Summary

Isolasjon og karakterisering av voksen hjertefibroblaster og myofibroblaster

Published: March 12, 2020
doi:

Summary

Å skaffe seg en ren populasjon av fibroblaster er avgjørende for å studere sin rolle i sårreparasjon og fibrose. Beskrevet her er en detaljert metode for å isolere fibroblaster og myofibroblaster fra uskadet og skadet musehjerter etterfulgt av karakterisering av deres renhet og funksjonalitet ved immunofluorescence, RTPCR, fluorescensassistert cellesortering, og kollagen gel sammentrekning.

Abstract

Hjertefibrose som svar på skade er en fysiologisk respons på sårheling. Det er gjort forsøk på å studere og målrette fibroblastsubtyper som reduserer fibrose. Fibroblastforskning har imidlertid blitt hindret på grunn av mangel på universelt akseptable fibroblastmarkører for å identifisere quiescent samt aktiverte fibroblaster. Fibroblaster er en heterogen cellepopulasjon, noe som gjør dem vanskelige å isolere og karakterisere. Den presenterte protokollen beskriver tre forskjellige metoder for å berike fibroblaster og myofibroblaster fra uskadede og skadde musehjerter. Ved hjelp av en standard og pålitelig protokoll for å isolere fibroblaster vil gjøre det mulig å studere sine roller i homeostase samt fibrose modulasjon.

Introduction

Hjertefibroblaster, celler av mesenchymal opprinnelse, spiller en betydelig rolle i å opprettholde den elektriske ledning og mekaniske krefter i hjertet i tillegg til vedlikehold av hjertearkitektur under homeostase1. Etter skade aktiveres, utvides disse cellene og produserer ekstracellulære matriseproteiner (ECM)proteiner 2. Mange prekliniske studier har avdekket fibroblaster som kritiske cellulære regulatorer som opprettholder den strukturelle integriteten til et skadet hjerte3, samt hovedeffektorceller som er ansvarlige for ukontrollert produksjon og avsetning av ECM-proteiner, noe som resulterer i stiv arrdannelse og hjertesvikt4. Fibroblaster er en heterogen gruppe celler, noe som gjør det utfordrende å dissekere deres reparative funksjon fra pro-fibrotiske maladaptive egenskaper. Nylig har den funksjonelle heterogeniteten til to forskjellige fibroblastsubtyper etter myokardskade blitt definert, noe som indikerer muligheten for å isolere forskjellige fibroblastsubtyper og studere deres rolle i sårheling5.

Å skaffe en ren fibroblastpopulasjon er avgjørende for å fordype sin funksjonelle rolle i reparasjon og fibrose. Imidlertid gjør tilstedeværelsen av flere fibroblastmarkører som gjenkjenner andre celletyper det utfordrende å isolere en vesentlig ren fibroblastpopulasjon6. Flere elegante studier har utviklet smarte måter å isolere hjertefibroblaster fra uskadet og skadet myokardiet. Den mest populære og veletablerte metoden for berikende fibroblaster er gjennom selektiv vedheshet etter enzymatisk vevfordøyelse7.

I tillegg har fluorescensaktivert cellesortering (FACS) av fibroblaster basert på celleoverflateantigener blitt beskrevet8. I studien, etter enzymatisk fordøyelse, ble mesenchymale cellene sortert som avstamningsnegative (Lin: Ter119CD45CD31) og gp38-positiv (gp38+) fra mushjerter. Gp38+ve celler ble bekreftet å være fibroblaster basert på deres co-uttrykk for col1α1 og andre mesenchymal markører. Selv om de fleste vev fordøyelsen er fullført etter dissekere ut ventrikkelen i en Petri parabolen, en nylig studie har undersøkt bruk av en direkte nål enzym perfusjon av venstre ventrikkel for å isolere myocytter og ikke-myocytter som inkluderer fibroblaster9. Fibroblaster ble deretter isolert av selektiv vedhehesjon i dette tilfellet.

