Summary

Uso De Las Neuronas Del Hipocampo Cultivadas Primarias Para Estudiar El Ensamblaje De Los Segmentos Iniciales Axón

Published: February 12, 2021
doi:

Summary

Aquí, se describe un protocolo para estudiar cuantitativamente el montaje y la estructura de los segmentos iniciales de axones (AIS) de las neuronas del hipocampo que carecen de AIS pre-montado debido a la ausencia de una anquiria gigante-G.

Abstract

Los segmentos iniciales de axones neuronales (AIS) son sitios de iniciación de potenciales de acción y han sido ampliamente estudiados por su estructura molecular, ensamblaje y plasticidad dependiente de la actividad. Ankyrin-G gigante, el organizador principal de AIS, asocia directamente con el voltaje membrana-que atraviesa el sodio bloqueado (VSVG) y los canales del potasio (KCNQ2/3), así como el neurofascin 186 del kDa, una molécula de la adherencia de célula de L1CAM. Ankyrin-G gigante también ata a y recluta las moléculas citoplásmicas de AIS incluyendo beta-4-spectrin, y las proteínas microtubule-obligatoria, EB1/EB3 y Ndel1. Ankyrin-G gigante es suficiente rescatar la formación de AIS en neuronas deficientes de ankyrin-G. Ankyrin-G también incluye una isoforma más pequeña de 190 kDa situada en las espinas dendríticas en vez del AIS, que es incapaz de apuntar al AIS o de rescatar el AIS en neuronas ankyrin-G-deficientes. Aquí, se describe un protocolo utilizando neuronas del hipocampo cultivadas de ANK3-E22/23-flox ratones, que, cuando se transfecta con Cre-BFP exhiben la pérdida de toda la isoforma de la anquirina-G y deteriorar la formación de AIS. Combinado un sistema modificado de glía de Banker / neurona co-cultivo, hemos desarrollado un método para transfectar ankyrin-G neuronas nulas con un 480 kDa ankyrin-G-GFP plásmido, que es suficiente para rescatar la formación de AIS. Además, empleamos un método de cuantificación, desarrollado por Salzer y sus colegas para hacer frente a la variación en la distancia AIS de los cuerpos celulares neuronales que se produce en los cultivos de neuronas del hipocampo. Este protocolo permite realizar estudios cuantitativos del ensamblaje de novo y del comportamiento dinámico del AIS.

Introduction

El segmento inicial del axón se encuentra en el axón proximal en la mayoría de las neuronas vertebradas. Funcionalmente, AIS es donde se inician los potenciales de acción debido a la alta densidad de canales de sodio bloqueados por voltaje en esta región. Los AIS de algunas neuronas excitatorias también son atacados por interneuronas inhibitorias a través de la formación de sinapsis GABAérgicas1,2,3. Por lo tanto, AIS es un sitio crítico para integrar la señalización celular y modular la excitabilidad de las neuronas. AIS es normalmente 20-60 μm de longitud y situado dentro de 20 μm del cuerpo celular. La longitud y posición de AIS varía en las neuronas a través de las regiones del cerebro, así como en diferentes etapas de desarrollo de la misma neurona4,5. La evidencia acumulada sugiere que la composición y la posición del SIA son dinámicas en respuesta al cambio de la actividad neuronal4,5,6,7.

480 kDa ankyrin-G es el organizador maestro de AIS. 480 kDa ankyrin-G es una proteína adaptadora asociada a la membrana que se une directamente a los canales de sodio bloqueados por voltaje, así como a otras proteínas AIS importantes, incluidos los canales beta4-spectrin, KCNQ2/3 que modulan la actividad del canal de sodio8,9,y 186 kDa neurofascin, un L1CAM que dirige las sinapsis GABAérgicas al AIS2,10. 480 kDa ankyrin-G comparte dominios canónicos de ankyrin encontrados en la isoforma corta de ankyrin-G de 190 kDa (repeticiones DE ANK, dominio de unión a spectrin, dominio regulador), pero se distinguen por un exón gigante que se encuentra solo en vertebrados y se expresa específicamente en neuronas(Figura 1A)11,12. El dominio específico de la neurona ankyrin-G de 480 kDa (NSD) se requiere para la formación de AIS12. La ankyrin-G de 190 kDa no promueve el ensamblaje de AIS ni se dirige a AIS en neuronas ankyrin-G-null12. Sin embargo, 190 kDa ankyrin-G se concentra en el AIS que contiene 480 kDa ankyrin-G12. Esta capacidad de la anquirina-G de 190 kDa para apuntar a AIS premontado de neuronas de tipo salvaje ha sido una fuente de confusión en la literatura y ha ralentizado la apreciación de las funciones especializadas críticas de la anquirina-G de 480 kDa en el ensamblaje de AIS. Por lo tanto, es fundamental estudiar el ensamblaje de AIS en neuronas ankyrin-G-null que carecen de un AIS preensamblado.

