Summary

Proteolytisk nedbrudt alginathydrgels og hydrofobe mikrobioreaktorer til Porcine Oocyt Indkapsling

Published: July 30, 2020
doi:

Summary

Præsenteret her er to protokoller for indkapsling af svin oocytter i 3D-kultur betingelser. I den første er cumulus-oocyt komplekser (P-piller) indkapslet i fibrin-alginat perler. I den anden, de er omgivet af fluorerede ethylen propylen pulverpartikler (mikrobioreaktorer). Begge systemer sikrer optimale betingelser for at opretholde deres 3D-organisation.

Abstract

Inden for reproduktiv biologi førte den bioteknologiske revolution, der begyndte med kunstig befrugtning og embryooverførselsteknologi, til udvikling af assisterede reproduktionsteknikker såsom oocyt in vitromodning (IVM), in vitro-befrugtning (IVF) og kloning af husdyr ved nuklear overførsel fra somatiske celler. IVM er den metode, der er særlig vigtig. Det er platformteknologien til levering af modne oocytter af god kvalitet til anvendelser såsom reduktion af produktionsintervallet i kommercielt vigtige eller truede arter, forskning i in vitro-menneskelig reproduktion og produktion af transgene dyr til cellebehandlinger. Udtrykket oocyt kvalitet omfatter sin kompetence til at fuldføre modning, befrugtes, og dermed resulterer i sunde afkom. Det betyder, at oocytter af god kvalitet er altafgørende for vellykket befrugtning, herunder IVF procedurer. Dette giver mange vanskeligheder med at udvikle en pålidelig kulturmetode, der vil understøtte væksten ikke kun af menneskelige oocytter, men også af andre store pattedyrarter. Det første skridt i IVM er in vitro kultur oocytter. Dette værk beskriver to protokoller for 3D-kulturen af svin oocytter. I den første er 3D-model cumulus-oocyt komplekser (COC’er) indkapslet i en fibrin-alginat perle interpenetrating netværk, hvor en blanding af fibrin og alginat er geleret samtidigt. I den anden suspenderes p-piller i en dråbe medium og indkapslet med fluorholdige ethylenprokylen (FEP; en copolymer af hexafluoropropylen og tetrafluorethylen) pulverpartikler til mikrobioreaktorer defineret som flydende kugler (LM). Begge 3D-systemer opretholder det gasformige in vitro-kulturmiljø. De opretholder også COCs 3D-organisationen ved at forhindre, at de udfladning og deraf følgende afbrydelse af mellemrumskryds bevares, hvorved det funktionelle forhold mellem oocyt og de omkringliggende follikulære celler bevares.

Introduction

Udviklingen af forskellige kultursystemer, herunder tredimensionelle (3D) dem, har til formål at give optimale betingelser for vækst og modning af oocytter isoleret fra folliklerne selv i de tidligste stadier af udviklingen. Dette er af stor betydning for assisterede reproduktive teknikker (ART), især i betragtning af det stigende antal kvinder, der kæmper med barnløshed efter kræftbehandling1. Modning af oocytter under in vitro-forhold (IVM) er allerede en veletableret teknik, der hovedsagelig anvendes til in vitro embryo produktion med henblik på husdyrreproduktion2. I de fleste pattedyrsarter kan der imidlertid opnås en høj modning af cumulus-oocytkomplekser (COC) (interval 60-90 %)3, men deres udviklingskompetence er stadig utilstrækkelig i forhold til behovene. Dette skyldes, at udviklingen af zygotes opnået på en sådan måde, selv op til blastocyst fase er lav, og efter overførslen til surrogat dyr deres levedygtighed til sigt er reduceret. Der er derfor behov for at øge udviklingskompetencen for embryoner fra oocytter, der blev underkastet IVM-proceduren4. Derfor er nye modning medier5 ved at blive udtænkt og forskellige perioder med in vitro kultur ertestet 6,7 sammen med tilskud af kultur medier med forskellige vækstfaktorer ogmolekyler 8,9.