Denne protokollen beskriver isolasjon og berikelse av fibroblaster ved hjelp av tre metoder. Den første er en allerede etablert metode som involverer selektiv vedhesjon av fibroblaster etter enzymatisk fordøyelse. Den andre metoden brukes til primært å isolere skadeindusert alfa glatt muskel som uttrykker myofibroblaster. Den tredje metoden innebærer sekvensiell, magnetisk uttømming av en enzymfordøyd hjertecellesuspensjon av hematopoetiske og endotelceller. Etter uttømming isoleres fibroblaster/myofibroblaster basert på tilstedeværelsen av antigenet MEFSK4 ved hjelp av magnetiske perler. Nylig har MEFSK4 blitt beskrevet som et antigen til stede på quiescent samt aktiverte fibroblaster, noe som gjør det til en passende markør for fibroblastidentifikasjon og isolasjon. Naturligvis har alle metodene som er beskrevet her unike begrensninger. Det anbefales derfor sterkt å kontrollere renheten til den isolerte cellepopulasjonen ved strømningsanalyse, immunfarging og semikvantitativ sanntids PCR. Imidlertid kan disse metodene utvides, og flere markører kan legges til for å utelukke andre forurensende populasjoner før du bruker fibroblast og myofibroblastpopulasjoner for avgjørende eksperimenter.

Protocol

Denne studien opprettholder strengt anbefalingene i Veiledningen for omsorg og bruk av laboratoriedyr ved National Institutes of Health. Vanderbilt University Institutional Animal Care and Use Committee godkjente protokollen (protokollnummer: M1600076-01). 1. Hjerte disseksjon Klargjøring av løsninger KHB buffer Ved hjelp av en rørestang oppløses du sakte 9,4 g Krebs-Henseleit buffer (KHB) pulver i 900 ml DDI-vann.MERK: Bufferen vil utløses…

Representative Results

Flow gating ordningen demonstrere myofibroblast isolasjon ved hjelp av αSMA-GFP reporter musUskadede hjerter viste ingen påviselig GFP+ celler i αSMA-GFP reporter mus modell; Derfor ble de brukt til å etablere en port for bakgrunnssignalet til GFP-kanalen etter kompensasjon (Figur 2). αSMA+ celler ble sortert basert på tilstedeværelsen av GFP-uttrykk fra det skadede venstre ventrikkelen 10 dager etter MI. En liten prosentandel av endotelcelle…

Discussion

Fibroblaster er en heterogen gruppe celler, identifisert av ulike sett med markører. Protein markører som har blitt brukt til å identifisere fibroblaster er discoidin domene reseptor 2 (DDR2), fibronectin, vimentin, kollagen I og III, og Thy115,16,17,18,19,20. Mens vimentin har blitt brukt til å identifisere uskadet quies…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil takke Dr. Ivo Kalajzic for αSMA-GFP-musene. Forskning rapportert i denne publikasjonen ble støttet av National Institute of General Medical Sciences ved National Institutes of Health (NIH) under Award Number R01GM118300 (S.S.), National Institute of Biomedical Imaging and Bioengineering av NIH under Award Number R21EB019509 (P.P.Y.), og Forsker Development Grant av American Heart Association under Award Number 17SDG33630187 (S.S.). Flow cytometri analyser ble utført på VUMC Flow Cytometry Shared Resource som støttes av Vanderbilt Ingram Cancer Center (P30 CA68485) og Vanderbilt Digestive Disease Research Center (DK058404).

