Summary

Evaluación de la autoregulación del flujo sanguíneo cerebral en la rata mediante la fluidmetría Doppler láser

Published: January 19, 2020
doi:

Summary

Este artículo demuestra el uso de láser Doppler flowmetry para evaluar la capacidad de la circulación cerebral para autoregular su flujo sanguíneo durante las reducciones en la presión arterial.

Abstract

Al investigar los mecanismos del cuerpo para regular el flujo sanguíneo cerebral, se puede obtener una medición relativa del flujo sanguíneo microcirculatorio utilizando lametría de flujo Doppler láser (LDF). Este artículo muestra una preparación de cráneo cerrado que permite evaluar el flujo sanguíneo cerebral sin penetrar el cráneo ni instalar una cámara o ventana cerebral. Para evaluar los mecanismos de autoregulatory, se puede utilizar un modelo de reducción controlada de la presión arterial a través de hemorragia calificada mientras se emplea simultáneamente LDF. Esto permite el seguimiento en tiempo real de los cambios relativos en el flujo sanguíneo en respuesta a las reducciones en la presión arterial producidapor por la abstinencia del volumen sanguíneo circulante. Este paradigma es un enfoque valioso para estudiar la autorregulación del flujo sanguíneo cerebral durante las reducciones de la presión arterial y, con pequeñas modificaciones en el protocolo, también es valioso como modelo experimental de shock hemorrágico. Además de evaluar las respuestas autorreguladoras, el LDF se puede utilizar para monitorear el flujo sanguíneo cortical al investigar mecanismos metabólicos, miogénicos, endoteliales, humorales o neuronales que regulan el flujo sanguíneo cerebral y el impacto de varios mecanismos experimentales intervenciones y condiciones patológicas en el flujo sanguíneo cerebral.

Introduction

Los mecanismos de autorregulación en la circulación cerebral juegan un papel crucial en el mantenimiento de la homeostasis y la función normal en el cerebro. La autorregulación del flujo sanguíneo cerebral se ve afectada por múltiples factores, incluyendo la frecuencia cardíaca, la velocidad de la sangre, la presión de perfusión, el diámetro de las arterias de resistencia cerebral y la resistencia microcirculatoria, todos los cuales juegan un papel en el mantenimiento constante del flujo sanguíneo cerebral total en el cerebro sobre el rango fisiológico de las presiones arteriales sistémicas. Cuando aumenta la presión arterial, estos mecanismos constriñen las arterias y las arterias de resistencia para prevenir aumentos peligrosos en la presión intracraneal. Cuando la presión arterial disminuye, los mecanismos de control locales dilatan las arterias para mantener la perfusión tisular y la administración de O2. Diversas condiciones patológicas tales como hipercapnia, lesión cerebral hipoxica traumática o global, y microangiopatía diabética1,2,3,4,5,6 puede alterar la capacidad del cerebro para regular automáticamente su flujo sanguíneo. Por ejemplo, la hipertensión crónica desplaza el rango autoregulador efectivo hacia presiones más altas7,8,9, y una dieta alta en sal (HS) no sólo interfiere con la dilatación normal dependiente del endotelio en la microcirculación cerebral10, sino que también afecta la capacidad de los mecanismos de autorregulación en la circulación cerebral para dilatar y mantener la perfusión arterial cuando se reduce la presión arterial11. La autorregulación cerebral también se ve afectada en ratas sensibles a la sal de Dahl cuando se les alimenta una dieta delSA 12.

Durante las reducciones de la presión arterial, la dilatación de las arterias de resistencia cerebral y arteriolas inicialmente devuelve el flujo sanguíneo cerebral para controlar los valores a pesar de la presión de perfusión reducida. A medida que la presión arterial se reduce aún más, el flujo sanguíneo cerebral permanece constante en la presión más baja (fase de meseta de la respuesta autorreguladora) hasta que la vasculatura ya no puede dilatarse para mantener el flujo sanguíneo a la presión más baja. La presión más baja a la que un órgano puede mantener el flujo sanguíneo normal se denomina límite inferior de autorregulación (LLA). A presiones por debajo de la LLA, el flujo sanguíneo cerebral disminuye significativamente de los valores en reposo y disminuye de manera lineal con cada reducción de la presión arterial de perfusión13,14. Un cambio ascendente en el LLA, como se observa en la hipertensión7,8,9, puede aumentar el riesgo y la gravedad de la lesión isquémica durante las condiciones donde se reduce la presión de perfusión arterial (por ejemplo, infarto de miocardio, accidente cerebrovascular isquémico, o choque circulatorio).

