Summary

Retard de l’accouchement intramyocardique des cellules souches après une blessure à l’Ischémie Reperfusion dans un modèle murine

Published: September 03, 2020
doi:

Summary

Les cellules de tiges sont continuellement étudiées comme traitements potentiels pour des individus avec des dommages myocardiques, cependant, leur viabilité diminuée et la rétention dans les tissus blessés peuvent avoir un impact sur leur efficacité à long terme. Dans ce manuscrit, nous décrivons une méthode alternative pour l’administration de cellules souches dans un modèle murine de lésion de la reperfusion d’ischémie.

Abstract

Il y a un intérêt significatif dans l’utilisation des cellules souches (SC) pour le rétablissement de la fonction cardiaque dans les personnes avec des dommages myocardiques. Le plus souvent, la thérapie cardiaque de cellules souches est étudiée en fournissant des SC en même temps que l’induction des dommages myocardiques. Cependant, cette approche présente deux limites importantes : l’environnement ischémique pro-inflammatoire hostile précoce peut affecter la survie des SC transplantés, et elle ne représente pas le scénario d’infarctus subaigu où les SC seront probablement utilisés. Ici nous décrivons une série en deux parties des procédures chirurgicales pour l’induction des dommages d’ischémie-reperfusion et la livraison des cellules souches mésenchymales (MSCs). Cette méthode d’administration des cellules souches peut permettre une viabilité et une rétention plus longues autour des tissus endommagés en contournant la réponse immunitaire initiale. Un modèle de blessure de reperfusion d’ischémie a été induit chez des souris accompagnées de la livraison des cellules souches mésenchymales (3.0 x 105),exprimant stably le luciferase de luciferase de gène de journaliste sous le promoteur constitutivement exprimé de CMV, intramyocardially 7 jours plus tard. Les animaux ont été photographiés par ultrason et imagerie bioluminescente pour la confirmation des dommages et l’injection des cellules, respectivement. Fait important, il n’y avait aucun taux de complication supplémentaire lors de l’exécution de cette approche à deux procédures pour la livraison sc. Cette méthode d’administration des cellules souches, collectivement avec l’utilisation de gènes de reporter de pointe, peut permettre l’étude in vivo de la viabilité et de la rétention des SC transplantés dans une situation d’ischémie chronique couramment observée cliniquement, tout en contournant la réponse pro-inflammatoire initiale. En résumé, nous avons établi un protocole pour la livraison retardée des cellules souches dans le myocarde, qui peut être utilisé comme une nouvelle approche potentielle dans la promotion de la régénération des tissus endommagés.

Introduction

Les maladies cardiovasculaires demeurent la cause la plus fréquente de morbidité et de mortalité dans le monde. Les événements ischémiques cardiaques se sont avérés préjudiciables à la fonction globale du myocarde et des cellules environnantes1. Seulement ̴0,45-1,0% des cardiomyocytes se régénérera chaque année après des dommages myocardes se produit2. Malgré la demande croissante et l’accent inhérent sur le développement de traitements, les thérapies aidant à la régénération des tissus blessés ont été difficiles à établir et nécessitent encore une optimisation supplémentaire3,4,5. Les thérapies de cellules souches ont été introduites comme voie alternative pour rajeunir les tissus endommagés après un événement ischémique ; cependant, l’avancement de ces thérapies a été remis en question par la survie et la rétention limitées des cellules dans une zone blessée6.

Le microenvironnement du cœur après un événement ischémique peut être caractérisé comme hypoxique, pro-oxydant, et pro-inflammatoire, présentant des conditions hostiles pour les cellules souches thérapeutiques à s’adapter à la survie7,8. Comme une réponse immunitaire est déclenchée à la suite d’une blessure, les lymphocytes naïfs, les macrophages, les neutrophiles et les mastocytes tentent de réparer les dommages en enlevant les cellules mourantes et en modulant le processus de remodelage tissu9,10,11. Dans les 3 premiers jours post-ischémie, l’inflammation est à son apogée avec la libération de cytokines pro-inflammatoires avec un grand nombre de neutrophiles et monocytes dans la zone10,12. Après 7 jours, une grande partie de l’inflammation s’est calmée et la transition vers les cellules réparatrices commence, se poursuivant jusqu’à ce que la cascade de remodelage est terminée, environ 14 jours chez les souris13. Notre méthode chirurgicale est une approche alternative potentielle à l’introduction des produits biologiques dans le myocarde pour contourner la réponse immunitaire innée de pointe après la blessure de reperfusion d’ischémie. Dans le même temps, il permettra l’étude de tout traitement dans un état d’ischémie subaigue/chronique où il peut y avoir différentes variables à considérer par rapport à l’infarctus aigu du myocarde.