Materials

Reagents
Acetone
Anti-fungal (Amphotericin B-solubilized; Fungizone) Sigma Aldrich A9528
Bovine Serium Albumin (BSA) Sigma 9048-46-8
Calcium chloride
Citrate Buffer
Collagenase blend (Liberase Blendzyme 3 TH) Roche Applied Science
DAPI
DDI water
DI water
DMEM-F12 with L-Glutamine and HEPES Life technologies 11330057
Dnase I(20U/mL) BioRad 7326828
Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline (dPBS) without Ca2+ and Mg2+ Gibco 13190-144
70% Ethanol
FC Blocker (Purified anti-mouse CD16/CD32) Tonbo Biosciences 70-0161
Fetal Bovine Serum (FBS) Life technologies 16000044
10% goat serum
Hank's Balanced Salt Solution (HBSS) with Ca2+ and Mg2+ Corning 21-023-CV
1M HEPES Corning 25-060-Ci
Krebs-Henseleit Buffer powder Sigma K3753
Mycoplasma prophylactic (Plasmocin) Invivogen ant-mpp
Penicillin/Streptomycin Thermo Fisher Scientific 15140122
1x Phosphate-Buffered Saline (PBS)
10x Red Blood Cell Lysis Buffer Miltenyi 130-094-183
Slow-fade Mounting Media
Sodium azide
Sodium bicarbonate
TGFβ
Trypan Blue Stain (0.4%) Gibco 15250-061
Type 1 Rat Collagen
Antibodies
7AAD (stock: 1 mg/mL solution in DMSO) Molecular Probes A1310 dilution = 1:1000; RRID =
CD45-APC BD Bioscience 559864 dilution = 1:200; RRID = AB_398672
CD31-PE BD Bioscience 553373 dilution = 1:200; RRID = AB_394819
CD31 BD Biosciences 553370 dilution = 1:250; RRID = AB_394816
CD45 BD Biosciences 553076 dilution = 1:250; RRID = AB_394606
COL 1α1 MD Bioproducts 203002 dilution = 1:1000; RRID =
Ghost dye violet 510 (Formulation: 1 uL/test in DMSO) Tonbo Biosciences 13-0870 dilution = 1:1000; RRID =
Goat anti-mouse Alexa Fluor 488 Molecular Probes A11029 dilution = 1:200; RRID = AB_138404
Goat anti-rabbit-Cy3 Southern Biotech 4050-02 dilution = 1:200; RRID = AB_2795952
Goat anti-rabbit-FITC Jackson Immunoresearch Laboratories 711-165-152 dilution = 1:200; RRID = AB_2307443
Goat anti-rat Alexa Fluor 488 Molecular Probes A11006 dilution = 1:200; RRID = AB_2534074
Goat anti-rat Alexa Fluor 647 Thermo-Fisher A21247 dilution = 1:200; RRID = AB_141778
Periostin Santa Cruz SC67233 dilution = 1:100; RRID = AB_2166650
Vimentin Sigma Aldrich V2258 dilution = 1:200; RRID = AB_261856
α-smooth muscle actin (αSMA) Sigma Aldrich A2547 dilution = 1:1000; RRID = AB_476701
Fibroblast specific protein 1 (FSP1) Millipore 07-2274 07-2274 dilution = 1:100; RRID = AB_10807552
CD45 Magnetic Beads Miltenyi Biotec 130-052-301
CD31 Magnetic Beads Miltenyi Biotec 130-087-418
Anti-feeder cells-APC (MEFSK4) Miltenyi Biotec 130-102-900 dilution = 1:100; RRID = AB_2660619
anti-APC Beads Miltenyi Biotec 130-090-855
Rat IgG-APC Miltenyi Biotec 130-103-034 dilution = 1:100; RRID = AB_2661598
Donkey anti-rat Alexa Fluor405 Abcam ab175670 dilution = 1:100
anti-AN2/NG2 Miltenyi Biotec 130-097-455 dilution = 1:11; RRID = AB_2651235
Other Materials
0.22 µm Filter Thermo Scientific 723-2520
10 cm2 Cell Culture Dish Corning 430167
10 mL Pipet Fisherbrand 13-678-11E
40 µm Cell Strainer Fisherbrand 22363547
5 mL Pipet Fisherbrand 13-678-11D
50 mL Conical Tube Falcon 352070
6-well Plate Corning 3506
Flow Cytometry Tubes Falcon 352058
Forceps
Rocker
Single Edge Blade PAL 62-0177
Surgical Scissors
GFP-αSMA Reporter Mice
MACS Separator Magnetic Field
MACS Separation Column
Coverslips
Qaigen Rneasy Mini Kit Qaigen 74104
Ambion RNAqueous Micro Total Isolation Kit Ambion AM1931
BioRad iScript cDNA Syntehsis Kit BioRad 1708891
48-well Plate
30G Needle
3 Laser Flow Cytometry Machine (BD LSRFortessa) BD Biosciences
4 Laser Flow Cytometry Machine (BD FACSAria III) BD Biosciences
Flow Data Acquiring Software (BD FACSDiva Software v8.0a) BD Biosciences
Flow Data Analysis Software (FlowJo Software) BD Biosciences