Det første skridt i ethvert komplet IVM-system er at skabe optimale betingelser for bæredygtig vækst af oocytter under in vitro-kultur. Den oocyte vækst er en af de specifikke indikatorer for oocyt evne til at genoptage meiose10,11. Desuden skal et passende oocyt in vitro-kultursystem kunne understøtte dets nukleare modning og cytoplasmatisk differentiering12. Morfologien af cumulus-oocyt kompleks er en anden vigtig indikator, der anvendes i ART klinikker til at vælge den bedste oocyt for efterfølgende trin i in vitro befrugtning (IVF) procedure hos mennesker og husdyr12,13. Blandt de morfologiske egenskaber ved de behandlede p-pc’er er: oocytdiameteren, dens cytoplasmagranulation og den første polarkropintegritet14,15. Udover, oocyte udviklingspotentiale er korreleret med udseende og komprimering af cumulus celler og antallet af deres lag omkring oocyt. Meget vigtigt for passende oocyt in vitro kultur system er også vedligeholdelse af oocyt-cumulus celler korrekt interaktioner og cytoskeleton stabilitet16,17,18,19. Hidtil har in vitro oocyt vækst inden for menneskelige p-piller blevet påvist20. Brugen af ko-p-piller resulterede også i levendefødte. Disse blev isoleret fra umodne æggestokkene follikler og derefter dyrket i 14 dage, indtil oocyt var tilstrækkelig stor til at gennemgå IVF procedure21. Tilsvarende p-piller isoleret fra bavian antral follikler, udsat for IVM efter in vitro kultur gav oocytter stand til at reinitiere meiose til metafase II fase med en normal vises spindel struktur22. Men i denne undersøgelse forfatterne ikke forsøge at befrugte dem. Ikke desto mindre tyder sådanne resultater på, at en lignende procedure ikke kun kan anvendes på disse særlige pattedyrarter, men også på humane cumulus-oocytkomplekser, der er fremstillet af follikler, hvad der bør gøre det muligt at opnå oocytter af god kvalitet, der er egnet til en vellykket IVF-teknik.

De ovenfor beskrevne resultater blev opnået ved anvendelse af konventionelle IVM-protokoller, hvor oocytter blev dyrket i todimensionale (2D) systemer. Den rutinemæssige procedure i 2D-kultursystemer dækker oocytter, nedsænket i en dråbe af en passende kultur medier, med mineralsk olie23,24. Det antages, at en olieoverlejring under in vitro oocyt kultur tjener til at forhindre flydende fordampning, og dermed sikre opretholdelsen af korrekt pH og osmotisk tryk i kulturen. Selv om et sådant 2D-kultursystem gør det muligt at opnå, selv op til 87% af modne gris oocytter25, er det blevet bevist, at mineralolie overlay forårsager betydelig diffusion af lipidopløselige materialer, som er nødvendige for korrekt oocytter udvikling26. Derudover, på grund af steroider (progesteron og østrogener) diffusion i mineralolie under oocyt kultur, en forsinkelse af nuklear modning og reduktion i udviklingsmæssige kompetence opnåelse af svin oocytter blev observeret. Dette kan resultere i, at der opnås et lille antal zygotes, som desuden er kendetegnet ved lav udviklingskapacitet til blastocyst-fasen og af dårlig levedygtighed efter overførsel til recipientdyr27. Der gøres derfor forsøg på at øge udviklingskompetencen hos embryoner, der stammer fra oocytter, der modtages efter IVM-proceduren, ved at skabe optimale betingelser for at opnå både cytoplasmatisk og nuklear modenhed af oocytter, der dyrkes sammen med CC’er som komplekser, især ved hjælp af tredimensionale (3D) systemer. Der er i de sidste to årtier udviklet forskellige innovative 3D in vitro-kultursystemer28,29. Disse var designet til at opretholde den naturlige rumlige organisering af celler og for at undgå deres udfladning i kulturretter, hvad der ikke kan opnås i de traditionelle 2D-kulturer. De dyrkede p-pillers strukturelle og funktionelle aktivitet kan sikres ved at opretholde deres korrekte arkitektur og uforstyrret kommunikation gennem mellemrumskryds mellem forskelligerum 30. Egnetheden af bio-stilladser til 3D in vitro kultur cumulus-oocyt komplekser er blevet evalueret ved hjælp af naturlige biomaterialer såsom forskellige komponenter i den ekstra-cellulære matrix (ECM; kollagen og hyaluronsyre)31 eller inaktive polymerer (alginat)32. Disse forsøg, der blev testet i flere arter , gav lovende resultater med hensyn til genoptagelse af meiose oocyt meiose og opnåelse af deres fuldekompetence 33,34,35. Indtil videre er der imidlertid ikke udviklet noget 3D-system, der er egnet til modning af p-piller, der er isoleret fra store husdyr, herunder svin.

