Summary

Optimización de procesos mediante microbiorreactores automatizados de alto rendimiento en el cultivo de células de ovario de hámster chino

Published: May 18, 2020
doi:

Summary

Aquí, presentamos un procedimiento detallado para ejecutar un Diseño de Experimento en un microbiorreactor automatizado seguido de cosecha celular y cuantificación de proteínas usando una columna de Proteína A.

Abstract

La optimización de los bioprocesos para aumentar el rendimiento de los productos deseados es importante en la industria biofarmacéutica. Esto se puede lograr mediante la selección de deformaciones unitarias y mediante el desarrollo de parámetros de bioproceso. Los matraces de agitación se han utilizado para este propósito. Sin embargo, carecen de la capacidad de controlar los parámetros del proceso, como el pH y el oxígeno disuelto (DO). Esta limitación se puede superar con la ayuda de un microbiorreactor automatizado. Estos biorreactores imitan el cultivo a mayor escala. Una de las principales ventajas de este sistema es la integración del Diseño de Experimento (DOE) en el software. Esta integración permite establecer un diseño en el que se pueden variar simultáneamente varios parámetros de proceso. Los parámetros críticos del proceso y las condiciones óptimas del bioproceso se pueden analizar dentro del software. El objetivo del trabajo presentado aquí es introducir al usuario en los pasos involucrados en el diseño de procesos en el software y la incorporación del DOE dentro de la ejecución de cultivo.

Introduction

El mercado biofarmacéutico mundial valía más de 250.000 millones de dólares EE.UU. en 2018 y ha ido en continua expansión1. Las compañías farmacéuticas están pasando de producir pequeños fármacos moleculares a terapias producidas biotecnológicamente, como proteínas recombinantes. Estos son los únicos responsables de un ingreso de más de $150 mil millones1. Las células de mamíferos ahora se utilizan ampliamente para la producción de estas proteínas recombinantes farmacéuticas. En el período actual, entre los 68 productos aprobados producidos por células de mamíferos, 57 son producidos por células de ovario de hámster chino (CHO)2. Las células CHO se utilizan específicamente para la producción de proteínas recombinantes que requieren modificaciones post-traduccionales. Estas células son preferidas ya que crecen en una suspensión y, por lo tanto, permiten resultados reproducibles en un medio libre de suero definido químicamente3,,4. La otra ventaja de utilizar células CHO es que la estructura glicana del producto se asemeja a la del anticuerpo monoclonal humano (mAb) y da como resultado un mayor rendimiento proteico recombinante y una productividad específica debido a la amplificación del gen5.

El rendimiento del cultivo celular CHO recombinante (rCHO) se ha multiplicado por cien en las últimas dos décadas. Esta mejora se atribuye a la optimización de los parámetros del proceso, la estrategia de alimentación y el desarrollo del medio libre de suero definido químicamente6. Con el aumento de los requisitos de los productos farmacéuticos, la presión aumenta en el costo y la eficiencia del tiempo para el desarrollo del proceso de producción7. Para reducir la presión y garantizar la calidad del producto, se ha orientado el enfoque de la industria farmacéutica en la calidad por diseño (QbD). QbD se utiliza para comprender la producción del producto, así como el proceso. Una herramienta vital utilizada en el ObD es el Diseño del Experimento (DOE). Ayuda a aumentar la comprensión del proceso al revelar la relación entre varias variables de entrada y los datos de salida resultantes. La aplicación del enfoque DOE para optimizar el bioproceso es beneficiosa durante las primeras etapas del proyecto al asimilar las condiciones del proceso y aumentar la cantidad y calidad del título. Este enfoque es beneficioso en comparación con la estrategia anticuada: un factor a la vez (OFAT). Los enfoques estadísticos del DOE utilizando Classical, Shainin o Taguchi son muy superiores a los OFAT8.

El proceso y la optimización de medios se pueden realizar en matraces de agitación. Los matraces son relativamente baratos. Sin embargo, no es posible controlar parámetros como la temperatura, el pH y el oxígeno disuelto (DO). Para superar estos inconvenientes, se pueden utilizar biorreactores multiusos de sobremesa que van desde un volumen de trabajo de 0,5 L a 5 L. Los reactores proporcionan una amplia supervisión en línea y control de procesos. Sin embargo, el uso del biorreactor multiusos es intensivo en tiempo y mano de obra. Para superar estas desventajas, se utiliza un novedoso biorreactor de un solo uso que combina el proceso integral de monitorización del biorreactor de sobremesa y fácil manejo del matraz de agitación. El sistema de cribado de alto rendimiento y la tecnología de un solo uso han contribuido a mejorar la eficiencia del rendimiento y desarrollo de los procesos9.

En este artículo, se enumeran las pautas para cargar la receta en el software automatizado de microbiorreactor (AMBR). Durante el transcurso de este experimento se estudia la influencia de diferentes velocidades de agitador y pH en la concentración celular viable (VCC) y el titador. El resultado experimental y el análisis se llevan a cabo con el diseño del software de experimento MODDE 12. Los análisis de productos se llevan a cabo en un sistema de cromatografía líquida de alta presión (HPLC) con una columna de proteína A. Se basa en el principio de que la región Fc del mAb se une a la proteína A con alta afinidad10,,11. Con este método, es posible identificar y cuantificar el mAb. La cuantificación se lleva a cabo en las áreas de pico de elución medida a 280 nm.