Riferimenti

  1. Ivey, M. J., Tallquist, M. D. Defining the Cardiac Fibroblast. Circulation Journal. 80 (11), 2269-2276 (2016).
  2. Prabhu, S. D., Frangogiannis, N. G. The Biological Basis for Cardiac Repair After Myocardial Infarction: From Inflammation to Fibrosis. Circulatory Research. 119 (1), 91-112 (2016).
  3. Duan, J., et al. Wnt1/betacatenin injury response activates the epicardium and cardiac fibroblasts to promote cardiac repair. EMBO Journal. 31 (2), 429-442 (2012).
  4. Shinde, A. V., Frangogiannis, N. G. Fibroblasts in myocardial infarction: a role in inflammation and repair. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 70, 74-82 (2014).
  5. Saraswati, S., Marrow, S. M. W., Watch, L. A., Young, P. P. Identification of a pro-angiogenic functional role for FSP1-positive fibroblast subtype in wound healing. Nature Communications. 10 (1), 3027 (2019).
  6. Kong, P., Christia, P., Saxena, A., Su, Y., Frangogiannis, N. G. Lack of specificity of fibroblast-specific protein 1 in cardiac remodeling and fibrosis. American Journal of Physiology -Heart and Circulatory Physiology. 305 (9), 1363-1372 (2013).
  7. Furtado, M. B., Nim, H. T., Boyd, S. E., Rosenthal, N. A. View from the heart: cardiac fibroblasts in development, scarring and regeneration. Development. 143 (3), 387-397 (2016).
  8. Stellato, M., Czepiel, M., Distler, O., Blyszczuk, P., Kania, G. Identification and Isolation of Cardiac Fibroblasts From the Adult Mouse Heart Using Two-Color Flow Cytometry. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 6, 105 (2019).
  9. Ackers-Johnson, M., et al. A Simplified, Langendorff-Free Method for Concomitant Isolation of Viable Cardiac Myocytes and Nonmyocytes From the Adult Mouse Heart. Circulatory Research. 119 (8), 909-920 (2016).
  10. Saraswati, S., Marrow, S. M. W., Watch, L. A., Young, P. P. Identification of a pro-angiogenic functional role for FSP1-positive fibroblast subtype in wound healing. Nature Communications. 10 (1), 3027 (2019).
  11. Kalajzic, Z., et al. Use of an alpha-smooth muscle actin GFP reporter to identify an osteoprogenitor population. Bone. 43 (3), 501-510 (2008).
  12. Travers, J. G., Kamal, F. A., Robbins, J., Yutzey, K. E., Blaxall, B. C. Cardiac Fibrosis: The Fibroblast Awakens. Circulatory Research. 118 (6), 1021-1040 (2016).
  13. Bell, E., Ivarsson, B., Merrill, C. Production of a tissue-like structure by contraction of collagen lattices by human fibroblasts of different proliferative potential in vitro. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 76 (3), 1274-1278 (1979).
  14. Montesano, R., Orci, L. Transforming growth factor beta stimulates collagen-matrix contraction by fibroblasts: implications for wound healing. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 85 (13), 4894-4897 (1988).
  15. Goldsmith, E. C., et al. Organization of fibroblasts in the heart. Developmental Dynamics. 230 (4), 787-794 (2004).
  16. Bagchi, R. A., Lin, J., Wang, R., Czubryt, M. P. Regulation of fibronectin gene expression in cardiac fibroblasts by scleraxis. Cell Tissue Research. 366 (2), 381-391 (2016).
  17. Goodpaster, T., et al. An immunohistochemical method for identifying fibroblasts in formalin-fixed, paraffin-embedded tissue. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 56 (4), 347-358 (2008).
  18. Chapman, D., Weber, K. T., Eghbali, M. Regulation of fibrillar collagen types I and III and basement membrane type IV collagen gene expression in pressure overloaded rat myocardium. Circulatory Research. 67 (4), 787-794 (1990).
  19. Vasquez, C., Benamer, N., Morley, G. E. The cardiac fibroblast: functional and electrophysiological considerations in healthy and diseased hearts. Journal of Cardiovascular Pharmacology. 57 (4), 380-388 (2011).
  20. Hudon-David, F., Bouzeghrane, F., Couture, P., Thibault, G. Thy-1 expression by cardiac fibroblasts: lack of association with myofibroblast contractile markers. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 42 (5), 991-1000 (2007).
  21. Kanisicak, O., et al. Genetic lineage tracing defines myofibroblast origin and function in the injured heart. Nature Communications. 7, 12260 (2016).
  22. Pinto, A. R., et al. Revisiting Cardiac Cellular Composition. Circulatory Research. 118 (3), 400-409 (2016).
check_url/it/60909?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Melzer, M., Beier, D., Young, P. P., Saraswati, S. Isolation and Characterization of Adult Cardiac Fibroblasts and Myofibroblasts. J. Vis. Exp. (157), e60909, doi:10.3791/60909 (2020).

View Video