Aquí, presentamos un método para estudiar el ensamblaje y la estructura del AIS utilizando neuronas hippocampales cultivadas de ratones ANK3-E22/23-flox que elimina todas las isoformas de ankyrin-G13 (Figura 1B). Transfectando neuronas con una construcción Cre-BFP antes de que se ensase el AIS, generamos neuronas deficientes en anquirina-G que carecían completamente de un AIS(Figura 1B, Figura 2). El ensamblaje de AIS se rescata completamente después de la co-transfección del plásmido de anquirina-G-GFP de 480 kDa con un plásmido Cre-BFP. Este método proporciona una manera de estudiar el ensamblado AIS en un entorno AIS no premontado. También modificamos el sistema de co-cultivo de glía-neurona de Gary Banker sin usar antibióticos, previamente diseñado para neuronas embrionarias de día 18, para su aplicación a neuronas de ratón postnatales y adaptamos un método de cuantificación AIS a las mediciones promedio de AIS de múltiples neuronas para normalizar la variación de AIS14,15.

Protocol

NOTA: Este método de cultivo de neuronas del hipocampo de ratones postnatales de 0 días ANK3-E22/23f/f está adaptado del sistema de co-cultivo de glía/neurona de Gary Banker. Por lo tanto, es fundamental realizar todos los pasos después de la disección en una campana limpia utilizando herramientas esterilizadas. Este protocolo tarda hasta 1 mes. El flujo de trabajo se muestra en la figura 3. El protocolo sigue las pautas animales de la Universidad de Duke. <p cl…

Representative Results

Un conjunto completo de experimentos debe incluir la transfección de Cre-BFP solamente como control negativo, Cre-BFP más la co-transfección de ankyrin-G de 480 kDa como control positivo y una condición no transfectada como control de la técnica. En el control sólo de Cre-BFP, las neuronas transfectadas carecen de la acumulación de marcadores AIS, incluyendo anquirina-G (ankG), beta4-espectrina (β4), neurofascina (Nf) y canales de sodio bloqueados por voltaje (VSVG) (Figura 4A)<sup c…

Discussion

El montaje de AIS está organizado por 480 kDa ankyrin-G. Sin embargo, la anquirona-G tiene isoformas más cortas que pueden apuntar al AIS de las neuronas de tipo salvaje, lo que puede conducir a la dificultad en la interpretación de los análisis de estructura-función del ensamblaje de AIS. Aquí presentamos un método utilizando neuronas de ratones ANK3-E22/23-flox que permite el estudio del ensamblaje de novo del AIS. Al transfectar con Cre-BFP a 3 div, eliminamos todas las isoformas endógenas d…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos al Dr. Gary Banker por su sugerencia sobre el protocolo de cultivo neuronal. Este trabajo cuenta con el apoyo del Instituto Médico Howard Hughes, una subvención de los NIH y una cátedra (V.B.

Materials

10xHBSS Thermo Fisher Scientific 14065-056
18mm coverglass (1.5D) Fisher Scientific 12-545-84-1D
190kDa ankyrin-G-GFP Addgene #31059
2.5% Tripsin without phenol red Thermo Fisher Scientific 14065-056
480kDa ankyrin-G-GFP lab made Provide upon request
ANK3-E22/23f/f mice JAX Stock No: 029797 B6.129-Ank3tm2.1Bnt/J;
B27 serum-free supplement Thermo Fisher Scientific A3582801
Boric acid Sigma-Aldrich B6768
Cell strainer with 70-mm mesh BD Biosciences 352350
Ceramic coverslip-staining rack Thomas Scientific 8542E40
Cre-BFP Addgene #128174
D-Glucose Sigma-Aldrich G7021
DMEM Thermo Fisher Scientific 11995073
GlutaMAX-I supplement Thermo Fisher Scientific A1286001
Lipofectamine 2000 Thermo Fisher Scientific 11668030
MEM with Earle’s salts and L-glutamine Thermo Fisher Scientific 11095-080
Neurobasal Medium Thermo Fisher Scientific 21103-049
Nitric acid 70% Sigma-Aldrich 225711
Opti-MEM I Reduced Serum Medium Thermo Fisher Scientific 31985062
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148
Penicillin-streptomycin Thermo Fisher Scientific 15140122
Poly-L-lysine hydrochloride Sigma-Aldrich 26124-78-7
Potassium hydroxide Sigma-Aldrich 1310-58-3

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Yang, R., Bennett, V. Use of Primary Cultured Hippocampal Neurons to Study the Assembly of Axon Initial Segments. J. Vis. Exp. (168), e61411, doi:10.3791/61411 (2021).

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