Summary

Desarrollo de un Modelo Experimental No Invasivo, Asistido por Láser de Pérdida Celular Endotelial Corneal

Published: April 24, 2020
doi:

Summary

Aquí, presentamos un protocolo para separar las células endoteliales corneales (CEC) de la membrana de Descemet (DM) utilizando un láser neodimio:YAG (Nd:YAG) como modelo de enfermedad ex vivo para la queratopatía bullosa (BK).

Abstract

Los láseres Nd:YAG se han utilizado para realizar cirugía intraocular no invasiva, como la capsulotomía desde hace varias décadas. El efecto incisivo se basa en la descomposición óptica en el foco láser. Se generan ondas de choque acústicas y burbujas de cavitación, causando ruptura del tejido. Los tamaños de burbuja y las amplitudes de presión varían con la energía del pulso y la posición del punto focal. En este estudio, los ojos porcinos enucleados se colocaron frente a un láser Nd:YAG disponible comercialmente. Se probaron las energías de pulso variables, así como las diferentes posiciones de los puntos focales posteriores a la córnea. Las lesiones resultantes fueron evaluadas por microscopía de dos fotones e histología para determinar los mejores parámetros para un desprendimiento exclusivo de células endoteliales corneales (CEC) con un daño colateral mínimo. Las ventajas de este método son la ablación precisa de la CEC, la reducción de los daños colaterales y, sobre todo, el tratamiento sin contacto.

Introduction

La transparencia de la córnea es esencial para la transmisión de la luz a la retina y sus fotorreceptores1. En este sentido, un estado relativo de deshidratación es fundamental para mantener las fibras de colágeno dentro del estroma corneal correctamente alineados. Esta homeostasis es mantenida por células endoteliales corneales (CEC) ubicadas en la membrana del Descemet (DM)2. El endotelio es la capa corneal más interna. Tiene una importante función de barrera y bomba, que es crucial para la transparencia corneal3. A diferencia del epitelio, el endotelio no es capaz de renovarse así mismo 4. Por lo tanto, cualquier daño celular causado por enfermedad o trauma estimula las células endoteliales restantes para agrandar y migrar, para cubrir los defectos resultantes y para mantener la funcionalidad corneal5. Sin embargo, si la densidad CEC cae por debajo de un umbral crítico, la descompensación del endotelio conduce a un edema, lo que resulta en visión borrosa y malestar o incluso dolor intenso4. A pesar de la disponibilidad de fármacos para aliviar los síntomas, actualmente el único tratamiento definitivo en estos casos es el trasplante de córnea, que se puede realizar en forma de un injerto de espesor completo o un trasplante endotelial lamelar. Este último procedimiento está disponible como queratoplastia endotelial de membrana (DMEK) de Descemet, así como como queratoplastia endotelial automatizada de Descemet (DSAEK)6. Sin embargo, la protección de la CEC restante y la mejora de su supervivencia podrían ser un objetivo alternativo, que necesita un modelo adecuado de enfermedad para probar posibles medicamentos terapéuticos.

Los modelos actuales de enfermedad por pérdida de CEC se centran en la destrucción del endotelio mediante la inyección de agentes tóxicos (por ejemplo, cloruro de benzalconio) en la cámara anterior o por abrasión mecánica de las células mediante una técnica invasiva dedescemetorhexis7,8. Si bien estos modelos están bien establecidos, existen desventajas como la respuesta inflamatoria general y los daños colaterales imprecisos. Por lo tanto, estos modelos son más propensos a representar las etapas finales de la enfermedad, cuando las opciones quirúrgicas antes mencionadas son inevitables.

Con los avances en las estrategias de tratamiento celular como las células madre y la terapia génica, la aplicación de estas terapias celulares podría ser útil en las primeras etapas de la pérdida de CEC9. Posteriormente, necesitamos un modelo que represente estas etapas tempranas de la enfermedad de manera más adecuada. En este sentido, los modelos de cultivo celular han mejorado en la última década, pero todavía están limitados en su validez, ya que las células in vitro no pueden acercarse a replicar las complejas interacciones que se producen entre los diferentes tipos de células dentro de la córnea10. Por lo tanto, los modelos de enfermedad ex vivo e in vivo siguen siendo muy demandados y mejorar los existentes es de suma interés.

