧光素,用于标记和成像脑组织中的淀粉样贝塔蛋白斑块,因为它优先结合淀粉样贝塔蛋白,并且与其他传统的淀粉样蛋白结合染料的结构相似。与传统方法相比,它可用于更高效、更廉价地标记和图像淀粉样β蛋白斑块。

Abstract

淀粉样β蛋白(A+)在细胞外和细胞内空间沉积是阿尔茨海默氏病(AD)的显著疾病之一。因此,检测AD脑组织中A+的存在是开发新的治疗方法,防止AD进展的宝贵工具。几种经典的淀粉样结合染料、氟铬、成像探针和A+特异性抗体已用于检测AD脑组织中的A+组织。使用这些化合物进行A+检测既昂贵又耗时。然而,由于其强烈的荧光活性,高亲和力,和特殊性A+,以及结构相似性,传统的淀粉样结合染料,姜黄素(Cur)是一个有前途的候选标签和成像A+斑块在死后脑组织。它是来自草本姜黄龙的天然多酚。在本研究中,Cur在一分钟内从5倍家族性阿尔茨海默氏病(5xFAD)的遗传小鼠模型和人类AD组织中,用组织化学方式标记A+斑块。Cur 的标签能力与传统的淀粉样结合染料(如硫黄素-S(硫黄素-S)、刚果红 (CR) 和氟玉 C (FJC) 以及 A+ 特异性抗体 (6E10 和 A11)进行了比较。我们观察到,与这些传统染料相比,Cur 是最廉价、最快速的标记和图像 A+ 斑块的方法,与 A+ 特异性抗体相媲美。此外,Cur 与大多数 A+ 物种结合,如寡聚物和纤维蛋白。因此,Cur 可用作 A+ 斑块最经济、简单、快速的氟铬检测剂。

Introduction

阿尔茨海默氏病(AD)是最常见的、与年龄有关、渐进的神经系统疾病之一,也是全球1、2日死亡的主要原因之一。学习、记忆和认知障碍,以及神经精神障碍,是AD3中常见的症状。虽然AD的病因尚未完全阐明,但现有的遗传、生化和实验证据表明,A+的逐渐沉积是AD4的明确生物标志物。这种错误折叠的蛋白质积累在细胞内和细胞外空间,被认为是参与突触损失,增加神经炎症,和神经退化在受AD5影响的大脑的皮质和海马区域。因此,在AD组织中组织化学检测A+是开发无毒抗淀粉样药物以防止AD进展的关键的第一步。

在过去的几十年中,许多研究实验室使用几种染料和抗体来标记和图像脑组织中的 A+ 斑块,但其中一些方法耗时,使用的染料或抗体昂贵,需要多种附件化学品。因此,开发一种廉价的方法来检测AD大脑中的A+斑块将是一个受欢迎的新工具。许多实验室开始使用Cur,一种有前途的抗淀粉样天然多酚,用于标记和成像A+,以及AD6,7,8,9的治疗剂。其疏水性和嗜血性性质、与经典淀粉样结合染料的结构相似性、强大的荧光活性以及与 A+ 结合的强烈亲和力使其成为 AD 组织 10 中 A+ 斑块标记和成像的理想荧光素.Cur与A+斑块和寡聚物结合,其存在也在细胞内空间7,11,12,13中检测到。此外,已经表明,最小量(1⁄10 nM)的Cur可以标记A+斑块在5倍家族性阿尔茨海默氏病(5xFAD)脑组织7。虽然 1 nM 浓度不能为 A+ 斑块计数提供最佳荧光强度,但 Cur 的浓度为 10 nM 或更高。Ran和他的同事14日报告说,剂量低至0.2 nM的二氟龙衍生的Cur几乎可以检测体内A+沉积物和红外探头。此剂量是否足以标记组织中的 A+ 斑块仍不清楚。以前的大多数研究都使用 20-30 分钟使用 Cur 染色 A+ 斑块,但最佳染色可能需要的时间要少得多。

本研究旨在测试 Cur 在 AD 脑组织中标记 A+ 斑块所需的最短时间,并比较 5xFAD 小鼠在与其他常规小鼠染色后,在脑组织中标记和成像 A+ 斑块的灵敏度A+ 结合染料,如硫黄素-S(硫-S)、刚果红 (CR) 和氟-玉 C (FJC)。这些经典淀粉样结合染料的A+标记能力与5xFAD小鼠和年龄匹配的人类AD和控制脑组织的石蜡嵌入和冷冻冠状脑部分的Cur染色进行了比较。研究结果表明,Cur以类似于A+特异性抗体(6E10)的方式标记A+斑块,并比Thio-S、CR或FJC中更好。此外,当Cur到5xFAD小鼠的腹内注射被注射2~5天时,它越过了血脑屏障,并与A+斑块7结合。有趣的是,在5xFAD脑组织7,14中,纳米摩尔浓度已经被用来标记和图像A+斑块。此外,形态上截然不同的A+斑块,如核心、神经质、扩散和烧坏斑块,可以比任何其他传统的淀粉样结合染料7更高效地标记Cur。总体而言,Cur 可以以简单且廉价的方式应用于 AD 动物模型和/或人类 AD 组织死后脑组织中的 A+ 斑块的标签和图像,作为 A+ 特异性抗体的可靠替代品。

