Summary

En rotte carotis arterie trykkkontrollert segmental ballong skade med periadventitial terapeutisk applikasjon

Published: July 09, 2020
doi:

Summary

Rottekarotisarterieballongskaden etterligner den kliniske angioplastikkprosedyren som utføres for å gjenopprette blodstrømmen i aterosklerotiske kar. Denne modellen induserer arteriell skaderespons ved å distending arteriell vegg, og denuding det intimale laget av endotelceller, til slutt forårsaker ombygging og en intimal hyperplastisk respons.

Abstract

Kardiovaskulær sykdom er fortsatt den ledende dødsårsaken og funksjonshemming over hele verden, delvis på grunn av aterosklerose. Aterosklerotisk plakk begrenser luminaloverflaten i arteriene og reduserer dermed tilstrekkelig blodstrøm til organer og distale vev. Klinisk tar revaskulariseringsprosedyrer som ballongangoplastikk med eller uten stentplassering sikte på å gjenopprette blodstrømmen. Selv om disse prosedyrene gjenoppretter blodstrømmen ved å redusere plakkbyrden, skader de karveggen, som initierer arteriell helbredende respons. Den langvarige helbredende responsen forårsaker arteriell restenose, eller re-innsnevring, til slutt begrense den langsiktige suksessen til disse revaskularisering prosedyrer. Derfor er prekliniske dyremodeller integrert for å analysere de patofysilogiske mekanismene som driver restenose, og gir mulighet til å teste nye terapeutiske strategier. Murine modeller er billigere og enklere å operere på enn store dyremodeller. Ballong- eller trådskader er de to allment aksepterte skademodalitetene som brukes i murine-modeller. Ballongskademodeller etterligner spesielt den kliniske angioplastikkprosedyren og forårsaker tilstrekkelig skade på arterien for utvikling av restenose. Her beskriver vi de kirurgiske detaljene for å utføre og histologisk analysere den modifiserte, trykkstyrte rottekarotisarterieballongskademodellen. I tillegg fremhever denne protokollen hvordan lokal periadventitial anvendelse av terapeutiske midler kan brukes til å hemme neointimal hyperplasi. Til slutt presenterer vi lysarkfluorescensmikroskopi som en ny tilnærming for avbildning og visualisering av arteriell skade i tredimensjoner.

Introduction

Kardiovaskulær sykdom (CVD) er fortsatt den ledende dødsårsaken over heleverden 1. Aterosklerose er den underliggende årsaken til de fleste CVD-relaterte sykelighet og dødelighet. Aterosklerose er oppbyggingen av plakk inne i arteriene som resulterer i en innsnevret lumen, hindrer riktig blodperfusjon til organer og distale vev2. Kliniske inngrep for behandling av alvorlig aterosklerose inkluderer ballongangoplastikk med eller uten stentplassering. Denne intervensjonen innebærer å fremme et ballongkateter til plakkstedet, og blåse opp ballongen for å komprimere plakk til arteriell vegg, utvide luminalområdet. Denne prosedyren skader arterien, men initierer arteriell skaderespons3. Langvarig aktivering av denne skaderesponsen fører til arteriell restenose, eller re-innsnevring, sekundært til neointimal hyperplasi og fartøy remodeling. Under angioplastikk er det intimale laget benektet endotelceller som fører til umiddelbar blodplaterekruttering og lokal betennelse. Lokal signalisering induserer fenotypiske endringer i vaskulære glatte muskelceller (VSMC) og adventitial fibroblaster. Dette fører til migrasjon og spredning av VSMC og fibroblaster innover til lumen, noe som fører til neointimal hyperplasi4,5. Sirkulerende stamceller og immunceller bidrar også til det totale volumet av restenose6. Der det er aktuelt, er legemiddeluttårne (DES) den nåværende standarden for hemming av restenosis7. DES hemmer arteriell re-endotelialisering, men dermed skape et pro-trombotisk miljø som kan resultere i sen stent trombose8. Derfor er dyremodeller integrerte for både å forstå patofysiologien til restenose, og for å utvikle bedre terapeutiske strategier for å forlenge effekten av revaskulariseringsprosedyrer.