Dette arbejde beskriver to protokoller, der kan bruges til 3D-kulturen i svine-p-piller. Den første protokol beskriver indkapsling i fibrin-alginat perler (FAB). FAB kan dannes ved samtidig blanding af en alginat- og fibrinopløsning, som gennemgår en synkron geleringsproces. Denne kombination giver et dynamisk mekanisk miljø, fordi begge komponenter bidrager til matrix stivhed. En lignende opløsning har tidligere været anvendt til mus ovariesækken kultur og modning36. For så vidt angår den præsenterede protokol anvendes passende højere koncentrationer af calciumchloridopløsning for at undgå for tidlig nedbrydning af alginat-fibrinnettet, hvilket sikrer en hurtig og stabil geleringsproces. Det dynamiske mekaniske miljø skaber betingelser svarende til disse i det naturlige intrasækkulære miljø, hvor p-piller bor og øger størrelsen. Derudover viser arbejdet repræsentative resultater af COCs 3D-kultursystemer, hvor disse er suspenderet i en dråbe medium og indkapslet med fluorholdige ethylen propylen (FEP; en copolymer af hexafluoropropylen og tetrafluorethylen) pulverpartikler, til at danne mikrobioreaktorer (Flydende kugler, LM). LM er en form for 3D bioreaktor, der tidligere har vist sig at støtte, blandt andre, vækst af levende mikroorganismer37, tumor sfæroider38 og embryonale stamceller39. LMs er også med succes blevet brugt til får oocyt kultur40. I de fleste forsøg med FLYDENDE blev bioreaktorer fremstillet ved hjælp af polytetrafluorethylen (PTFE) pulverseng med partikelstørrelse på 1 μm41. Den præsenterede protokol bruger FEP, som er meget ens i sammensætning og egenskaber til fluorpolymerer PTFE. Men FEP er lettere formbar og blødere end PTFE, og hvad der er særligt vigtigt, det er meget gennemsigtig.

Begge 3D-systemer opretholder det gasformige in vitro-kulturmiljø. De opretholder også COCs 3D-organisationen ved at forhindre deres udfladning og deraf følgende afbrydelse af mellemrumskryds, bevare deres funktionelle forhold mellem oocyt og de omkringliggende follikulære celler.

Protocol

Følgende procedurer blev godkendt af Dyrevelfærdsudvalget ved Institut for Zoologi og Biomedicinsk Forskning ved Jagiellonian University. 1. Isolering af porcine cumulus-oocyt komplekser At indsamle materiale til isolering af ovariefoske, punktøre æggestokke fra præpubertale gylte (ca. 6-7 måneder, vejer 70 til 80 kg) på et lokalt slagteri. Vælg ca. 20 svine æggestokke fra 10 dyr til COCs isolation i hvert forsøg.BEMÆRK: Hvis man antager, at hver æggesting giver 3-5 f…

