Summary

Forsinket intramyokarell levering av stamceller etter iskemi reperfusjonsskade i en Murine-modell

Published: September 03, 2020
doi:

Summary

Stamceller undersøkes kontinuerlig som potensielle behandlinger for personer med hjerteinfarkt, men deres reduserte levedyktighet og oppbevaring i skadet vev kan påvirke deres langsiktige effekt. I dette manuskriptet beskriver vi en alternativ metode for stamcellelevering i en murinmodell av iskemireperfusjonsskade.

Abstract

Det er betydelig interesse for bruk av stamceller (SCer) for gjenoppretting av hjertefunksjon hos personer med hjerteinfarkt. Oftest studeres hjertestamcellebehandling ved å levere SCer samtidig med induksjon av myokardskade. Denne tilnærmingen presenterer imidlertid to betydelige begrensninger: det tidlige fiendtlige proinflammatoriske iskemiske miljøet kan påvirke overlevelsen av transplanterte SCer, og det representerer ikke det subakutte infarktscenarioet der SCer sannsynligvis vil bli brukt. Her beskriver vi en todelt serie av kirurgiske prosedyrer for induksjon av iskemi-reperfusjonsskade og levering av mesenchymale stamceller (MSCer). Denne metoden for stamcelleadministrasjon kan tillate lengre levedyktighet og oppbevaring rundt skadet vev ved å omgå den første immunresponsen. En modell av iskemi reperfusjonsskade ble indusert hos mus ledsaget av levering av mesenchymale stamceller (3,0 x 105),stabilt uttrykker reporter genet firefly luciferase under konstitutivt uttrykt CMV promotor, intramyocardially 7 dager senere. Dyrene ble avbildet via ultralyd og bioluminescerende bildebehandling for bekreftelse av henholdsvis skade og injeksjon av celler. Viktigere, Det var ingen ekstra komplikasjon rate når du utfører denne to-prosedyre tilnærming for SC levering. Denne metoden for stamcelleadministrasjon, kollektivt med utnyttelse av toppmoderne reportergener, kan tillate in vivo-studien av levedyktighet og oppbevaring av transplanterte SCer i en situasjon med kronisk iskemi som vanligvis ses klinisk, samtidig som den første proinflammatoriske responsen omgår. Oppsummert etablerte vi en protokoll for forsinket levering av stamceller inn i myokardiet, som kan brukes som en potensiell ny tilnærming for å fremme regenerering av det skadede vevet.

Introduction

Kardiovaskulær sykdom er fortsatt den vanligste årsaken til sykelighet og dødelighet over hele verden. Hjerteiske iskemiske hendelser har vist seg å være skadelige for den generelle funksjonen til myokardiet og omkringliggende celler1. Bare ̴ 0,45-1,0% av kardiomyocytter vil regenerere hvert år etter at myokardskade oppstår2. Til tross for den økende etterspørselen og iboende fokus på å utvikle behandlinger, terapier som hjelper i regenerering av skadet vev har vært vanskelig å etablere og fortsatt kreverytterligere optimalisering 3,4,5. Stamcellebehandling har blitt introdusert som en alternativ vei for å forynge skadet vev etter en iskemisk hendelse; Imidlertid har utviklingen av disse behandlingene blitt utfordret av begrenset overlevelse og oppbevaring av cellene til et skadet område6.

Mikromiljøet i hjertet etter en iskemisk hendelse kan karakteriseres som hypoksisk, pro-oksidant og pro-inflammatorisk, og presenterer fiendtlige forhold for terapeutiske stamceller å tilpasse seg for overlevelse7,8. Som en immunrespons utløses etter skade, forsøker naive lymfocytter, makrofager, nøytrofiler og mastceller å reparere skaden ved å fjerne døende celler og modulere prosessen for vevsombygging9,10,11. I løpet av de første 3 dagene etter iskemi er betennelse på topp med frigjøring av proinflammatoriske cytokiner med høyt antall nøytrofiler og monocytter i området10,12. Etter 7 dager har mye av betennelsen avtatt og overgangen til reparerende celler begynner, fortsetter til ombyggingskaskaden er fullført, ca. 14 dager hos mus13. Vår kirurgiske metode er en potensiell alternativ tilnærming til innføring av biologer i myokardiet for å omgå den høyeste medfødte immunresponsen etter iskemireperfusjonsskade. Samtidig vil det tillate for studiet av eventuelle behandlinger i en tilstand av subakutt /kronisk iskemi hvor det kan være forskjellige variabler å vurdere sammenlignet med akutt hjerteinfarkt.