Flere store og smådyremodeller 9 benyttes til å studere denne patologien. Disse inkluderer ballongskade3,10 eller wire-skade11 av luminalsiden av en arterie, samt delvis ligation12 eller mansjett plassering13 rundt arterien. Ballong- og trådskaden både denude endotellaget av arterien, etterligne hva som skjer klinisk etter angioplastikk. Spesielt bruker ballongskademodeller lignende verktøy som i klinisk setting (f.eks. ballongkateter). Ballongskaden utføres best i rottemodeller, da rottearterier er en passende størrelse for kommersielt tilgjengelige ballongkateter. Her beskriver vi en trykkkontrollert segmental arteriell skade, en veletablert, modifisert versjon av rottekarotisarterieballongskade. Denne trykkkontrollerte tilnærmingen etterligner nøye den kliniske angioplastikkprosedyren, og muliggjør reproduserbar neointimal hyperplasidannelse to uker etter skade14,15. I tillegg resulterer denne trykkkontrollerte arterielle skaden i fullstendig endotellagrestaurering med 2 uker etter operasjonen16. Dette kontrasterer direkte den opprinnelige ballongskademodellen, beskrevet av Clowes, hvor endeotellaget aldri går tilbake til full dekning3.

Etter operasjonen kan terapeutiske midler brukes på eller rettes mot den skadede arterien gjennom flere tilnærminger. Metoden som er beskrevet her, bruker periadventitial bruk av et lite molekyl innebygd i en pluronisk gelløsning. Spesielt bruker vi en løsning på 100 μM cinnamisk aldehyd i 25% Pluronic-F127 gel til arterien umiddelbart etter skade for å hemme neointimal hyperplasidannelse15. Pluronic-F127 er en giftfri, termo-reversibel gel i stand til å levere legemidler lokalt på en kontrollert måte17. I mellomtiden er arteriell skade lokal, derfor tillater lokal administrasjon å teste et aktivt prinsipp samtidig som off-target effekter minimeres. Likevel vil effektiv levering av en terapeutisk ved hjelp av denne metoden avhenge av kjemien til det lille molekylet eller biologiske som brukes.

Protocol

Alle metoder som er beskrevet her har blitt godkjent av Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) ved University of North Carolina på Chapel Hill. 1. Preoperative prosedyrer Steriliser kirurgiske instrumenter. Autoklav alle kirurgiske instrumenter før operasjonen. Hvis du utfører flere operasjoner på samme dag, steriliser instrumenter mellom operasjoner ved hjelp av en tørr perlesterilisator. Forbered terapeutisk i 25% Pluronic-127 gel (fortynnet i sterilt de…

Representative Results

Figur 1 viser alle materialer og kirurgiske verktøy som brukes til å utføre denne operasjonen. Hematoksylin & eosin (H&E) farging av to ukers skadet arteriell tverrsnitt gir klar visualisering av neointimal hyperplasi. Figur 2 viser representative bilder av H&E-farget arterielle tverrsnitt av en sunn, skadet og behandlet arterie. Figur 2 skisserer også hvordan man kvantifiserer nivået av neointimal hyperplasi i en skadet arteri…

Discussion

Rottekarotisarterieballongskaden er en av de mest brukte og studerte restenosis dyremodeller. Både den opprinnelige ballongskademodellen3 og den modifiserte trykkkontrollerte segmentalskadevariasjonen10 har informert mange aspekter ved arteriell skaderespons som også forekommer hos mennesker, med de få begrensningene er at fibrinrike trombe sjelden utvikler seg og lokal betennelse er minimal sammenlignet med andre skademodeller som i hyperkolesterololiske kanin- eller sv…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

N.E.B. ble støttet av et opplæringsstipend fra National Institute of Environmental Health Sciences (5T32ES007126-35, 2018), og en American Heart Association pre-doktorgradsfellesskap (20PRE35120321). E.S.M.B. var en KL2-forsker delvis støttet av UNC Clinical and Translational Science Award-K12 Scholars Program (KL2TR002490, 2018) og National Heart, Lung, and Blood Institute (K01HL145354). Forfatterne takker Dr. Pablo Ariel fra UNC Microscopy Services Laboratory for å ha hjulpet til med LSFM. Lysarkfluoresceni ble utført ved Microscopy Services Laboratory. Microscopy Services Laboratory, Institutt for patologi og laboratoriemedisin, støttes delvis av P30 CA016086 Cancer Center Core Support Grant til UNC Lineberger Comprehensive Cancer Center.