Representative Results

I p-piller, der anvender begge IVM-systemer, holdt granulosacellerne sig tæt til hinanden, og de fleste af de genvundne p-piller havde intakte lag af cumulusceller (Figur 1A, B). Desuden blev en betydelig del af cumulusceller bevaret. Resultaterne af cocs levedygtighedsanalysen bekræftede, at begge systemer, der anvendes til indkapsling af porcine oocytter i 3D in vitro-forhold, sikrede optimale vækstbetingelser (figur 2</s…

Discussion

Evnen til at opretholde in vitro vækst ikke kun af oocyt, men også af cumulus celler omkring det og samtidig støtte dens modning er yderst afgørende for den vellykkede assisteret reproduktive teknologier og for at fremme forståelsen af somatiske celle / oocyt interaktioner især hos arter, der gennemgår langvarig follikulær vækst såsom mennesker eller svin. Løbende forbedrede IVM teknikker bliver nyttigt redskab til at bevare reproduktive muligheder i tilfælde af polycystisk ovariesyndrom (PCOS), for tidlig ov…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne er meget taknemmelige for: dr Waclaw Tworzydlo (Institut for Udviklingsbiologi og Hvirvelløse Morfologi, Institut for Zoologi og Biomedicinsk Forskning, Jagiellonian University) for tekniske faciliteter i TEM; beata Snakowska (Institut for Endokrinologi, Institut for Zoologi og Biomedicinsk Forskning, Jagiellonian University) for teknisk bistand; institut for cellebiologi og billeddannelse, Institut for Zoologi og Biomedicinsk Forskning, Jagiellonian University, JEOL JEM 2100HT (JEOL, Tokyo, Japan). Dette arbejde blev støttet af tilskud 2018/29/N/NZ9/00983 fra National Science Centre Polen.

Materials

General
Antibiotic Antimycotic (100x) 100ml Thermo Fisher 15240062 2.5% final concentration for Handling Medium. 1% in PBS (step 1.2)
DMEM/F12 (500ml) Sigma-Aldrich D8062 Handling and Maturation Medium
DPBS (w/o Ca, Mg), 1x, 500ml Thermo Fisher 14190144
FCS (100 ml) Thermo Fisher 16140063 10% final concentration for both Handling Medium and Maturation Medium. (steps: 1.5. 2.6.)
PBS (1x, pH 7.4) 500ml Thermo Fisher 10010023
TBS Stock Solution (10x, pH 7.4) 500 ml Cayman Chemicals 600232 1x final concentration. Other brand can be use
Maturation Medium
hCG (1 VIAL of 10 000 U) Sigma-Aldrich CG10
PMSG BioVendor RP1782721000
Fibrin-alginate beads
Alginate Lyase Sigma-Aldrich A1603 (Step 2.11.1)
Thrombin Sigma-Aldrich T9326-150UN (Step 2.1)
Calcium Chloride Sigma-Aldrich C5670 (Step 2.1)
Fibrinogen (250mg) Sigma-Aldrich F3879 (Step 2.2)
Sodium Alginate Sigma-Aldrich W201502 (Step 2.3) use for alginate solution
Liquid Marble
FEP Dyneon GmbH 3M AdMD A-66670
Morphological examination
LIVE/DEAD Viability/Cytotoxicity Kit, for mammalian cells Thermo Fisher L3224 (Step 4.1.) Emitted fluorescence: 494 nm for calcein, 528 nm for EthD-1; measure: 517 nm for calcein, 617 nm – EthD-1
VECTASHIELD Antifade Mounting Medium Vector Laboratories H-1000 mounting medium
Ultrastructure examination
Glutaraldehyde solution Sigma-Aldrich G5882 2.5% final concentraion (Step 4.2.1.)
LR White resin Sigma-Aldrich L9774 (Step 4.2.4.)
Methylene blue Sigma-Aldrich M9140 (Step 4.2.5.)
Osmium Tetroxide Sigma-Aldrich O5500 (Step 4.2.3.)
Sodium cacodylate trihydrate Sigma-Aldrich C0250 Use for preparing 0.1M sodium cacodylate buffer (pH 7.2)
Uranyl Acetate POCH 868540111 (Step 4.2.4.)
Specific instruments, tools
30 mm Pteri dish TPP 93040
60 mm IVF Petri dish Falcon 353653
Ez-Grid Premium Cell Handling Pipettor RI Life Sciences 8-72-288
Ez-Tip RI Life Sciences 8-72-4155/20
Heating Table SEMIC Other brands can be used
Incubator Panasonic MCO-170AIC-PE Other brands can be used
Sterile petri dish (10 cm) NEST Biotechnology 704002
Sterile syringe filters with 0.2 µm GOOGLAB SCIENTIFIC GB-30-022PES
Thermos Quechua 5602589 Other brands can be used

