Summary

使用荧光寿命成像在老化C.Elegans中淀粉样蛋白结构的表征

Published: March 27, 2020
doi:

Summary

荧光寿命成像监测器,定量和区分蛋白质在生活、衰老和压力的C.elegans疾病模型中的聚集趋势。

Abstract

淀粉样纤维与一些神经退行性疾病有关,如亨廷顿舞蹈症、帕金森氏症或阿尔茨海默氏症。这些淀粉样蛋白纤维能隔离内源性转移稳定蛋白以及蛋白酶网络(PN)的成分,从而加剧细胞中的蛋白质错折叠。可用于评估动物体内淀粉样蛋白聚集过程的工具数量有限。我们提出了荧光寿命显微镜(FLIM)的协议,允许监测和定量特定细胞(如神经元)中的淀粉样蛋白纤维化,以非侵入性的方式,随着老化的进展和扰动PN。FLIM 独立于荧光道的表达水平,能够分析聚合过程,而无需任何进一步的染色或漂白。当荧光波在淀粉样结构附近时,荧光波会发出淬火,从而导致荧光寿命的缩短。淬火与淀粉样蛋白的聚合直接相关。FLIM 是一种多功能技术,可应用于以非侵入性方式比较不同淀粉样蛋白、环境刺激或体内遗传背景的纤维化过程。

Introduction

蛋白质聚集发生在衰老和疾病。导致大型淀粉样蛋白或非晶体内含物形成和沉积的路径难以遵循,它们的动力学同样难以解开。蛋白质可能由于编码序列中的内在突变而错折叠,如遗传疾病。蛋白质也折叠不当,因为保持蛋白质解病网络(PN)保持其可溶性和正确折叠是受损的,就像老化期间一样。PN包括分子护护和降解机,负责蛋白质的生物成因、折叠、贩运和降解1。

由于寿命短、等源性以及易于遗传操作,Elegans已成为研究衰老和疾病的模型。几种在脆弱组织中表达人类致病蛋白质的C.elegans转基因菌株已经产生。重要的是,许多含有容易聚集的蛋白质的菌株重述淀粉样蛋白紊乱的特征,即大内含物的形成。多亏了C.elegans的透明身体,这些骨料可以在体内、非侵入性和非破坏性2中可视化。与氟磷融合产生任何感兴趣的蛋白质 (POI) 可以调查其位置、贩运、交互网络和一般命运。

我们通过荧光寿命成像显微镜(FLIM)来监测生命和衰老C.elegans中致病蛋白的聚集情况。FLIM 是一种基于荧光素寿命的强大技术,而不是其发射光谱。生存期(tau,*)定义为光子从兴奋状态衰减到其接地状态所需的平均时间。给定分子的寿命使用时间相关单光子计数 (TCSPC) 的时域技术计算。在TCSPC-FLIM中,荧光衰减功能是通过用短、高频激光脉冲刺激荧光光,并测量发射的光子到达时间到探测器的脉冲。扫描样本时,会为每个像素创建一个三维数据数组:数组包括有关光子在其x、y空间坐标及其时间衰减曲线中的分布的信息。因此,给定的样本成为揭示蛋白质结构、结合和环境信息,的终身图。每个荧光蛋白都有内在和精确定义的寿命,通常只有几纳秒(ns),取决于其物理化学性质。重要的是,荧光磷的寿命与其浓度、荧光强度和成像方法无关。然而,在生物系统中,它受到环境因素的影响,如pH、温度、电子浓度、氧饱和度及其相互作用伙伴。使用寿命对内部结构变化和方向也十分敏感。将荧光磷与POI融合会导致其寿命发生变化,从而提供有关融合蛋白行为的信息。当荧光波被包围或封装在紧密结合的环境中,如淀粉样蛋白结构的反平行β片时,它非辐射性地失去能量,这个过程称为淬火5。荧光道的淬火导致其明显寿命缩短。当可溶性时,蛋白质的寿命将更接近其原始、更高的价值。相反,当蛋白质开始聚集时,其寿命将不可避免地转移到较低的值66,7。7因此,在活的C.elegans的不同年龄监测任何淀粉样蛋白的聚集倾向成为可能。