Materials

1 mL Syringe Fisher 14955450
1 mL Syringe with needle BD 309626
2 French Fogarty Balloon Embolectomy Catheter Edwards LifeSciences 120602F
4-0 Ethilon (Nylon) Suture Ethicon Inc 662H
4-0 Vicryl Suture Ethicon Inc J214H
7-0 Prolene Suture Ethicon Inc 8800H
70% ethyl alcohol
Anti-Rabbit Alexa Fluor 647 Thermo Fisher Scientific A21245
Atropine Sulfate Vedco Inc for veterinary use
Cotton Swabs Puritan 806-WC
Curved Hemostats Fine Science Tools 13009-12
Fine Curved Forceps Fine Science Tools 11203-25
Fine Scissors Fine Science Tools 14090-11
Gauze Covidien 2252
IHC-Tek Diluent (pH 7.4) IHC World IW-1000
Insufflator Merit Medical IN4130
Iodine solution
Lubricating Eye Ointment Dechra for veterinary use
Mayo Scissors Fine Science Tools 14010-15
Micro Serrefines Fine Science Tools 18055-05
Microdissection Scissors Fine Science Tools 15004-08
Micro-Serrefine Clamp Applying Forceps Fine Science Tools 18057-14
Needle Holder Fine Science Tools 12003-15
Pluronic-127 (diluted in sterile water) Sigma-Aldrich P2443 25% prepared
Rabbit Anti-CD31 Abcam ab28364
Retractor Bent paper clips work well
Rimadyl (Carprofen) Zoetis Inc for veterinary use
Saline solution
Standard Forceps Fine Science Tools 11006-12
Sterile Drape Dynarex 4410
T-Pins