Protocol

Forsøkene ble utført på kvinnelige C57BL/6 mus, alder 10-12 uker og 20-25 g kroppsvekt. Alle dyreprosedyrer overholdt standardene som er angitt i Veiledningen for pleie og bruk av laboratoriedyr (Institute of Laboratory Animal Resources, National Academy of Sciences, Bethesda, MD, USA) og ble godkjent av Mayo Clinic College of Medicine Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC). 1. Forberedelse og intubering Autoklav alle kirurgiske instrumenter før oper…

Representative Results

Iskemireperfusjonsskade ble indusert hos mus på dag 0, etterfulgt av et postoperativt ekkokardiogram og elektrokardiogram dagen før stamcelleimplantasjon. Ultralyd- og elektrokardiogramanalyse bekreftet infarkt og redusert ventrikulær kontraktil funksjon (figur 1A-D). Videre undersøkelse av dataene viste at utstøtingsfraksjonen og fraksjonell forkortelse ble redusert hos mus som fikk iskemisk skade, mens enddiastoliske og systoliske volumer økte (tabell 1</stro…

Discussion

Over 85 millioner mennesker over hele verden er rammet av kardiovaskulær sykdom3. Den høye forekomsten av disse iskemiske hendelsene garanterer videre utvikling og utvidelse av alternative terapier for å fremme regenerering av skadet vev. Tradisjonelle metoder benytter iskemi reperfusjonsprosedyren i en akutt setting med etterfølgende administrering av terapeutiske1. Inflammatoriske reaksjoner er på topp mellom 3-4 dager etter å ha postdert en hjerteiskemisk hendelse,…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ingen.

Materials

0.9% NaCl Irrigation, USP Baxter 0338-0048-04
11×12" Press n' Seal surgical drape, autoclavable SAI Infusion Technologies PSS-SD
24G 3/4" IV catheter tube Jelco 4053
28G x 1/2" 1mL allergy syringe BD 305500 Injection of analgesic
30G x 1/2" 3/10cc insulin syringe Ulticare 08222.0933.56 Injection of stem cells
6-0 S-29, 12" Vicryl suture Ethicon J556G Intercostal, superficial muscle and skin layer incision closure
9-0 BV100-4, 5" Ethilon suture Ethicon 2829G Ligation of the LAD artery
Absorbent underpad Thermo Fischer Scientific 14-206-64 For underneath the animal
Alcohol prep pads, 2 ply, medium Coviden 6818
Anti-fog face mask Halyard 49235
Bonn Strabismus scissors, curved, blunt Fine Science Tools 14085-09
Buprenorphine HCL SR LAB 1mg/ml, 5 ml ZooPharm Pharmacy Buprenorphine narcotic analgesic formulated in a polymer that slows absorption extending duration of action (72 hours duration of activity).
Castroviejo needle holders, curved Fine Science Tools 12061-01
Curity sterile gauze sponges Coviden 397310
Delicate suture tying forceps, 45 angle bent Fine Science Tools 11063-07
Electric Razor Wahl Fur removal
Isoflurane 100 ml Cardinal Health PI23238 Anesthetic
Lab coat
Monoject 1 mL hypodermic syringe Coviden 8881501400
Moria iris forceps, curved, serrated (x2) Fine Science Tools 11370-31
Moria speculum retractor Fine Science Tools 17370-53
Mouse endotracheal intubation kit Kent Scientific
Nair depilatory cream Johnson & Johnson Fur removal
Optixcare eye lube plus Aventix Sterile ocular lubricant
Physiosuite ventilator Kent Scientific
PolyE Polyethylene tubing Harvard Apparatus 72-0191 Temporary compression of LAD artery
Povidone-iodine swabs PDI S41125
Scalpel, 10-blade Bard-Parker 371610
Sterile 3" cotton tipped applicators Cardinal Health C15055-003
Sterile 6" tapered cotton tip applicators Puritan 25-826-5WC
Sterile gloves Cardinal Health N8830
Sterilization pouches Medline MPP100525GS
Surgery cap
Surgical Microscope Leica M125
Suture tying forceps, straight (x2) Fine Science Tools 10825-10
Transpore surgical tape 3M 1527-1
Triple antibiotic ointment G&W Laboratories 11-2683ILNC2 Topical application to prevent infection
Vannas-Tübingen Spring Scissors, curved Fine Science Tools 15004-08
Vetflo vaporizer Kent Scientific

