Summary

マウスにおける下腹部および後肢の脳閉回路灌流における確立

Published: August 13, 2020
doi:

Summary

プロトコルは、膀胱、前立腺、性器、骨、筋肉および足の皮膚を含むマウス下半身の上皮灌流に記載されている。

Abstract

エクスビボ灌流は、孤立した器官(例えば肝臓、腎臓)の機能を研究するための重要な生理学的ツールである。同時に、マウス器官のサイズが小さいため、骨、膀胱、皮膚、前立腺、生殖器官のエクスビボ灌流は困難であるか、または実現不可能である。ここでは、上記組織を含むマウスの下半身灌流回路を初めて報告するが、主なクリアランス器官(腎臓、肝臓、脾臓)をバイパスする。この回路は、腸骨動脈および静脈の上の腹部大動脈および下大静脈をカニューララットし、末梢血管を焼灼することによって確立される。灌流は、パーフューズン流を最大2時間維持した蠕動ポンプを介して行われる。蛍光レクチンおよびHoechst溶液によるその際の染色では、マイクロバスキュアチュアが正常に浸透していることを確認した。このマウスモデルは、病理学的プロセス、および薬物送達のメカニズム、腫瘍への循環腫瘍細胞の移動/転移、および浸透した器官および組織との免疫系の相互作用を研究するのに非常に有用なツールとなり得る。

Introduction

孤立した臓器灌流は、もともと移植のための臓器生理学を研究するために開発された11、2、3、2,3そして他の身体システムからの干渉なしに器官の機能の理解を可能にした。例えば、単離した腎臓および心臓灌流は、血行力学の基本原理および血管活性剤の効果を理解するのに非常に有用であったが、肝臓灌流は、健康および疾患組織44、5、6、75,6,7における薬物代謝を含む代謝機能を理解する上で重要であった。さらに、移植を目的とした臓器の生存率と機能を理解する上で、灌流研究は重要であった。癌研究では、単離された腫瘍灌流は、マウス、ラット、および新たに切除されたヒト組織88、99を用いていくつかのグループによって説明されている。いくつかの単離された腫瘍灌流では、腫瘍を卵巣脂肪パッドに移植し、腸間動脈10から血管を供給する腫瘍の成長を強制する。Jainグループは、結腸腺癌の単離灌流を用いて、腫瘍血球力学および転移88、11、12、13を理解するための先駆的な研究11,12った。他の革新的な工学的なex vivoのセットアップは、主要なヒト多発性骨髄腫細胞14を培養する96ウェルプレートベースの灌流装置および骨髄アーキテクチャおよび機能研究15を工学用のモジュラー流動室を含む。

生理学と病理研究に加えて、臓器灌流は薬物送達の基本原理を研究するために使用されてきた。したがって、1つの群は、単離されたラット四肢灌流を説明し、移植肉腫16におけるリポソームの蓄積を研究し、別の群は解剖されたヒト腎臓灌流を行い、ナノ粒子17の内皮標的化を研究した。Ternulloら. 単離された浸透ヒト皮膚フラップを近い生体内皮膚薬物浸透モデル18として使用した。

大きな臓器や組織の灌流におけるこれらの進歩にもかかわらず、マウスのsitu灌流モデルでは、a)肝臓、脾臓、腎臓などのクリアランス器官をバイパスするという報告はありません。b)骨盤臓器、皮膚、筋肉、生殖器官(男性)、膀胱、前立腺および骨髄が含まれる。これらの器官のサイズが小さく、脈管構造を供給するため、エキソビボカヌラ化および灌流回路の確立は実現不可能であった。マウスは、がんや免疫学の研究、および薬物送達において最も重要な動物モデルです。小さなマウス器官を穿フューズする能力は、骨盤に移植された腫瘍(膀胱、前立腺、卵巣、骨髄)を含むこれらの器官への薬物送達に関する興味深い質問を答えることを可能にし、これらの器官の疾患の基礎生理学および免疫学の研究を可能にする。この欠乏に対処するために、我々は、潜在的に組織損傷を回避することができ、単離された臓器灌流よりも機能的研究にはるかに適しているマウスのsitu灌流回路を開発した。

Protocol

ここに記載されているすべての方法は、コロラド大学の制度的動物ケアと使用委員会(IACUC)によって承認されています。 1. 灌流システムを予熱する 図1Aのカスタマイズされた構成に示すように、すべての水ジャケット部品(パーフューズ貯留槽、湿潤チャンバー、および蓋)に対して37°C循環水浴を開始することにより、手術前に灌流システム?…