在这里,我们描述了一种协议,用于分析融合蛋白的聚合,该蛋白包含不同的多谷氨酰胺(CAG,Q)拉伸(Q40、Q44和Q85)。我们说明了该技术如何同样应用于不同的荧光蛋白,如青色荧光蛋白(CFP)、黄色荧光蛋白(YFP)和单体红荧光蛋白(mRFP);和在C.elegans的所有组织中,包括神经元、肌肉和肠道。此外,在蛋白酶的上下文中,FLIM是观察分子护工消耗时变化的非常有用的工具。通过RNA干扰击倒关键分子伴之一,热休克蛋白1(hsp-1)会产生蛋白质过早的误折叠。由于老化、疾病或陪护器不足而增加的聚合载荷,然后作为荧光寿命的缩短来衡量。

Protocol

1. C. 埃勒甘的同步 通过碱性次氯酸盐溶液处理或通过简单的卵子在20°C8下铺4小时,同步C.elegans。 根据标准程序9,在用OP50大肠杆菌种子的线虫生长介质(NGM)板上生长并保持线虫在20°C。将线虫老化到所需的发育阶段或一天。注意:在这个协议中,年轻人在第4天被成像,旧线虫在生命的第8天被成像。 <p class="jove_ti…

Representative Results

该协议展示了如何准确监测在生物的C.elegan人中聚合物种的形成,无论是在自然老化期间还是在承受压力时。我们选择了四种不同的转基因线虫菌株,用于表达40Q、44Q或85Q重复的多谷氨酰胺蛋白。这些蛋白质在不同的组织中合成,并融合到不同的荧光波中。C. elegans菌株要么在体壁肌肉 (mQ40-RFP) 中表示 Q40-mRFP,在神经系统(nQ40-CFP)中表达 Q40-CFP,要么在肠?…

Discussion

此处介绍的协议描述了一种基于显微镜的技术,用于识别C. elegans模型系统中的聚合物种。FLIM可以通过测量荧光寿命衰变,准确描述融合到荧光磷的聚合和可溶性物种的存在。当融合蛋白开始聚合其记录的平均寿命将从更高值转移到较低的值16。然后,聚合的倾向可以通过寿命的下降来推断:寿命越低,系统中聚合蛋白物种的存在就越高。因此,有可能跟随PN的老化、疾病?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

由国家卫生研究院研究基础设施项目办公室(P40 OD010440)资助的CGC提供的肌肉-Q40-mRFP菌株。神经元Q40-CFP是森本实验室的一种礼物。我们承认DFG(KI-1988/5-1到JK,神经Cure博士奖学金由神经Cure卓越集群到MLP),EMBO(短期奖学金MLP)和生物学家公司(旅行赠款CG和MLP)为资助。我们还感谢柏林马克斯·德尔布吕克分子医学中心的高级光显微镜成像设施,该设施为图像 YFP 结构提供了设置。

Materials

Agar-Agar Kobe I Carl Roth GmbH + Co. KG 5210.2 NGM component
Ahringer Library hsp-1 siRNA Source BioScience UK Limited F26D10.3
Ampicillin Carl Roth GmbH + Co. KG K029.3 Antibiotic
B&H DCS-120 SPC-150 Becker & Hickl GmbH FLIM Aquisition software
B&H SPC830-SPC Image Becker & Hickl GmbH FLIM Aquisition software
BD Bacto Peptone BD-Bionsciences 211677 NGM component
C. elegans iQ44-YFP CAENORHABDITIS GENETICS CENTER (CGC) OG412
C. elegans iQ85-YFP Kind gift from Morimoto Lab
C. elegans mQ40-RFP Kind gift from Morimoto Lab
C. elegans nQ40-CFP Kind gift from Morimoto Lab
Deckgläser-18x18mm Carl Roth GmbH + Co. KG 0657.2 Cover slips
Isopropyl-β-D-thiogalactopyranosid (IPTG) Carl Roth GmbH + Co. KG 2316.4
Leica M165 FC Leica Camera AG Mounting Stereomicroscope
Leica TCS SP5 Leica Camera AG Confocal Microscope
Levamisole Hydrochloride AppliChem GmbH A4341 Anesthetic
OP50 Escherichia coli CAENORHABDITIS GENETICS CENTER (CGC) OP50
PicoQuant PicoHarp300 PicoQuant GmbH FLIM Aquisition software
Sodium Azide Carl Roth GmbH + Co. KG K305.1 Anesthetic
Sodium Chloride Carl Roth GmbH + Co. KG 3957.2 NGM component
Standard-Objektträger Carl Roth GmbH + Co. KG 0656.1 Glass slides
Universal Agarose Bio & Sell GmbH BS20.46.500
Zeiss AxioObserver.Z1 Carl Zeiss AG Confocal Microscope
Zeiss LSM510-Meta NLO Carl Zeiss AG Confocal Microscope