La cirugía intraocular no invasiva por fotodisfial utilizando un láser neodimio:YAG (Nd:YAG) se ha convertido en un procedimiento de rutina para oftalmólogos de todo el mundo desde su introducción a finales de la década de 197011. La fotorinterrupción se basa en la absorción de luz no lineal que conduce a la formación de plasma, generación de ondas de choque acústicas y creación de burbujas de cavitación, siempre que el sitio de aplicación se encuentra en un entorno líquido12. En general, estos procesos contribuyen al efecto previsto del corte preciso de tejidos. Sin embargo, también pueden ser la fuente de daños colaterales innecesarios que limitan el confinamiento local de la cirugía láser13.

La predicción de los efectos mecánicos resultantes ha mejorado significativamente a través de la caracterización del curso de propagación de ondas de choque y cavitación. Nuestro objetivo es atacar la CEC con el menor daño posible al tejido circundante para proporcionar un modelo de enfermedad experimental no invasiva, asistida por láser para las primeras etapas de la pérdida de CEC. Para ello, es necesario determinar las energías óptimas del pulso y las posiciones de los puntos focales del láser.

Protocol

Todos los procedimientos relacionados con el tejido animal siguen las directrices del Comité local de cuidado y ética de los animales. 1. Preparación del cultivo de órganos y tratamiento con láser Obtenga ojos porcinos recién enucledados del matadero local. Manténgalos frescos (4oC) en el medio águila modificado de Dulbecco (DMEM) con alta glucosa, complementado con L-glutamina, piruvato sódico, penicilina/estreptomicina (1%), y suero porcino (10%), a partir de ahora mencion…

Representative Results

Usando el procedimiento presentado aquí, tratamos los ojos con un láser Nd:YAG, evaluando diferentes energías de pulso (1.0-4.6 mJ) y posiciones de los puntos focales (distancia de la superficie posterior de la córnea: 0.0-0.2 mm) para encontrar los parámetros óptimos. Se evaluaron múltiples réplicas (n x 3) para cada constelación de los parámetros láser (12 x 21). Además del protocolo antes mencionado, la muestra fue analizada con un microscopio de dos fotones antes de la fijació…

Discussion

Los resultados de este estudio piloto indican que un láser Nd:YAG se puede utilizar para ablar selectivamente las células endoteliales corneales cuando se eligen los parámetros adecuados para la dosis de energía y la posición del punto de enfoque.

Como la función endotelial es importante para la transparencia corneal y la protección de la córnea del edema estromales, los modelos de disfunción endotelial juegan un papel importante en el desarrollo de fármacos antiedematosos o procedim…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos a Christine y Jan A. M. Sochurek por su ayuda con métodos experimentales.

Materials

BARRON VACUUM TREPHINE Katena K20-2058
Cryostat Leica CM 3050S
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium – high glucose PAA E-15009
Eye holder Self N/A
Inverted Microscope Leica DMI 6000 B
KH2PO4 Merck 529568
Na2HPO4 Merck 1065860500
Nd:YAG laser Zeiss Meditec visuLAS YAG II plus
OCT Tissue Tek Sakura Finetechnical 4583
Penicillin-Streptomycin Sigma-Aldrich P4333
Phosphate Buffered Saline (PBS) Gibco 10010056
Porcine serum Sigma-Aldrich 12736C
Spectral-domain optical coherence tomograph Heidelberg Engineering Spectralis
Tissue culture plate 12-well Sarstedt 833921
Two-Photon Microscope JenLab DermaInspect
Viscoelastic OmniVision Methocel