Riferimenti

  1. American Heart Association. Cardiovascular Disease: A Costly Burden for America, Projections Through 2035. American Heart Association CVD Burden Report. , (2017).
  2. Singh, R. B., Mengi, S. A., Xu, Y. J., Arneja, A. S., Dhalla, N. S. Pathogenesis of atherosclerosis: A multifactorial process. Experimental and Clinical Cardiology. 7 (1), 40-53 (2002).
  3. Clowes, A. W., Reidy, M. A., Clowes, M. M. Mechanisms of stenosis after arterial injury. Laboratory Investigation. 49 (2), 208-215 (1983).
  4. Clowes, A. W., Reidy, M. A., Clowes, M. M. Kinetics of cellular proliferation after arterial injury. I. Smooth muscle growth in the absence of endothelium. Laboratory Investigation. 49 (3), 327-333 (1983).
  5. Sartore, S., et al. Contribution of adventitial fibroblasts to neointima formation and vascular remodeling: from innocent bystander to active participant. Circulation Research. 89 (12), 1111-1121 (2001).
  6. Tanaka, K., et al. Circulating progenitor cells contribute to neointimal formation in nonirradiated chimeric mice. The FASEB Journal. 22 (2), 428-436 (2008).
  7. Henry, M., et al. Carotid angioplasty and stenting under protection. Techniques, results and limitations. The Journal of Cardiovascular Surgery. 47 (5), 519-546 (2006).
  8. Kounis, N. G., et al. Thrombotic responses to coronary stents, bioresorbable scaffolds and the Kounis hypersensitivity-associated acute thrombotic syndrome. Journal of Thoracic Disease. 9 (4), 1155-1164 (2017).
  9. Jackson, C. L. Animal models of restenosis. Trends in Cardiovascular Medicine. 4 (3), 122-130 (1994).
  10. Shears, L. L., et al. Efficient inhibition of intimal hyperplasia by adenovirus-mediated inducible nitric oxide synthase gene transfer to rats and pigs in vivo. Journal of the American College of Surgeons. 187 (3), 295-306 (1998).
  11. Takayama, T., et al. A murine model of arterial restenosis: technical aspects of femoral wire injury. Journal of Visualized Experiments. (97), (2015).
  12. Zhang, L. N., Parkinson, J. F., Haskell, C., Wang, Y. X. Mechanisms of intimal hyperplasia learned from a murine carotid artery ligation model. Current Vascular Pharmacology. 6 (1), 37-43 (2008).
  13. Jahnke, T., et al. Characterization of a new double-injury restenosis model in the rat aorta. Journal of Endovascular Therapy. 12 (3), 318-331 (2005).
  14. Gregory, E. K., et al. Periadventitial atRA citrate-based polyester membranes reduce neointimal hyperplasia and restenosis after carotid injury in rats. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 307 (10), 1419-1429 (2014).
  15. Buglak, N. E., Jiang, W., Bahnson, E. S. M. Cinnamic aldehyde inhibits vascular smooth muscle cell proliferation and neointimal hyperplasia in Zucker Diabetic Fatty rats. Redox Biology. 19, 166-178 (2018).
  16. Bahnson, E. S., et al. Long-term effect of PROLI/NO on cellular proliferation and phenotype after arterial injury. Free Radical Biology and Medicine. 90, 272-286 (2016).
  17. Gilbert, J. C. W., Davies, M. C., Hadgraft, J. The behaviour of Pluronic F127 in aqueous solution studied using fluorescent probes. International Journal of Pharmaceutics. 40 (1-2), 93-99 (1987).
  18. Tulis, D. A. Histological and morphometric analyses for rat carotid balloon injury model. Methods in Molecular Medicine. 139, 31-66 (2007).
  19. Buglak, N. E., et al. Light Sheet Fluorescence Microscopy as a New Method for Unbiased Three-Dimensional Analysis of Vascular Injury. Cardiovascular Research. , (2020).
  20. Renier, N., et al. iDISCO: a simple, rapid method to immunolabel large tissue samples for volume imaging. Cell. 159 (4), 896-910 (2014).
  21. Ariel, P. . UltraMicroscope II – A User Guide. , (2018).
  22. Touchard, A. G., Schwartz, R. S. Preclinical restenosis models: challenges and successes. Toxicologic Pathology. 34 (1), 11-18 (2006).
  23. Xiangdong, L., et al. Animal models for the atherosclerosis research: a review. Protein Cell. 2 (3), 189-201 (2011).
  24. Chen, H., Li, D., Liu, M. Novel Rat Models for Atherosclerosis. Journal of Cardiology and Cardiovascular Sceinces. 2 (2), 29-33 (2018).
  25. Xing, D., Nozell, S., Chen, Y. F., Hage, F., Oparil, S. Estrogen and mechanisms of vascular protection. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 29 (3), 289-295 (2009).
  26. Tulis, D. A. Rat carotid artery balloon injury model. Methods in Molecular Medicine. 139, 1-30 (2007).
  27. Pellet-Many, C., et al. Neuropilins 1 and 2 mediate neointimal hyperplasia and re-endothelialization following arterial injury. Cardiovascular Research. 108 (2), 288-298 (2015).
  28. Wu, B., et al. Perivascular delivery of resolvin D1 inhibits neointimal hyperplasia in a rat model of arterial injury. Journal of Vascular Surgery. 65 (1), 207-217 (2017).
  29. Tan, J., Yang, L., Liu, C., Yan, Z. MicroRNA-26a targets MAPK6 to inhibit smooth muscle cell proliferation and vein graft neointimal hyperplasia. Scientific Reports. 7, 46602 (2017).
  30. Pearce, C. G., et al. Beneficial effect of a short-acting NO donor for the prevention of neointimal hyperplasia. Free Radical Biology and Medicine. 44 (1), 73-81 (2008).
  31. Cao, T., et al. S100B promotes injury-induced vascular remodeling through modulating smooth muscle phenotype. Biochimica et Biophysica Acta – Molecular Basis of Disease. 1863 (11), 2772-2782 (2017).
  32. Madigan, M., Entabi, F., Zuckerbraun, B., Loughran, P., Tzeng, E. Delayed inhaled carbon monoxide mediates the regression of established neointimal lesions. Journal of Vascular Surgery. 61 (4), 1026-1033 (2015).
  33. Khurana, R., et al. Angiogenesis-dependent and independent phases of intimal hyperplasia. Circulation. 110 (16), 2436-2443 (2004).
  34. Tsihlis, N. D., Vavra, A. K., Martinez, J., Lee, V. R., Kibbe, M. R. Nitric oxide is less effective at inhibiting neointimal hyperplasia in spontaneously hypertensive rats. Nitric Oxide. 35, 165-174 (2013).
  35. Chen, J., et al. Inhibition of neointimal hyperplasia in the rat carotid artery injury model by a HMGB1 inhibitor. Atherosclerosis. 224 (2), 332-339 (2012).
  36. Mano, T., Luo, Z., Malendowicz, S. L., Evans, T., Walsh, K. Reversal of GATA-6 downregulation promotes smooth muscle differentiation and inhibits intimal hyperplasia in balloon-injured rat carotid artery. Circulation Research. 84 (6), 647-654 (1999).
  37. Becher, T., et al. Three-Dimensional Imaging Provides Detailed Atherosclerotic Plaque Morphology and Reveals Angiogenesis after Carotid Artery Ligation. Circulation Research. 126 (5), 619-632 (2020).
check_url/it/60473?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Buglak, N. E., Bahnson, E. S. M. A Rat Carotid Artery Pressure-Controlled Segmental Balloon Injury with Periadventitial Therapeutic Application. J. Vis. Exp. (161), e60473, doi:10.3791/60473 (2020).

View Video