Riferimenti

  1. Jeruss, J. S., Woodruff, T. K. Preservation of fertility in patients with cancer. The New England Journal of Medicine. 360 (9), 902-911 (2009).
  2. Paramio, M. T., Izquierdo, D. Current status of in vitro embryo production in sheep and goats. Reproduction in Domestic Animals. 49 (4), 37-48 (2014).
  3. Gilchrist, R. B., Thompson, J. G. Oocyte maturation: emerging concepts and technologies to improve developmental potential in vitro. Theriogenology. 67 (1), 6-15 (2007).
  4. Nogueira, D., Sadeu, J. C., Montagut, J. In vitro oocyte maturation: current status. Seminars in Reproductive Medicine. 30 (3), 199-213 (2012).
  5. Farsi, M. M., Kamali, N., Pourghasem, M. Embryological aspects of oocyte in vitro maturation. International Journal of Molecular and Cellular Medicine. 2 (3), 99-109 (2013).
  6. You, J., et al. Treatment with the proteasome inhibitor MG132 during the end of oocyte maturation improves oocyte competence for development after fertilization in cattle. PLOS One. 7 (11), 48613 (2012).
  7. Donnay, I., et al. Effect of prematuration, meiosis activating sterol and enriched maturation medium on the nuclear maturation and competence to development of calf oocytes. Theriogenology. 62 (6), 1093-1107 (2004).
  8. Ledda, S., Bogliolo, L., Leoni, G., Calvia, P., Naitana, S. Influence of vasoactive intestinal peptide (VIP), atrial natriuretic peptide (ANP) and insulin-like growth factor-I (IGF-I) on in vitro maturation of prepubertal and adult sheep oocytes. Zygote. 4 (4), 343-348 (1996).
  9. Uhm, S. J., et al. Epidermal growth factor can be used in lieu of follicle-stimulating hormone for nuclear maturation of porcine oocytes in vitro. Theriogenology. 73 (8), 1024-1036 (2010).
  10. Fair, T., Hyttel, P., Greve, T. Bovine oocyte diameter in relation to maturational competence and transcriptional activity. Molecular Reproduction and Development. 42 (4), 437-442 (1995).
  11. Sirard, M. A. Follicle environment and quality of in vitro matured oocytes. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 28 (6), 483-488 (2011).
  12. Banwell, K. M., Thompson, J. G. In vitro maturation of Mammalian oocytes: outcomes and consequences. Seminars in Reproductive Medicine. 26 (2), 162-174 (2008).
  13. de Smedt, V., Crozet, N., Gall, L. Morphological and functional changes accompanying the acquisition of the meiotic competence in ovarian goat oocyte. Journal of Experimental Zoology. 269 (2), 128-139 (1994).
  14. Luca, X., et al. Relationship between antral follicular size, oocyte diameters and nuclear maturation of immature oocyte in pigs. Theriogenology. 58 (5), 870-885 (2002).
  15. Abeydeera, L. R. In vitro production of embryo in swine. Theriogenology. 57 (1), 256-273 (2002).
  16. Carabatsos, M. J., Sellitto, C., Goodenough, D. A., Albertini, D. F. Oocyte-granulosa cell heterologous gap junctions are required for the coordination of nuclear and cytoplasmic meiotic competence. Biologia dello sviluppo. 226 (2), 167-179 (2000).
  17. Hashimoto, S., et al. Effects of cumulus cell density during in vitro maturation of the developmental competence of bovine oocytes. Theriogenology. 49 (8), 1451-1463 (1998).