Protocol

1. Procedimiento de precultura NOTA: Para este protocolo se utilizan células CHO DG44 recombinantes con una concentración celular viable de 1 x 107 células/ml. Descongelar el vial que contiene 1,2 ml de células a temperatura ambiente y transferir inmediatamente la suspensión celular a un tubo centrífugo cónico de 15 ml que contenga 10 ml de medio de semilla fría. Centrifugar el tubo centrírico cónico durante 5 minutos a 190 x g…

Representative Results

En la Figura 2se presenta una visión general del cultivo realizado en este estudio. Figura 2: Representación esquemática de las condiciones experimentales para probar perfiles de velocidad de pH y agitador en las estaciones de cultivo. La figura también representa el diseño correcto para colocar los buques. <a href="https://ww…

Discussion

La optimización del proceso para aumentar el rendimiento es de vital importancia en la industria biofarmacéutica. Los matraces de agitación podrían utilizarse potencialmente para el cribado de la cepa; sin embargo, la supervisión de los parámetros del proceso como pH y DO no están disponibles en los matraces. Los microbiorreactores tienen una ventaja, ya que permiten un seguimiento y control continuos del proceso. Estos bucles de control en el microbiorreactor también proporcionan una condición similar a las de …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores quieren dar las gracias al Bundesministerium f’r Bildung und Forschung (BMBF), al Ministerio Federal de Educación e Investigación de Alemania, y al equipo de Bioprocesamiento de Sartorius Stedim Biotech GmbH, Alemania, por su apoyo.

Materials

1 mL disposable pipette tips, sterilized Sartorius Stedim Biotech GmbH A-0040
200 mM L-glutamine Corning, Merck 25-005-CV
24 Well deep well plates Sartorius Stedim Biotech GmbH A-0038
5 mL disposable pipette tips, sterilized Sartorius Stedim Biotech GmbH A-0039
ambr 15 automated microbioreactor system Sartorius Stedim Biotech GmbH 001-2804
ambr 15 Cell Culture 24 Disposable Bioreactors – Sparged Sartorius Stedim Biotech GmbH 001-1B86
Antifoam C Emulsion Sigma-Aldrich, Merck A8011
Bottle Top Sterile filter Corning, Merck CLS431474 0.1 μm pore size
CEDEX Detergent (3% Mucosol) Roche Innovatis AG 05-650-658-001
Cell counter Roche Innovatis AG 05-650-216-001 CEDEX HiRes
CHO DG44 cell line Cellca, Sartorius Stedim Biotech GmbH
CHOKO Feed Media A (FMA) Sigma-Aldrich, Merck CR80025
CHOKO Feed Media B (FMB) Sigma-Aldrich, Merck CR80026
CHOKO Production Medium Sigma-Aldrich, Merck CR80027
CHOKO Stock Culture Meium Sigma-Aldrich, Merck CR80028
Chromaster high pressure liquid chromatography system VWR International
Conical Centrifuge tube Corning, Merck SIAL0790
Ethanol Merck 1070179026
Glycine Carl Roth 56-40-6
HPLC Vials VWR International SUPLSU860181
PBS Sigma-Aldrich,Merck P4417
Protein A Column Thermo Fisher Scientific 1502226 POROS™ A 1.7 mL
Sodium chloride Sigma-Aldrich,Merck 7647-14-5
Sodium phosphate dibasic anhydrous Sigma-Aldrich,Merck 7558-79-4
Trypan Blue VWR International VWRVK940
YSI YSI Inc 2900D YSI 2900 Select

Riferimenti

  1. Walsh, G. Biopharmaceutical benchmarks 2018. Nature Biotechnology. 36, 1136 (2018).
  2. Kim, J. Y., Kim, Y., Lee, G. M. CHO cells in biotechnology for production of recombinant proteins: current state and further potential. Applied Microbiology and Biotechnology. 93 (3), 917-930 (2012).
  3. Lai, T., Yang, Y., Ng, S. K. Advances in Mammalian cell line development technologies for recombinant protein production. Pharmaceuticals (Basel). 6 (5), 579-603 (2013).
  4. Carlage, T., et al. Analysis of dynamic changes in the proteome of a Bcl-XL overexpressing Chinese hamster ovary cell culture during exponential and stationary phases. Biotechnology Progress. 28 (3), 814-823 (2012).
  5. Hacker, D. L., de Jesus, M., Wurm, F. M. 25 years of recombinant proteins from reactor-grown cells – where do we go from here. Biotechnology Advances. 27 (6), 1023-1027 (2009).
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  7. Ao, S., Gelman, L. . Advances in electrical engineering and computational science. Lecture notes in electrical engineering. 39, (2009).
  8. Bareither, R., et al. Automated disposable small scale reactor for high throughput bioprocess development: a proof of concept study. Biotechnology and Bioengineering. 110 (12), 3126-3138 (2013).
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  10. Choe, W., Durgannavar, T. A., Chung, S. J. Fc-Binding Ligands of Immunoglobulin G: An Overview of High Affinity Proteins and Peptides. Materials (Basel). 9 (12), (2016).
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Citazione di questo articolo
Nagraik, T., Gonzalez Salcedo, A., Solle, D., Scheper, T. Process Optimization using High Throughput Automated Micro-Bioreactors in Chinese Hamster Ovary Cell Cultivation. J. Vis. Exp. (159), e60577, doi:10.3791/60577 (2020).

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