Riferimenti

  1. Klaips, C. L., Jayaraj, G. G., Hartl, F. U. Pathways of cellular proteostasis in aging and disease. Journal of Cell Biology. 217 (1), 51-63 (2018).
  2. Kikis, E. A. The struggle by Caenorhabditis elegans to maintain proteostasis during aging and disease. Biology Direct. 11, 58 (2016).
  3. Becker, W. Fluorescence lifetime imaging – techniques and applications. Journal of Microscopy. 247 (2), 119-136 (2012).
  4. Lakowicz, J. R. . Principles of Fluorescence Spectroscopy. , (2006).
  5. Berezin, M. Y., Achilefu, S. Fluorescence lifetime measurements and biological imaging. Chemical Reviews. 110 (5), 2641-2684 (2010).
  6. Kaminski Schierle, G. S., et al. A FRET sensor for non-invasive imaging of amyloid formation in vivo. ChemPhysChem. 12 (3), 673-680 (2011).
  7. Sandhof, C. A., et al. Reducing INS-IGF1 signaling protects against non-cell autonomous vesicle rupture caused by SNCA spreading. Autophagy. , 1-22 (2019).
  8. Porta-de-la-Riva, M., Fontrodona, L., Villanueva, A., Cerón, J. Basic Caenorhabditis elegans methods: Synchronization and observation. Journal of Visualized Experiments. 64, e4019 (2012).
  9. Stiernagle, T. Maintenance of C. elegans. WormBook the online review of C. elegans biology. 1999, 1-11 (2006).
  10. Kamath, R. S., Martinez-Campos, M., Zipperlen, P., Fraser, A. G., Ahringer, J. Effectiveness of specific RNA-mediated interference through ingested double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Genome Biology. 2 (1), 1-10 (2001).
  11. Becker, W., et al. Fluorescence Lifetime Imaging by Time-Correlated Single-Photon Counting. Microscopy Research and Technique. 63 (1), 58-66 (2004).
  12. Warren, S. C., et al. Rapid global fitting of large fluorescence lifetime imaging microscopy datasets. PloS one. 8 (8), e70687 (2013).
  13. Moronetti Mazzeo, L. E., Dersh, D., Boccitto, M., Kalb, R. G., Lamitina, T. Stress and aging induce distinct polyQ protein aggregation states. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (26), 10587-10592 (2012).
  14. Ben-Zvi, A., Miller, E. A., Morimoto, R. I. Collapse of proteostasis represents an early molecular event in Caenorhabditis elegans aging. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (35), 14914-14919 (2009).
  15. Wallrabe, H., Periasamy, A. Imaging protein molecules using FRET and FLIM microscopy. Current Opinion in Biotechnology. 16 (1), 19-27 (2005).
  16. Chan, F. T. S., Pinotsi, D., Kaminski Schierle, G. S., Kaminski, C. F. Structure-Specific Intrinsic Fluorescence of Protein Amyloids Used to Study their Kinetics of Aggregation. Bio-nanoimaging: Protein Misfolding and Aggregation. , 147-155 (2013).
  17. Laine, R. F., et al. Fast Fluorescence Lifetime Imaging Reveals the Aggregation Processes of α-Synuclein and Polyglutamine in Aging Caenorhabditis elegans. ACS Chemical Biology. 14 (7), 1628-1636 (2019).
  18. Kelbauskas, L., Dietel, W. Internalization of Aggregated Photosensitizers by Tumor Cells: Subcellular Time-resolved Fluorescence Spectroscopy on Derivatives of Pyropheophorbide-a Ethers and Chlorin e6 under Femtosecond One- and Two-photon Excitation. Photochemistry and Photobiology. 76 (6), 686-694 (2002).
  19. Becker, W., Su, B., Holub, O., Weisshart, K. FLIM and FCS detection in laser-scanning microscopes: Increased efficiency by GaAsP hybrid detectors. Microscopy Research and Technique. 74 (9), 804-811 (2011).
  20. Suhling, K., French, M. W., Phillips, D. Time-resolved fluorescence microscopy. Photochemical and Photobiological Sciences. 4 (1), 13-22 (2005).
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Citazione di questo articolo
Pigazzini, M. L., Gallrein, C., Iburg, M., Kaminski Schierle, G., Kirstein, J. Characterization of Amyloid Structures in Aging C. Elegans Using Fluorescence Lifetime Imaging. J. Vis. Exp. (157), e61004, doi:10.3791/61004 (2020).

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