LDF ha demostrado ser un enfoque extremadamente valioso para evaluar el flujo sanguíneo en la microcirculación en una variedad de circunstancias, incluyendo la autorregulación del flujo sanguíneo en la circulación cerebral11,14,15. Además de evaluar las respuestas autorreguladoras, LDF se puede utilizar para monitorear el flujo sanguíneo cortical al investigar mecanismos metabólicos, miogénicos, endoteliales, humorales o neuronales que regulan el flujo sanguíneo cerebral y el impacto de diversas intervenciones experimentales y condiciones patológicas en el flujo sanguíneo cerebral10,16,17,18,19,20,21.

LDF mide el cambio en la luz láser reflejada en respuesta al número y la velocidad de las partículas en movimiento, en este caso, los glóbulos rojos (RBC). Para estudios de autoregulación vascular cerebral, la presión arterial se cambia ya sea por la infusión de un agonista alfa-adrenérgico para aumentar la presión arterial (porque la propia circulación cerebral es insensible a los agonistas vasoconstrictores alfa-adrenérgicos)12,15 o a través de la retirada controlada del volumen sanguíneo para reducir la presión arterial11,14. En el presente estudio, LDF se utiliza para demostrar los efectos de reducciones calificadas en la presión arterial en la autorregulación cerebral en una rata sana. Aunque los métodos de cráneo abierto y cerrado se han descrito en la literatura22,23,24,25, el presente documento demuestra una preparación de cráneo cerrado, permitiendo que el flujo sanguíneo cerebral se evalúe sin penetrar el cráneo o instalar una cámara o ventana cerebral.

Protocol

El Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de Wisconsin (IACUC) aprobó todos los protocolos descritos en este documento y todos los procedimientos están en conformidad con la Oficina de Bienestar Animal de Laboratorio de los Institutos Nacionales de Salud (NIH) (OLAW) Reglamentos. 1. Animales experimentales y preparación para el registro Utilice ratas Sprague-Dawley machos de 8 a 12 semanas que pesen 250–300 g. Para estos experimentos, alimentar ratas una dieta están…

Representative Results

La Figura 2 resume los resultados de los experimentos realizados en 10 ratas macho Sprague-Dawley alimentados con comida de laboratorio estándar. En esos experimentos, la LCBF media se mantuvo dentro del 20% del valor de la prehemorragia después de las tres primeras extracciones del volumen sanguíneo, hasta que la presión arterial media alcanzó la LLA. Las posteriores retiradas del volumen sanguíneo a presiones por debajo de la LLA causaron una reducción progresiva de lcbf, lo que dem…

Discussion

Evaluación de las respuestas de flujo sanguíneo de tejido con flowmetría doppler láser (LDF). Como se señaló anteriormente, la señal LDF es proporcional al número y la velocidad de las partículas en movimiento, en este caso RBC, en la microcirculación. Las lecturas de LDF en diferentes órganos están bien correlacionadas con el flujo sanguíneo de órganos enteros evaluados mediante métodos establecidos como medidores de flujo electromagnético sormotores y microesferas radiactivas<sup class=…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores expresan su sincero agradecimiento a Kaleigh Kozak, Megan Stumpf y Jack Bullis por su excelente ayuda para completar este estudio y preparar el manuscrito. Soporte de subvención: NIH #R01-HL128242, #R21-OD018309 y #R21-OD024781.