Protocol

Les expériences ont été réalisées sur des souris femelles C57BL/6, âgées de 10 à 12 semaines et pesant 20-25 g. Toutes les procédures animales étaient conformes aux normes énoncées dans le Guide for the Care and Use of Laboratory Animals (Institute of Laboratory Animal Resources, National Academy of Sciences, Bethesda, MD, USA) et ont été approuvées par le Mayo Clinic College of Medicine Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC). 1. Préparation et intubation</st…

Representative Results

La blessure de reperfusion d’Ischémie a été induite chez des souris le jour 0, suivie d’un échocardiogramme post-opératoire et d’un électrocardiogramme le jour précédant l’implantation de cellules souches. L’analyse échographique et électrocardiogramme a confirmé l’infarctus et la diminution de la fonction contractile ventriculaire (figure 1A-D). Un examen plus approfondi des données a montré que la fraction d’éjection et le raccourcissement fract…

Discussion

Plus de 85 millions de personnes dans le monde sont touchées par les maladies cardiovasculaires3. La prévalence élevée de ces événements ischémiques justifie le développement et l’expansion de thérapies alternatives pour promouvoir la régénération des tissus endommagés. Les méthodes traditionnelles utilisent la procédure de reperfusion d’ischémie dans un cadre aigu avec l’administration ultérieure des thérapies1. Les réactions inflammatoires sont à…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Aucun.

Materials

0.9% NaCl Irrigation, USP Baxter 0338-0048-04
11×12" Press n' Seal surgical drape, autoclavable SAI Infusion Technologies PSS-SD
24G 3/4" IV catheter tube Jelco 4053
28G x 1/2" 1mL allergy syringe BD 305500 Injection of analgesic
30G x 1/2" 3/10cc insulin syringe Ulticare 08222.0933.56 Injection of stem cells
6-0 S-29, 12" Vicryl suture Ethicon J556G Intercostal, superficial muscle and skin layer incision closure
9-0 BV100-4, 5" Ethilon suture Ethicon 2829G Ligation of the LAD artery
Absorbent underpad Thermo Fischer Scientific 14-206-64 For underneath the animal
Alcohol prep pads, 2 ply, medium Coviden 6818
Anti-fog face mask Halyard 49235
Bonn Strabismus scissors, curved, blunt Fine Science Tools 14085-09
Buprenorphine HCL SR LAB 1mg/ml, 5 ml ZooPharm Pharmacy Buprenorphine narcotic analgesic formulated in a polymer that slows absorption extending duration of action (72 hours duration of activity).
Castroviejo needle holders, curved Fine Science Tools 12061-01
Curity sterile gauze sponges Coviden 397310
Delicate suture tying forceps, 45 angle bent Fine Science Tools 11063-07
Electric Razor Wahl Fur removal
Isoflurane 100 ml Cardinal Health PI23238 Anesthetic
Lab coat
Monoject 1 mL hypodermic syringe Coviden 8881501400
Moria iris forceps, curved, serrated (x2) Fine Science Tools 11370-31
Moria speculum retractor Fine Science Tools 17370-53
Mouse endotracheal intubation kit Kent Scientific
Nair depilatory cream Johnson & Johnson Fur removal
Optixcare eye lube plus Aventix Sterile ocular lubricant
Physiosuite ventilator Kent Scientific
PolyE Polyethylene tubing Harvard Apparatus 72-0191 Temporary compression of LAD artery
Povidone-iodine swabs PDI S41125
Scalpel, 10-blade Bard-Parker 371610
Sterile 3" cotton tipped applicators Cardinal Health C15055-003
Sterile 6" tapered cotton tip applicators Puritan 25-826-5WC
Sterile gloves Cardinal Health N8830
Sterilization pouches Medline MPP100525GS
Surgery cap
Surgical Microscope Leica M125
Suture tying forceps, straight (x2) Fine Science Tools 10825-10
Transpore surgical tape 3M 1527-1
Triple antibiotic ointment G&W Laboratories 11-2683ILNC2 Topical application to prevent infection
Vannas-Tübingen Spring Scissors, curved Fine Science Tools 15004-08
Vetflo vaporizer Kent Scientific

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Olthoff, M., Franchi, F., Peterson, K. M., Paulmurugan, R., Rodriguez-Porcel, M. Delayed Intramyocardial Delivery of Stem Cells after Ischemia Reperfusion Injury in a Murine Model. J. Vis. Exp. (163), e61546, doi:10.3791/61546 (2020).

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