Summary

En fördröjd inokulering modell av kronisk pseudomonas aeruginosa Sår infektion

Published: February 20, 2020
doi:

Summary

Vi beskriver ett försenat inokuleringsprotokoll för att generera kroniska sårinfektioner hos immunkompetenta möss.

Abstract

Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa) är en stor nosokomial patogen av ökande relevans för människors hälsa och sjukdom, särskilt vid fastställandet av kroniska sårinfektioner hos diabetiker och sjukhuspatienter. Det finns ett akut behov av kroniska infektionsmodeller för att underlätta undersökningen av sårpatogenes och utvecklingen av nya terapier mot denna patogen. Här beskriver vi ett protokoll som använder fördröjd inokulering 24 timmar efter full-tjocklek excisional såra. Infektionen av den provisoriska sårmatrisen som för närvarande för närvarande försvårar antingen snabb röjning eller spridning av infektion och fastställer i stället kronisk infektion som varar 7–10 dagar utan behov av implantation av främmande material eller immunsuppression. Detta protokoll härmar en typisk temporal kurs av postoperativ infektion hos människor. Användningen av en luminescent P. aeruginosa stam (PAO1:lux) möjliggör kvantitativ daglig bedömning av bakteriell börda för P. aeruginosa sårinfektioner. Denna nya modell kan vara ett användbart verktyg vid undersökning av bakteriell patogenes och utvecklingen av nya terapier för kroniskA P. aeruginosa sårinfektioner.

Introduction

Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa) är en Gram-negativ stavformad bakterie med ökande relevans för människors hälsa och sjukdom. Det är ansvarig för omfattande sjuklighet och dödlighet i nosocomial inställningar, särskilt med sårinfektioner hos immunkomprometterade patienter1,2. Framväxten av multiresistenta stammar av denna patogen har gett ytterligare impulser till utredning av faktorer som bidrar till P. aeruginosa virulens, mekanismer för P. aeruginosa antibiotikaresistens, och nya metoder för förebyggande och behandling av denna dödliga infektion3. Som sådan har behovet av djurmodeller av kronisk sårinfektion som verktyg för att undersöka dessa forskningsfrågor aldrig varit större.

Tyvärr, många djur modeller av P. aeruginosa infektion tenderar att simulera akut infektion med snabb lösning av infektion eller snabb nedgång på grund av sepsis4,5,som inte tillräckligt simulera ofta kronisk karaktär av dessa infektioner. För att ta itu med denna nackdel, vissa modeller använder implantation av främmande organ såsom agar pärlor, silikonimplantat, eller alginate geler6,7,8. Andra modeller använder möss som är immunkomprometterade på grund av hög ålder, fetma eller diabetes, eller genom farmakologiska medel såsom cyclophosphamide-inducerad neutropeni9,10,11,12. Emellertid, antingen användningen av främmande material eller immun komprometterade värdar sannolikt förändrar den lokala inflammatoriska processen, vilket gör det svårt att få en förståelse för patofysiologi inblandade i kroniska sårinfektioner i värdar med annars normala immunsystem.

Vi har utvecklat en kronisk modell av P. aeruginosa sårinfektion hos möss som innebär fördröjd inokulering med bakterier efter excisional såra. Fördröjd inokulering möjliggör experiment som bedömer bakteriebördan som sträcker sig ut till minst 7 dagar. Denna modell öppnar nya möjligheter för att undersöka både patogenes och nya behandlingar av P. aeruginosa kroniska infektioner.

Protocol

Alla metoder som beskrivs här har godkänts av Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) vid Stanford University. 1. Beredning och tillväxt av bakterier Utför allt arbete med P. aeruginosa och djur med BSL-2 försiktighetsåtgärder enligt forskarens institutionella riktlinjer för biosäkerhet och riktlinjer för djuranvändningskommittén. Gör alla steg som beskrivs här med P. aeruginosa, inklusive musinokulering, i ett biosäkerhetsskåp. <li…

Representative Results

Med hjälp av en luminescerande stam av PAO1 med en plasmid kodning luxABCDE reporter systemet (PAO1:lux), utförde vi excisional sårpå möss, inokulerade dessa sår med planktoniska P. aeruginosa 24 h senare, och mätt bakteriell börda över tiden(figur 1 och figur 2). En representativ bild som erhållits med hjälp av ett bildoptiskt system visar att denna modell resulterar i detekterbar luminans<strong class="xfig"…

Discussion

Vi har utvecklat en roman försenad inokulering P. aeruginosa sårinfektion modell. Strategin att fördröja inokulering med bakterier till sen 24 h efter excisional sår möjliggör utvärdering av sårinfektioner under en 1-veckors tidsram. Genom att använda en luminescerande stam av P. aeruginosa, är det möjligt att spåra infektionprogression under infektionskursen. Den längre infektionsförloppet jämfört med andra P. aeruginosa infektion modeller kommer att möjliggöra nya möjlighe…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

PUT-Tn5-EM7-lux-Km1-luminescentkonstruktionsvektorn var en nådig gåva från J. Hardy. Scheman skapades med BioRender.com. Vi tackar labbet av G. Gurtner för deras råd om sårinfektion sakansmodellen. Vi tackar också T. Doyle från Stanford Center for Innovation i In Vivo Imaging för hans tekniska expertis. Detta arbete stöddes av bidrag R21AI133370, R21AI133240, R01AI12492093, och bidrag från Stanford SPARK, Falk Medical Research Trust och Cystic Fibrosis Foundation (CFF) till P.L.B. C.R.D stöddes av T32AI007502. En Gabilan Stanford Graduate Fellowship for Science and Engineering och en Lubert Stryer Bio-X Stanford tvärvetenskapliga Graduate Fellowship stödde J.M.S.