Representative Results

10mL未満の灌流緩衝液の体積を保ちながら、8~10週齢マウスの腹部大動脈と下の大静脈のカヌレーションを通じて閉回路灌流システムを設置しました。 図3A は、Hoechst 33342およびDyLight 649-レクチンを含むリンガーの溶液で組織を浸透した後の共焦点画像を示す。筋肉、骨髄、精巣、膀胱、前立腺、足の皮膚は、効率的な核および血管染色を示す。 図3B…

Discussion

記載された回路は、様々な研究問題、例えば薬物送達における異なる血清成分および組織障壁の役割、または免疫および幹細胞の密売を調査するために使用することができる。異なる薬物送達システム(例えば、リポソームおよびナノ粒子)は、送達における生理学的および生化学的要因の役割を理解するためにパーフューザートに添加することができる。灌流の持続時間は、研究された組織?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、DS、スカッグス薬学部ADR種子助成金プログラム(DS)にNIH助成金CA194058によってサポートされました。中国国立自然科学財団(グラント31771093)、吉林省国際協力プロジェクト(No.201180414085GH)、中央大学基礎研究基金、JLU科学技術革新的研究チームプログラム(2017TD-27、2019TD-36)。

Materials

Equipment
3.5x-90x stereo zoom microscope on boom stand with LED light Amscope SKU: SM-3BZ-80S
Carbon dioxide, USP Airgas healthcare 19087-5283
Confocal microscope NIKON ECLIPSE Ti2
Disposable Sterile Cautery Pen with High Temp FIAB F7244
Moist chamber bubble trap (part 6 in Figure 1) Harvard Apparatus 733692 Customized as the perfisate container; also enabled constant pressure perfusion
Moist chamber cover with quartz window (part 3 in Figure 1) Harvard Apparatus 733524 keep the chamber's temperature
Moist chamber with metal tube heat exchanger Harvard Apparatus 732901 Water-jacketed moist chamber with lid to maintain perfusate and mouse temperature
Olsen-Hegar needle holders with suture cutters Fine Science Tools (FST) 125014
Oxygen compressed, USP Airgas healthcare C2649150AE06
Roller pump (part 4 in Figure 1) Harvard Apparatus 730113 deliver perfusate to cannula in the moist chamber
SCP plugsys servo control F/Perfusion (part 1 in Figure 1) Harvard Apparatus 732806 control the purfusion speed
Silicone pad Harvard Apparatus
Silicone tubing set (arrows in Figure 1) Harvard Apparatus (TYGON) 733456
Student standard pattern forceps Fine Science Tools (FST) 91100-12
Surgical Scissors Fine Science Tools (FST) 14001-14
Table for moist chamber Harvard Apparatus 734198
Thermocirculator (part 2 in Figure 1) Harvard Apparatus 724927 circulating water bath for all water-jacketed components
Three-way stopcock (part 5 in Figure 1) Cole-Palmer 30600-02
Veterinary anesthesia machine Highland HME109
Materials
19-G BD PrecisionGlide needle BD 305186 For immobilizing the Insyte Autoguard Winged needle and scratching the cortical bone
4-0 silk sutures Keebomed-Hopemedical 427411
6-0 silk sutures Keebomed-Hopemedical 427401
Filter (0.2 µm) ThermoFisher 42225-CA Filter for 5% BSA-RINGER’S
Permanent marker Staedtler 342-9
Syringe (10 mL) Fisher Scientific 14-823-2E
Syringe (60 mL) BD 309653 Filter for 5% BSA-RINGER’S
Reagents
1% Evans blue ( w/v ) in phosphate-buffered saline (PBS, pH 7.5) Sigma 314-13-6
10% buffered formalin velleyvet 36692
BALB/c mice ( 8-10 weeks old ) Charles River
Baxter Viaflex lactate Ringer's solution EMRN Medical Supplies Inc. JB2324
Bovine serum albumin Thermo Fisher 11021-037
Cyanoacrylate glue Krazy Glue
DyLight-649-lectin Vector Laboratories,Inc. ZB1214
Ethanol (70% (vol/vol)) Pharmco 111000190
Hoechst33342 Life Technologies H3570
Isoflurane Piramal Enterprises Limited 66794-017-25
Phosphate buffered saline Gibco 10010023

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Ren, P., Yang, C., Lofchy, L. A., Wang, G., Chen, F., Simberg, D. Establishing In Situ Closed Circuit Perfusion of Lower Abdominal Organs and Hind Limbs in Mice. J. Vis. Exp. (162), e60847, doi:10.3791/60847 (2020).

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