Materials

3-0 braided black silk suture Midwest Vet 193.73000.2
Arterial Pressure Transducer Merit Medical 041516504A
Automated Data Acquisition Systems (WINDAQ & BIOPAC system) DATAQ Instruments
Blood Pressure Display Unit Stoelting 50115
Circulating warm water pump Gaymar Industries T-pump
End-tidal CO2 monitor Stoelting Capstar-100
Heparin Sodium Midwest Vet 191.46720.3
Kimwipe Fisher Scientific 06-666A
Laser Doppler Flow Meter Perimed PeriFlux 5000 LDPM
Laser Doppler Refill Motility Standard Perimed PF1001
Polyethylene Tubing (PE240) (for trachea cannula) VWR 63018-828
Polyethylene Tubing (PE50) (for femoral catheters) VWR 63019-048
Rodent Ventilator Cwe/Stoelting SAR-830/P
Saline Midwest Vet 193.74504.3
Sprague-Dawley Outbred Rats Variable N/A Rats were ordered from various companies
Standard Rat Chow Dyets, Inc. 113755
Stereotaxic Instrument Cwe/Stoelting Clasic Lab Standard

Riferimenti

  1. Aso, Y., Inukai, T., Takemura, Y. Evaluation of microangiopathy of the skin in patients with non-insulin-dependent diabetes mellitus by laser Doppler flowmetry; microvasodilatory responses to beraprost sodium. Diabetes Research and Clinical Practice. 36, 19-26 (1997).
  2. Golding, E. M., Robertson, C. S., Bryan, R. M. The consequences of traumatic brain injury on cerebral blood flow and autoregulation: a review. Clinical and Experimental Hypertension. 21, 299-332 (1999).
  3. Grunwald, J. E., DuPont, J., Riva, C. E. Retinal haemodynamics in patients with early diabetes mellitus. British Journal of Ophthalmology. 80, 327-331 (1996).
  4. Mankovsky, B. N., Piolot, R., Mankovsky, O. L., Ziegler, D. Impairment of cerebral autoregulation in diabetic patients with cardiovascular autonomic neuropathy and orthostatic hypotension. Diabetic Medicine. 20, 119-126 (2003).
  5. Symon, L., Held, K., Dorsch, N. W. A study of regional autoregulation in the cerebral circulation to increased perfusion pressure in normocapnia and hypercapnia. Stroke. 4, 139-147 (1973).
  6. Taccone, F. S., et al. Cerebral autoregulation is influenced by carbon dioxide levels in patients with septic shock. Neurocritical Care. 12, 35-42 (2010).
  7. Barry, D. I., et al. Cerebral blood flow in rats with renal and spontaneous hypertension: resetting of the lower limit of autoregulation. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 2, 347-353 (1982).
  8. Faraci, F. M., Baumbach, G. L., Heistad, D. D. Cerebral circulation: humoral regulation and effects of chronic hypertension. Journal of the American Society of Nephrology. 1, 53-57 (1990).
  9. Strandgaard, S. Autoregulation of cerebral blood flow in hypertensive patients. The modifying influence of prolonged antihypertensive treatment on the tolerance to acute, drug-induced hypotension. Circulation. 53, 720-727 (1976).
  10. McEwen, S. T., Schmidt, J. R., Somberg, L., de la Cruz, L., Lombard, J. H. Time-course and mechanisms of restored vascular relaxation by reduced salt intake and angiotensin II infusion in rats fed a high-salt diet. Microcirculation. 16, 220-234 (2009).
  11. Allen, L. A., et al. High salt diet impairs cerebral blood flow regulation via salt-induced angiotensin II suppression. Microcirculation. , e12518 (2018).
  12. Smeda, J. S., Payne, G. W. Alterations in autoregulatory and myogenic function in the cerebrovasculature of Dahl salt-sensitive rats. Stroke. 34, 1484-1490 (2003).
  13. Greene, N. H., Lee, L. A. Modern and Evolving Understanding of Cerebral Perfusion and Autoregulation. Advances in Anesthesia. 30, 97-129 (2012).
  14. Merzeau, S., Preckel, M. P., Fromy, B., Leftheriotis, G., Saumet, J. L. Differences between cerebral and cerebellar autoregulation during progressive hypotension in rats. Neuroscience Letters. 280, 103-106 (2000).
