Protokollet beskriver en ny in vivo-musmodell av ryggradsimplantatinfektion där ett k-trådimplantat av rostfritt stål infekteras med bioluminescerande Staphylococcus aureus Xen36. Bakteriebördan övervakas longitudinellt med bioluminescerande avbildning och bekräftas med antal kolonibildande enheter efter avlivning.
Infektioner i ryggradsimplantat förebådar dåliga resultat eftersom diagnosen är utmanande och kirurgisk utrotning står i strid med den mekaniska ryggradsstabiliteten. Syftet med denna metod är att beskriva en ny musmodell av ryggradsimplantatinfektion (SII) som skapades för att ge ett billigt, snabbt och exakt in vivo-verktyg för att testa potentiella terapier och behandlingsstrategier för ryggradsimplantatinfektioner.
I denna metod presenterar vi en modell av ryggradskirurgi med bakre tillvägagångssätt där en k-tråd av rostfritt stål transfixeras i L4-spinös process hos 12 veckor gamla C57BL/6J vildtypsmöss och inokuleras med 1 x 103 CFU av en bioluminescerande stam av Staphylococcus aureus Xen36-bakterier. Möss avbildas sedan longitudinellt för bioluminiscens in vivo på postoperativa dagar 0, 1, 3, 5, 7, 10, 14, 18, 21, 25, 28 och 35. Bioluminiscensavbildningssignaler (BLI) från ett standardiserat synfält kvantifieras för att mäta bakteriell belastning in vivo.
För att kvantifiera bakterier som sitter fast på implantat och peri-implantatvävnad avlivas möss och implantatet och omgivande mjukvävnad skördas. Bakterier lossnar från implantatet genom ultraljudsbehandling, odlas över natten och sedan kolonibildande enheter (CFU) räknas. Resultaten från denna metod inkluderar longitudinella bakterieräkningar mätt med in vivo S. aureus bioluminiscens (genomsnittligt maximalt flöde) och CFU-räkningar efter avlivning.
Medan tidigare djurmodeller av instrumenterad ryggradsinfektion har involverat invasiv, ex vivo vävnadsanalys, utnyttjar musmodellen av SII som presenteras i denna artikel icke-invasiv, realtids in vivo optisk avbildning av bioluminescerande bakterier för att ersätta statisk vävnadsstudie. Tillämpningar av modellen är breda och kan innefatta användning av alternativa bioluminescerande bakteriestammar, inkorporering av andra typer av genetiskt modifierade möss för att samtidigt studera värdens immunsvar och utvärdering av nuvarande eller undersökning av nya diagnostiska och terapeutiska modaliteter såsom antibiotika eller implantatbeläggningar.
Syftet med denna metod är att beskriva en ny musmodell av ryggradsimplantatinfektion (SII). Denna modell utformades för att ge ett billigt och exakt verktyg för att flexibelt bedöma effekten av värd-, patogen- och/eller implantatvariabler in vivo. Att testa potentiella terapier och behandlingsstrategier för ryggradsimplantatinfektioner i denna modell syftar till att vägleda forskningsutvecklingen innan den tillämpas i större djurmodeller och kliniska prövningar.
Implantatrelaterad infektion efter ryggkirurgi är en förödande komplikation och förekommer tyvärr hos cirka 3–8 % av patienterna som genomgår elektiv ryggkirurgi 1,2,3,4,5 och upp till 65 % av patienterna som genomgår flernivå- eller revisionskirurgi 6. Behandling av ryggradsimplantatinfektioner kräver ofta flera sjukhusvistelser, flera operationer och långvarig antibiotikabehandling. SII:er förebådar dåliga patientresultat, inklusive neurologiska komprometteringar, funktionshinder och en ökad risk för dödlighet. Hanteringen av SII är extremt dyr och kostar uppemot 900 000 dollar per patient7.