  18. Zuccotti, M., Merico, V., Cecconi, S., Redi, C. A., Garagna, S. What does it take to make a developmentally competent mammalian egg. Human Reproduction Update. 17 (4), 525-540 (2011).
  19. Albertini, D. F., Barrett, S. L. Oocyte-somatic cell communication. Reproduction. Supplement. 61, 49-54 (2003).
  20. Cavilla, J. L., Kennedy, C. R., Byskov, A. G., Hartshorne, G. M. Human immature oocytes grow during culture for IVM. Human Reproduction. 23 (1), 37-45 (2008).
  21. Hirao, Y., et al. In vitro growth and development of bovine oocyte-granulosa cell complexes on the flat substratum: effects of high polyvinylpyrrolidone concentration in culture medium. Biology of Reproduction. 70 (1), 83-91 (2004).
  22. Xu, M., et al. In vitro oocyte maturation and preantral follicle culture from the luteal-phase baboon ovary produce mature oocytes. Biology of Reproduction. 84 (4), 680-697 (2011).
  23. Ka, H., Sawai, K., Wang, W. H., Im, K. S., Niwa, K. Amino acids in maturation medium and presence of cumulus cells at fertilization promote male pronuclear formation in porcine oocytes matured and penetrated in vitro. Biology of Reproduction. 57, 478-483 (1997).
  24. Shimada, M., Zeng, W. X., Terada, T. Inhibition of PI 3-kinase or MEK leads to suppression of p34cdc2 kinase activity and meiotic progression beyond the MI stage in porcine oocytes surrounded with cumulus cells. Biology of Reproduction. 65, 442-448 (2001).
  25. Coy, P., Romar, R. In vitro production of pig embryos: a point of view. Reproduction Fertility and Development. 14, 275-286 (2002).
  26. Reinsberg, J., Ackermann, D., Vander Ven, H. Pitfalls in assessment of progesterone production by granulosa cells cultured in contact with silicone rubber or paraffin oil. Archives Gynecology Obstetrics. 270, 174-178 (2004).
  27. Shimada, M., Kawano, N., Terada, T. Delay of nuclear maturation and reduction in developmental competence of pig oocytes after mineral oil overlay of in vitro maturation media. Reproduction. 124, 557-564 (2002).
  28. Cekleniak, N. A., et al. Novel system for in vitro maturation of human oocytes. Fertility and Sterility. 75, 1185-1193 (2001).
  29. Cukierman, E., Pankov, R., Yamada, K. M. Cell interactions with three-dimensional matrices. Current Opinion in Cell Biology. 14, 633-639 (2002).
  30. Desai, N., et al. Three-dimensional in vitro follicle growth: Overview of culture models, biomaterials, design parameters and future directions. Reproductive Biology and Endocrinology. 8 (119), (2010).
  31. Combelles, C. M., Fissore, R. A., Albertini, D. F., Racowsky, C. In vitro maturation of human oocytes and cumulus cells using a co-culture three-dimensional collagen gel system. Human Reproduction. 20, 1349-1358 (2005).
  32. Dorati, R., et al. Formulation and stability evaluation of 3D alginate beads potentially useful for cumulus-oocyte complexes culture. Journal of Microencapsulation. 33, 137-145 (2016).
  33. Morselli, M. G., Canziani, S., Vigo, D., Luvoni, G. C. A three-dimensional alginate system for in vitro culture of cumulus-denuded feline oocytes. Reproduction in Domestic Animals. 52 (1), 83-88 (2017).