  15. Zagorac, D., Yamaura, K., Zhang, C., Roman, R. J., Harder, D. R. The effect of superoxide anion on autoregulation of cerebral blood flow. Stroke. 36, 2589-2594 (2005).
  16. Hudetz, A. G., Lee, J. G., Smith, J. J., Bosnjak, Z. J., Kampine, J. P. Effects of volatile anesthetics on cerebrocortical laser Doppler flow: hyperemia, autoregulation, carbon dioxide response, flow oscillations, and role of nitric oxide. Advances in Pharmacology. 31, 577-593 (1994).
  17. Hudetz, A. G., Shen, H., Kampine, J. P. Nitric oxide from neuronal NOS plays critical role in cerebral capillary flow response to hypoxia. American Journal of Physiology. 274, H982-H989 (1998).
  18. Okamoto, H., Hudetz, A. G., Roman, R. J., Bosnjak, Z. J., Kampine, J. P. Neuronal NOS-derived NO plays permissive role in cerebral blood flow response to hypercapnia. American Journal of Physiology. 272, H559-H566 (1997).
  19. Okamoto, H., Roman, R. J., Kampine, J. P., Hudetz, A. G. Endotoxin augments cerebral hyperemic response to halothane by inducing nitric oxide synthase and cyclooxygenase. Anesthesia and Analgesia. 91, 896-903 (2000).
  20. Schulte, M. L., Hudetz, A. G. Functional hyperemic response in the rat visual cortex under halothane anesthesia. Neuroscience Letters. 394, 63-68 (2006).
  21. Schulte, M. L., Li, S. J., Hyde, J. S., Hudetz, A. G. Digit tapping model of functional activation in the rat somatosensory cortex. Journal of Neuroscience Methods. 157, 48-53 (2006).
  22. Alkayed, N. J., et al. Inhibition of brain P-450 arachidonic acid epoxygenase decreases baseline cerebral blood flow. American Journal of Physiology. 271, H1541-H1546 (1996).
  23. Alonso-Galicia, M., Hudetz, A. G., Shen, H., Harder, D. R., Roman, R. J. Contribution of 20-HETE to vasodilator actions of nitric oxide in the cerebral microcirculation. Stroke. 30, 2727-2734 (1999).
  24. Kurosawa, M., Messlinger, K., Pawlak, M., Schmidt, R. F. Increase of meningeal blood flow after electrical stimulation of rat dura mater encephali: mediation by calcitonin gene-related peptide. British Journal of Pharmacology. 114, 1397-1402 (1995).
  25. Mayhan, W. G., Faraci, F. M., Heistad, D. D. Impairment of endothelium-dependent responses of cerebral arterioles in chronic hypertension. American Journal of Physiology. 253, H1435-H1440 (1987).
  26. Ghali, M. G. Z. Microsurgical technique for tracheostomy in the rat. MethodsX. 5, 61-67 (2018).
  27. Ghali, M. G. Z. Microsurgical technique for femoral vascular access in the rat. MethodsX. 4, 498-507 (2017).
  28. Takada, J., et al. Valsartan improves the lower limit of cerebral autoregulation in rats. Hypertension Research. 29, 621-626 (2006).
  29. Jones, S. C., Radinsky, C. R., Furlan, A. J., Chyatte, D., Perez-Trepichio, A. D. Cortical NOS inhibition raises the lower limit of cerebral blood flow-arterial pressure autoregulation. American Journal of Physiology. 276, H1253-H1262 (1999).
  30. Smits, G. J., Roman, R. J., Lombard, J. H. Evaluation of laser-Doppler flowmetry as a measure of tissue blood flow. Journal of Applied Physiology (1985). 61, 666-672 (1986).
  31. Durand, M. J., Raffai, G., Weinberg, B. D., Lombard, J. H. Angiotensin-(1-7) and low-dose angiotensin II infusion reverse salt-induced endothelial dysfunction via different mechanisms in rat middle cerebral arteries. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 299, H1024-H1033 (2010).
  32. Lombard, J. H., Sylvester, F. A., Phillips, S. A., Frisbee, J. C. High-salt diet impairs vascular relaxation mechanisms in rat middle cerebral arteries. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 284, H1124-H1133 (2003).