Staphylococcus aureus är den vanligaste virulenta patogenen av SII 8,9,10,11. Bakterier kan fröa hårdvaran direkt under operationen, genom såret under den postoperativa perioden eller senare via hematogen spridning. I närvaro av metallimplantat bildar S. aureus biofilm som skyddar bakterierna från antibiotikabehandling och immunceller. Även om avlägsnande av infekterad hårdvara kan hjälpa till att effektivt utrota en infektion, är detta ofta inte möjligt i ryggraden utan att orsaka destabilisering och riskera neurologisk kompromettering12.
I avsaknad av explantation av infekterad hårdvara behövs nya metoder för att förebygga, upptäcka och behandla SII. Historiskt sett har det funnits begränsade djurmodeller av SII för att effektivt bedöma säkerheten och effekten av nya terapier. Tidigare djurmodeller av SII kräver ett stort antal djur och insamling av datapunkter som kräver avlivning inklusive koloniräkning, histologi och odling13,14,15. Eftersom dessa modeller saknar longitudinell in vivo-övervakning ger de bara en datapunkt per djur och är därför dyra och ineffektiva.
Tidigare arbete med att studera en musmodell av knäprotesinfektion fastställde värdet och noggrannheten av icke-invasiv optisk avbildning in vivo för att longitudinellt övervaka infektionsbörda16. Detektionen av bioluminiscens gör det möjligt att kvantifiera bakteriebelastningen under ett longitudinellt tidsförlopp i ett enda djur på ett humant, exakt och effektivt sätt. Dessutom har tidigare studier visat en hög korrelation mellan bioluminiscens in vivo och CFU:er som är fästa vid implantat17. Förmågan att spåra infektion över tid har lett till en mer nyanserad förståelse av implantatrelaterad infektion. Övervakning av longitudinella infektioner på detta sätt har dessutom gjort det möjligt att noggrant bedöma effektiviteten av antibiotikabehandling och nya antimikrobiella medel16,17,18.
Med hjälp av dessa verktyg utvecklade och validerade vi en modell för postoperativ ryggradsimplantatinfektion. I den presenterade metoden använder vi ett inokulum av bioluminescerande S. aureus Xen36 för att etablera en in vivo-musmodell av SII för att longitudinellt övervaka bakteriell börda16,17,18. Denna nya modell ger ett värdefullt verktyg för att effektivt testa potentiella detektions-, preventions- och behandlingsstrategier för SII innan de tillämpas i större djurmodeller och kliniska prövningar.
Implantatrelaterade infektioner i ryggraden förebådar dåliga resultat för patienter 1,2,3,4,5. Till skillnad från många andra områden i kroppen kan infekterad hårdvara i ryggraden ofta inte tas bort på grund av risken för instabilitet och neurologisk kompromettering. Denna unika utmaning när det gäller biofilmsbakterier som är resistenta mot syste…
The authors have nothing to disclose.
Författarna vill bekräfta mottagandet av både Pediatric Orthopaedic Society of North America Biomet Spine Grant och National Institutes of Health Clinical and Translational Science Institute KL2 Grant och HH Lee Surgical Research Grant som viktiga finansieringskällor för dessa experiment.