Materials

0.9% Sodium Chloride injection Hospira 2484457
18 G x 1 sterile needle BD 305195
25 G x 1 1/5 sterile needle BD 305127
Alcohol swab BD 326895
Aura Imaging Software Spectral Instruments Imaging n/a
Betadine Purdue Frederick Company 19-065534
Buprenorphine SR LAB Zoopharm n/a
C57BL/6J male mice The Jackson Laboratory 000664
Disposable biopsy punch, 6mm Integra 33-36
Fine scissors – Tungsten Carbide Fine Science Tools 14568-09
Glass Bead Dry Sterilizer Harvard Apparatus 61-0183
Granulated Agar Fisher BioReagents BP9744
Heating Pad Milliard 804879481218
Insulin syringe with 28 G needle BD 329461
Lago X Imaging System Spectral Instruments Imaging n/a
LB broth Fisher BioReagents BP1426
Leur-Lok 1 mL syringe BD 309628
Mini Arco Animal Trimmer Wahl Professional 919152
Nair Hair Removal Lotion with Baby Oil Church and Dwight n/a Available at any pharmacy
Octagon Forceps Fine Science Tools 11041-08
Petri dish Falcon 351029
Phosphate Buffered Saline (PBS) 1x Corning 21-040-CV
Press and Seal Cling Wrap Glad n/a
SafetyGlide Insulin syringe with 30 G needle BD 305934
Safetyglide Insulin syringe, 1/2 mL, 30 G x 5/16 TW BD 305934
Scale Ohaus Scout Pro SP202
Supplical Nutritional Supplement Henry Schein Animal Health 29908
Tegaderm, 6 cm x 7 cm 3M 1624W

Riferimenti

  1. Sen, C. K., et al. Human skin wounds: a major and snowballing threat to public health and the economy. Wound Repair and Regeneration. 17 (6), 763-771 (2009).
  2. Serra, R., et al. Chronic wound infections: the role of Pseudomonas aeruginosa and Staphylococcus aureus. Expert Review of Anti-infective Therapy. 13 (5), 605-613 (2015).
  3. Obritsch, M. D., Fish, D. N., MacLaren, R., Jung, R. Nosocomial infections due to multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa: epidemiology and treatment options. Pharmacotherapy. 25 (10), 1353-1364 (2005).
  4. Secor, P. R., et al. Filamentous Bacteriophage Produced by Pseudomonas aeruginosa Alters the Inflammatory Response and Promotes Noninvasive Infection In Vivo. Infection and Immunity. 85 (1), (2017).
  5. Rice, S. A., et al. The biofilm life cycle and virulence of Pseudomonas aeruginosa are dependent on a filamentous prophage. The ISME Journal. 3 (3), 271-282 (2009).
  6. Bayes, H. K., Ritchie, N., Irvine, S., Evans, T. J. A murine model of early Pseudomonas aeruginosa lung disease with transition to chronic infection. Scientific Reports. 6, 35838 (2016).
  7. van Gennip, M., et al. Interactions between polymorphonuclear leukocytes and Pseudomonas aeruginosa biofilms on silicone implants in vivo. Infection and Immunity. 80 (8), 2601-2607 (2012).
  8. Trøstrup, H., et al. Pseudomonas aeruginosa biofilm aggravates skin inflammatory response in BALB/c mice in a novel chronic wound model. Wound Repair and Regeneration. 21 (2), 292-299 (2013).
  9. Zhao, G., et al. Time course study of delayed wound healing in a biofilm-challenged diabetic mouse model. Wound Repair and Regeneration. 20 (3), 342-352 (2012).
  10. Brubaker, A. L., Rendon, J. L., Ramirez, L., Choudhry, M. A., Kovacs, E. J. Reduced neutrophil chemotaxis and infiltration contributes to delayed resolution of cutaneous wound infection with advanced age. Journal of Immunolology. 190 (4), 1746-1757 (2013).
  11. Watters, C., et al. Pseudomonas aeruginosa biofilms perturb wound resolution and antibiotic tolerance in diabetic mice. Medical Microbiology and Immunology. 202 (2), 131-141 (2013).
  12. Lee, C., Kerrigan, C. L., Picard-Ami, L. A. Cyclophosphamide-induced neutropenia: effect on postischemic skin-flap survival. Plastic and Reconstructive Surgery. 89 (6), 1092-1097 (1992).
  13. Sweere, J. M., et al. The immune response to Chronic Pseudomonas aeruginosa wound infection in immunocompetent mice. Advances in Wound Care. , (2019).
  14. Sweere, J. M., et al. Bacteriophage trigger antiviral immunity and prevent clearance of bacterial infection. Science. 363 (6434), (2019).
check_url/it/60599?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
de Vries, C. R., Sweere, J. M., Ishak, H., Sunkari, V., Bach, M. S., Liu, D., Manasherob, R., Bollyky, P. L. A Delayed Inoculation Model of Chronic Pseudomonas aeruginosa Wound Infection. J. Vis. Exp. (156), e60599, doi:10.3791/60599 (2020).

View Video