  33. Weber, D. S., Lombard, J. H. Elevated salt intake impairs dilation of rat skeletal muscle resistance arteries via ANG II suppression. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 278, H500-H506 (2000).
  34. Weber, D. S., Lombard, J. H. Angiotensin II AT1 receptors preserve vasodilator reactivity in skeletal muscle resistance arteries. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 280, H2196-H2202 (2001).
  35. Liu, Y., Rusch, N. J., Lombard, J. H. Loss of endothelium and receptor-mediated dilation in pial arterioles of rats fed a short-term high salt diet. Hypertension. 33, 686-688 (1999).
  36. Priestley, J. R., et al. Reduced angiotensin II levels cause generalized vascular dysfunction via oxidant stress in hamster cheek pouch arterioles. Microvascular Research. 89, 134-145 (2013).
  37. McEwen, S. T., Balus, S. F., Durand, M. J., Lombard, J. H. Angiotensin II maintains cerebral vascular relaxation via EGF receptor transactivation and ERK1/2. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 297, H1296-H1303 (2009).
  38. Jensen, N. F., Todd, M. M., Kramer, D. J., Leonard, P. A., Warner, D. S. A comparison of the vasodilating effects of halothane and isoflurane on the isolated rabbit basilar artery with and without intact endothelium. Anesthesiology. 76, 624-634 (1992).
  39. Avram, M. J., et al. Isoflurane alters the recirculatory pharmacokinetics of physiologic markers. Anesthesiology. 92, 1757-1768 (2000).
  40. Wang, Z., Schuler, B., Vogel, O., Arras, M., Vogel, J. What is the optimal anesthetic protocol for measurements of cerebral autoregulation in spontaneously breathing mice?. Experimental Brain Research. 207, 249-258 (2010).
  41. Ayata, C., et al. Pronounced hypoperfusion during spreading depression in mouse cortex. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 24, 1172-1182 (2004).
  42. Niwa, K., et al. Cerebrovascular autoregulation is profoundly impaired in mice overexpressing amyloid precursor protein. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 283, H315-H323 (2002).
  43. Carreira, S., et al. Diaphragmatic Function Is Preserved during Severe Hemorrhagic Shock in the Rat. Anesthesiology. 120, 425-435 (2014).
  44. Kerby, J. D., et al. Resuscitation from hemorrhagic shock with HBOC-201 in the setting of traumatic brain injury. Shock. 27, 652-656 (2007).
  45. Krejci, V., et al. Continuous measurements of microcirculatory blood flow in gastrointestinal organs during acute haemorrhage. British Journal of Anaesthesia. 84, 468-475 (2000).
  46. Rosengarte, B., Hecht, M., Wolff, S., Kaps, M. Autoregulative function in the brain in an endotoxic rat shock model. Inflammation Research. 57, 542-546 (2008).
  47. Rozet, I., et al. Cerebral autoregulation and CO2 reactivity in anterior and posterior cerebral circulation during sevoflurane anesthesia. Anesthesia and Analgesia. 102, 560-564 (2006).
  48. Hudetz, A. G., Biswal, B. B., Feher, G., Kampine, J. P. Effects of hypoxia and hypercapnia on capillary flow velocity in the rat cerebral cortex. Microvascular Research. 54, 35-42 (1997).
  49. Shi, Y., et al. Interaction of mechanisms involving epoxyeicosatrienoic acids, adenosine receptors, and metabotropic glutamate receptors in neurovascular coupling in rat whisker barrel cortex. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 28, 111-125 (2008).

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Citazione di questo articolo
Allen, L. A., Terashvili, M., Gifford, A., Lombard, J. H. Evaluation of Cerebral Blood Flow Autoregulation in the Rat Using Laser Doppler Flowmetry. J. Vis. Exp. (155), e60540, doi:10.3791/60540 (2020).

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