Analytical Balance ME104 | Mettler Toledo | 30029067 | 120 g capacity, 0.1 mg readability, backlit LCD, internal adjustment, metal base |
BD Bacto Tryptic Soy Broth | Becton Dickinson (BD) | BD 211825 | BD Bacto Tryptic Soy Broth (Soybean-Casein Digest Medium) |
Biomate 3S UV-VIS Spectrophotometer | Thermo Scientific | 840-208300 | Spectrophotometer; Thermo Scientific; BioMate 3S; Six-position cell holder; Spectral bandwidth: 1.8nm; Long-life xenon lamp; Store up to 40 test methods; 16L x 13W x 9 in. H; 19 lb.; 100/240V US line cord |
Bioshield 720+ swinging bucket rotor | Thermo Scientific | 75003183 | Rotor, Swinging bucket; Thermo Scientific; BIOShield 720 high speed; Capacity: 4 x 180mL (0.72L); Angle: 90 deg. ; Max. speed/RCF: 6300rpm/7188 x g; Max. radius: 16.2cm |
Branson Ultrasonics 2510R-MTH (Sonicator) | Branson Ultrasonics | CPX952217R | *similar model, our model is discontinued* Branson Ultrasonics MH Series Heated Ultrasonic Cleaning Bath, 120V, 0.75 gal |
Bullet Blender Storm Homogenizer | Next Advance | BBY24M | The Bullet Blender Storm is the most powerful member of the Bullet Blender family. Homogenize up to 24 of your toughest samples (mouse femur, skin, cartilage, tumor, etc.) in just minutes. Air cooling™ minimizes sample heat up. Uses 1.5ml screw-cap RINO® tubes or snap-cap Eppendorf® Safe-lock™ tubes. |
Germinator 500 | Electron Microscopy Sciences | 66118-10 | The Germinator 500 is designed to decontaminate metal micro-dissecting instruments only. It is to be used exclusively for research purposes. The Germinator 500 should not be used as a substitute for traditional methods of terminal sterilization. Effective sterilization cannot be assured due to lack of routine sterilization-efficacy monitoring methods for glass bead sterilization. The Germinator 500 has been designed and built to pass the Validation of Dry Sterilizer Spore Suspension Test: USP XXIII, Part 1211. |
Heracell 150i CO2 Incubator | Thermo Scientific | 51026282 | Single 150L |
IVIS Lumina X5 Imaging System | Perkin Elmer | CLS148590 | The IVIS Lumina X5 high-throughput 2D optical imaging system combines high-sensitivity bioluminescence and fluorescence with high-resolution x-ray into a compact system that fits on your benchtop. With an expanded 5 mouse field of view for 2D optical imaging plus our unique line of accessories to accelerate setup and labeling, it has never been easier or faster to get robust data—and answers—on anatomical and molecular aspects of disease. |
MAXQ 4450 Digtial Incubating Bench Shaker | Thermo Scientific | SHKE4450 | Shaker, Incubated; Thermo Scientific; Digital; MaxQ 4450; Speed 15 to 500rpm +/-1rpm; 5 deg. C above ambient to 80 deg. C; 120V 50/60Hz |
PBS, Phosphate Buffered Saline | Fisher Bioreagents | BP24384 | PBS, Phosphate Buffered Saline, 1X Solution, pH 7.4 |
Sorvall Legend Micro 21 Centrifuge, Ventilated | Thermo Scientific | 75002436 | 24 x 1.5/2.0mL rotor with ClickSeal biocontainment lid |
SORVALL LEGEND X1R 120V Centrifuge | Thermo Scientific | 75004261 | Centrifuge, Benchtop; Thermo Scientific; Sorvall Legend X1R (Refrigerated), 1L capacity; Max. Speed/RCF 15,200rpm/25,830 x g; CFC-free cooling -10C to +40C; 120V 60Hz |
Staphylococcus aureus – Xen36 | Perkin Elmer | 119243 | Staphylococcus aureus – Xen36 bioluminescent pathogenic bacteria for in vivo and in vitro drug discovery. This product was derived from a parental strain from the American Type Culture Collection, used under license. Staph. aureus-Xen36 possesses a stable copy of the Photorhabdus luminescens lux operon on the native plasmid. |
TUTTNAUER AUTOCLAVE 2540E 120V | Heidolph Tuttnauer | 23210401 | Sterilizer, Benchtop; Heidolph; Tuttnauer; Model 2540E; Self-contained design with refillable reservoir controls water purity for sterilization; 120V 50/60Hz; 1400w. With electronic controls |
Tween 80 | Fisher Bioreagents | BP338-500 | Tween 80, Fisher BioReagents, Non-ionic detergent for selective protein extraction |
Vortex mixer VX-200 | Labnet Internation | S0200 | 120V touch or continuous mixer, 230V: 0 – 2,850 rpm,120V: 0 – 3,400 rpm |
0.9% Sodium Chloride | Pfizer Injectables/Hospira | 00409-4888-10 | 0.9% Sodium Chloride Injection, USP |