  34. Pangas, S. A., Saudye, H., Shea, L. D., Woodruff, T. K. Novel approach for the three-dimensional culture of granulosa cell-oocyte complexes. Tissue Engineering. 9 (5), 1013-1021 (2003).
  35. Shen, P., et al. A new three-dimensional glass scaffold increases the in vitro maturation efficiency of buffalo (Bubalus bubalis) oocyte via remodeling the extracellular matrix and cell connection of cumulus cells. Reproduction in Domestic Animals. 55 (2), 170-180 (2020).
  36. Kniazeva, E., et al. Primordial follicle transplantation within designer biomaterial grafts produce live births in a mouse infertility model. Scientific Reports. 5, 17709 (2015).
  37. Tian, J., Fu, N., Chen, X. D., Shen, W. Respirable liquid marble for the cultivation of microorganisms. Colloids and Surfaces B Biointerfaces. 106, 187-190 (2013).
  38. Arbatan, T., Al-Abboodi, A., Sarvi, F., Chan, P. P., Shen, W. Tumor inside a pearl drop. Advanced Healthcare Materials. 1 (4), 467-469 (2012).
  39. Sarvi, F., et al. Cardiogenesis of embryonic stem cells with liquid marble micro-bioreactor. Advanced Healthcare Materials. 4 (1), 77-86 (2015).
  40. Ledda, S., et al. A novel technique for in vitro maturation of sheep oocytes in a liquid marble microbioreactor. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 33 (4), 513-518 (2016).
  41. Ooi, C. H., Nguyen, N. T. Manipulation of liquid marbles. Microfluid Nanofluid. 19, 483-495 (2015).
  42. Lin, P., Rui, R. Effects of follicular size and FSH on granulosa cell apoptosis and atresia in porcine antral follicles. Molecular Reproduction Development. 77 (8), 670-678 (2010).
  43. Eppig, J. J., O’Brien, M. J. Development in vitro of mouse oocytes from primordial follicles. Biology of Reproduction. 54 (1), 197-207 (1996).
  44. Dolmans, M. M., et al. Evaluation of Liberase, a purified enzyme blend, for the isolation of human primordial and primary ovarian follicles. Human Reproduction. 21 (2), 413-420 (2006).
  45. Reader, K. L., Stanton, J. A., Juenge, J. L. The role of oocyte organelles in determining developmental competence. Biologia. 6, 35-57 (2017).
  46. Shikanov, A., Xu, M., Woodruff, T. K., Shea, L. D. A method for ovarian follicle encapsulation and culture in a proteolytically degradable 3-dimensional system. Journal of Visualized Experiments. (49), e2695 (2011).
  47. Aussillous, P., Quere, D. Liquid Marbles. Nature. 411, 924-927 (2001).
  48. Serrano, M. C., Nardecchia, S., Gutiérrez, M. C., Ferrer, M. L., del Monte, F. Mammalian cell cryopreservation by using liquid marbles. ACS Applied Materials & Interfaces. 7, 3854-3860 (2015).
  49. Arbatan, T., Li, L., Tian, J., Shen, W. Liquid marbles as micro-bioreactors for rapid blood typing. Advance Healthcare Materials. 1 (1), 80-83 (2012).
  50. Brevini, T. A. L., Manzoni, E. F. M., Ledda, S., Gandolfi, F., Turksen, K. Use of a Super-hydrophobic Microbioreactor to Generate and Boost Pancreatic Mini Organoids. Organoids. Methods in Molecular Biology. , 291-299 (2017).

Play Video

Citazione di questo articolo
Gorczyca, G., Wartalski, K., Tabarowski, Z., Duda, M. Proteolytically Degraded Alginate Hydrogels and Hydrophobic Microbioreactors for Porcine Oocyte Encapsulation. J. Vis. Exp. (161), e61325, doi:10.3791/61325 (2020).

View Video