Protocol

这里描述的所有方法都已获得萨吉诺谷州立大学动物护理和使用委员会(ACUC)的批准。人体组织是从亚利桑那州班纳太阳健康研究所15、16日建立的脑库获得的。 1. 动物灌注 准备固定和灌注缓冲液。 通过加入 80 g 氯化钠 (NaCl)、2 g 氯化钾 (KCl)、21.7 g 磷酸氢钠 (Na2HPO4+7H2O)、2.59 克磷酸二…

Representative Results

姜黄素在一分钟内标记A+斑块。当我们用Cur染色5xFAD组织时,我们发现Cur标签A+斑块在1分钟内。虽然Cur的孵育时间略有增加A+斑块的荧光强度,但观察到的A+斑块数量在1分钟至5分钟的染色时间之间没有显著差异(图1)。 Cur 可以在冷冻制备的石蜡嵌入小鼠和人类 AD 组织中标记 A+ 斑块,与小鼠 AD 脑组织中 A…

Discussion

我们的假设是,与其他经典淀粉样结合染料以及 A+ 特异性抗体相比,Cur 可用作在死后 AD 脑组织中标记和图像 A+ 斑块的最快速、最简单和最便宜的方法。本研究的目的是确定Cur在死后AD脑组织中标记和图像A+斑块所需的最短时间,并确定Cur是否可以作为A+抗体的替代物来标记A+斑块。为此,在不同时间点观察到Cur的A+标记能力。Cur 能够在一分钟内将 A+ 贴上标签。此外,Cur 对 A+ 的标记大于其他常规?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项研究的支持来自圣玛丽阿森松的菲尔德神经科学研究所。

Materials

4′,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) IHC world, Woodstock, MD
Aanimal model of Alzheimer's disease Jackson's laboratory, Bar Harbor, ME
Absolute alcohol VWR,Radnor, PA
Alexa 594 Santacruz Biotech, Dallas, TX
Antibody 6E10 Biolegend, San Diego, CA
Antibody A11 Millipore, Burlington, MA
Compound light microscope Olympus, Shinjuku, Japan Olympus BX51
Congo red Sigma, St. Louis, MO
Cryostat GMI, Ramsey, MN LeicaCM1800
Curcumin Sigma, St. Louis, MO
Disodium hydrogen phosphate Sigma, St. Louis, MO
Dystyrene plasticizer xylene BDH, Dawsonville, GA
Filter papers Fisher scientific, Pittsburgh, PA
Hoechst-33342 Sigma, St. Louis, MO
Inverted fluorescent microscope Leica, Buffalo Grove, IL Leica DMI 6000B
Inverted fluorescent microscope Olympus, Shinjuku, Japan Olympus 1×70
Normal goat serum Sigma, St. Louis, MO
Paraffin Sigma, St. Louis, MO
Paraformaldehyde Sigma, St. Louis, MO
Ploy-lysine coated charged glass slide Globe Scientific Inc, Mahwah, NJ
Potassium chloride Sigma, St. Louis, MO
Potassium dihydrogen phosphate Sigma, St. Louis, MO
Sodium azide Sigma, St. Louis, MO
Sodium chloride Sigma, St. Louis, MO
Sodium hydroxide EMD Millipore, Burlington, MA
Sodium pentobarbital Vortex Pharmaceuticals limited, Dearborn, MI
Thioflavin-S Sigma, St. Louis, MO
Triton-X-100 Sigma, St. Louis, MO
Xylene VWR,Radnor, PA