Riferimenti

  1. DelMonte, D. W., Kim, T. Anatomy and physiology of the cornea. Journal of Cataract and Refractive Surgery. 37 (3), 588-598 (2011).
  2. Edelhauser, H. F. The balance between corneal transparency and edema: the Proctor Lecture. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 47 (5), 1754-1767 (2006).
  3. Tuft, S. J., Coster, D. J. The corneal endothelium. Eye. 4, 389-424 (1990).
  4. Bourne, W. M. Biology of the corneal endothelium in health and disease. Eye. 17, 912-918 (2003).
  5. He, Z., et al. 3D map of the human corneal endothelial cell. Scientific Reports. 6, 29047 (2016).
  6. Gain, P., et al. Global Survey of Corneal Transplantation and Eye Banking. JAMA Ophthalmology. 134 (2), 167-173 (2016).
  7. Schwartzkopff, J., Bredow, L., Mahlenbrey, S., Boehringer, D., Reinhard, T. Regeneration of corneal endothelium following complete endothelial cell loss in rat keratoplasty. Molecular Vision. 16, 2368-2375 (2010).
  8. Bredow, L., Schwartzkopff, J., Reinhard, T. Regeneration of corneal endothelial cells following keratoplasty in rats with bullous keratopathy. Molecular Vision. 20, 683-690 (2014).
  9. Bartakova, A., Kunzevitzky, N. J., Goldberg, J. L. Regenerative Cell Therapy for Corneal Endothelium. Current Ophthalmology Reports. 2 (3), 81-90 (2014).
  10. Zhao, B., et al. Development of a three-dimensional organ culture model for corneal wound healing and corneal transplantation. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 47 (7), 2840-2846 (2006).
  11. Aron-Rosa, D., Aron, J. J., Griesemann, M., Thyzel, R. Use of the neodymium-YAG laser to open the posterior capsule after lens implant surgery: a preliminary report. Journal – American Intra-Ocular Implant Society. 6 (4), 352-354 (1980).
  12. Vogel, A., Hentschel, W., Holzfuss, J., Lauterborn, W. Cavitation bubble dynamics and acoustic transient generation in ocular surgery with pulsed neodymium: YAG lasers. Ophthalmology. 93 (10), 1259-1269 (1986).
  13. Vogel, A., Schweiger, P., Frieser, A., Asiyo, M. N., Birngruber, R. Intraocular Nd:YAG laser surgery: laser-tissue interaction, damage range, and reduction of collateral effects. IEEE Journal of Quantum Electronics. 26 (12), 2240-2260 (1990).
  14. Zhu, Q., Zhu, Y., Tighe, S., Liu, Y., Hu, M. Engineering of Human Corneal Endothelial Cells In Vitro. International Journal of Medical Sciences. 16 (4), 507-512 (2019).
  15. Li, Z., et al. Nicotinamide inhibits corneal endothelial mesenchymal transition and accelerates wound healing. Experimental Eye Research. 184, 227-233 (2019).
  16. Pescina, S., et al. Development of a convenient ex vivo model for the study of the transcorneal permeation of drugs: histological and permeability evaluation. Journal of Pharmaceutical Sciences. 104 (1), 63-71 (2015).
  17. Smeringaiova, I., et al. Endothelial Wound Repair of the Organ-Cultured Porcine Corneas. Current Eye Research. 43 (7), 856-865 (2018).
  18. Yamashita, K., et al. A Rabbit Corneal Endothelial Dysfunction Model Using Endothelial-Mesenchymal Transformed Cells. Scientific Reports. 8 (1), 16868 (2018).
  19. Schubert, H. D., Trokel, S. Endothelial repair following Nd:YAG laser injury. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 25 (8), 971-976 (1984).
  20. Zhang, W., et al. Rabbit Model of Corneal Endothelial Injury Established Using the Nd: YAG Laser. Cornea. 36 (10), 1274-1281 (2017).
  21. McCally, R. L., Bonney-Ray, J., de la Cruz, Z., Green, W. R. Corneal endothelial injury thresholds for exposures to 1.54 micro m radiation. Health Physics. 92 (3), 205-211 (2007).
  22. Nash, J. P., Wickham, M. G., Binder, P. S. Corneal damage following focal laser intervention. Experimental Eye Research. 26 (6), 641-650 (1978).
check_url/it/60542?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Holzhey, A., Sonntag, S., Rendenbach, J., Ernesti, J. S., Kakkassery, V., Grisanti, S., Reinholz, F., Freidank, S., Vogel, A., Ranjbar, M. Development of a Noninvasive, Laser-Assisted Experimental Model of Corneal Endothelial Cell Loss. J. Vis. Exp. (158), e60542, doi:10.3791/60542 (2020).

View Video