Riferimenti

  1. Cummings, J. L. Alzheimer’s disease. New England Journal of Medicine. 351 (1), 56-67 (2004).
  2. Jack, C. R., Holtzman, D. M. Biomarker modeling of Alzheimer’s disease. Neuron. 80 (6), 1347-1358 (2013).
  3. Tarawneh, R., Holtzman, D. M. The clinical problem of symptomatic Alzheimer disease and mild cognitive impairment. Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine. 2 (5), (2012).
  4. Selkoe, D. J. Cell biology of protein misfolding: the examples of Alzheimer’s and Parkinson’s diseases. Nature Cell Biology. 6 (11), 1054-1061 (2004).
  5. Hardy, J., Allsop, D. Amyloid deposition as the central event in the aetiology of Alzheimer’s disease. Trends in Pharmacological Sciences. 12 (10), 383-388 (1991).
  6. Chen, M., et al. Use of curcumin in diagnosis, prevention, and treatment of Alzheimer’s disease. Neural Regeneration Research. 13 (4), 742-752 (2018).
  7. Maiti, P., et al. A comparative study of dietary curcumin, nanocurcumin, and other classical amyloid-binding dyes for labeling and imaging of amyloid plaques in brain tissue of 5x-familial Alzheimer’s disease mice. Histochemistry and Cell Biology. 146 (5), 609-625 (2016).
  8. Maiti, P., Dunbar, G. L. Use of Curcumin, a Natural Polyphenol for Targeting Molecular Pathways in Treating Age-Related Neurodegenerative Diseases. International Journal of Molecular Sciences. 19 (6), (2017).
  9. Maiti, P., Dunbar, G. L. Comparative Neuroprotective Effects of Dietary Curcumin and Solid Lipid Curcumin Particles in Cultured Mouse Neuroblastoma Cells after Exposure to Abeta42. International Journal of Alzheimer’s Disease. , (2017).
  10. den Haan, J., Morrema, T. H. J., Rozemuller, A. J., Bouwman, F. H., Hoozemans, J. J. M. Different curcumin forms selectively bind fibrillar amyloid beta in post mortem Alzheimer’s disease brains: Implications for in-vivo diagnostics. Acta Neuropathologica Communications. 6 (1), 75 (2018).
  11. Koronyo, Y., et al. Retinal amyloid pathology and proof-of-concept imaging trial in Alzheimer’s disease. JCI Insight. 2 (16), (2017).
  12. Koronyo, Y., Salumbides, B. C., Black, K. L., Koronyo-Hamaoui, M. Alzheimer’s disease in the retina: imaging retinal abeta plaques for early diagnosis and therapy assessment. Neurodegenerative Diseases. 10 (1-4), 285-293 (2012).
  13. Koronyo-Hamaoui, M., et al. Identification of amyloid plaques in retinas from Alzheimer’s patients and noninvasive in vivo optical imaging of retinal plaques in a mouse model. NeuroImage. 54 (Suppl 1), S204-S217 (2011).
  14. Ran, C., et al. Design, synthesis, and testing of difluoroboron-derivatized curcumins as near-infrared probes for in vivo detection of amyloid-beta deposits. Journal of the American Chemical Society. 131 (42), 15257-15261 (2009).
  15. Beach, T. G. The Sun Health Research Institute Brain Donation Program: Description and Experience, 1987-2007. Cell Tissue Bank. 9 (3), 229-245 (2008).
  16. Green, S. J., Killiany, R. J. Subregions of the inferior parietal lobule are affected in the progression to AD. Neurobiology of Aging. 31 (8), 1304-1311 (2010).
  17. Ono, K., Hasegawa, K., Naiki, H., Yamada, M. Curcumin has potent anti-amyloidogenic effects for Alzheimer’s beta-amyloid fibrils in vitro. Journal of Neuroscience Research. 75 (6), 742-750 (2004).
  18. Garcia-Alloza, M., Borrelli, L. A., Rozkalne, A., Hyman, B. T., Bacskai, B. J. Curcumin labels amyloid pathology in vivo, disrupts existing plaques, and partially restores distorted neurites in an Alzheimer mouse model. Journal of Neurochemistry. 102 (4), 1095-1104 (2007).
  19. Mutsuga, M., et al. Binding of curcumin to senile plaques and cerebral amyloid angiopathy in the aged brain of various animals and to neurofibrillary tangles in Alzheimer’s brain. Journal of Veterinary Medical Science. 74 (1), 51-57 (2012).
  20. Tei, M., Uchida, K., Mutsuga, M., Chambers, J. K., Nakayama, H. The binding of curcumin to various types of canine amyloid proteins. Journal of Veterinary Medical Science. 74 (4), 481-483 (2012).
  21. Liu, L., Komatsu, H., Murray, I. V., Axelsen, P. H. Promotion of amyloid beta protein misfolding and fibrillogenesis by a lipid oxidation product. Journal of Molecular Biology. 377 (4), 1236-1250 (2008).
  22. Wu, C., Scott, J., Shea, J. E. Binding of Congo red to amyloid protofibrils of the Alzheimer Abeta(9-40) peptide probed by molecular dynamics simulations. Biophysical Journal. 103 (3), 550-557 (2012).
  23. Wu, C., Wang, Z., Lei, H., Zhang, W., Duan, Y. Dual binding modes of Congo red to amyloid protofibril surface observed in molecular dynamics simulations. Journal of the American Chemical Society. 129 (5), 1225-1232 (2007).
  24. Gutierrez, I. L., et al. Alternative Method to Detect Neuronal Degeneration and Amyloid beta Accumulation in Free-Floating Brain Sections With Fluoro-Jade. ASN Neuro Methods. 10, 1-7 (2018).
  25. Yang, F., et al. Curcumin inhibits formation of amyloid beta oligomers and fibrils, binds plaques, and reduces amyloid in vivo. Journal of Biological Chemistry. 280 (7), 5892-5901 (2005).
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Citazione di questo articolo
Maiti, P., Plemmons, A., Bowers, Z., Weaver, C., Dunbar, G. Labeling and Imaging of Amyloid Plaques in Brain Tissue Using the Natural Polyphenol Curcumin. J. Vis. Exp. (153), e60377, doi:10.3791/60377 (2019).

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