Riferimenti

  1. Franchi, F., et al. The Myocardial Microenvironment Modulates the Biology of Transplanted Mesenchymal Stem Cells. Molecular Imaging Biology. , (2020).
  2. Bergmann, O., et al. Evidence for cardiomyocyte renewal in humans. Science. 324 (5923), 98-102 (2009).
  3. Writing Group, M., et al. Heart Disease and Stroke Statistics-2016 Update: A Report From the American Heart Association. Circulation. 133 (4), 38 (2016).
  4. Gersh, B. J., Simari, R. D., Behfar, A., Terzic, C. M., Terzic, A. Cardiac cell repair therapy: a clinical perspective. Mayo Clinic Protocol. 84 (10), 876-892 (2009).
  5. Terzic, A., Behfar, A. Regenerative heart failure therapy headed for optimization. European Heart Journal. 35 (19), 1231-1234 (2014).
  6. Beegle, J., et al. Hypoxic preconditioning of mesenchymal stromal cells induces metabolic changes, enhances survival, and promotes cell retention in vivo. Stem Cells. 33 (6), 1818-1828 (2015).
  7. Kubli, D. A., Gustafsson, A. B. Mitochondria and mitophagy: the yin and yang of cell death control. Circulation Research. 111 (9), 1208-1221 (2012).
  8. Psaltis, P. J., et al. Noninvasive monitoring of oxidative stress in transplanted mesenchymal stromal cells. JACC Cardiovascular Imaging. 6 (7), 795-802 (2013).
  9. Peet, C., Ivetic, A., Bromage, D. I., Shah, A. M. Cardiac monocytes and macrophages after myocardial infarction. Cardiovasc Research. 16 (6), 1101-1112 (2020).
  10. Swirski, F. K., Nahrendorf, M. Cardioimmunology: the immune system in cardiac homeostasis and disease. Nature Reviews Immunology. 18 (12), 733-744 (2018).
  11. Zhang, Z., et al. Mesenchymal Stem Cells Promote the Resolution of Cardiac Inflammation After Ischemia Reperfusion Via Enhancing Efferocytosis of Neutrophils. Journal of the American Heart Association. 9 (5), 014397 (2020).
  12. Saxena, A., Russo, I., Frangogiannis, N. G. Inflammation as a therapeutic target in myocardial infarction: learning from past failures to meet future challenges. Translational Research. 167 (1), 152-166 (2016).
  13. Prabhu, S. D., Frangogiannis, N. G. The Biological Basis for Cardiac Repair After Myocardial Infarction: From Inflammation to Fibrosis. Circulation Research. 119 (1), 91-112 (2016).
  14. Dominici, M., et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy. 8 (4), 315-317 (2006).
check_url/it/61546?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Olthoff, M., Franchi, F., Peterson, K. M., Paulmurugan, R., Rodriguez-Porcel, M. Delayed Intramyocardial Delivery of Stem Cells after Ischemia Reperfusion Injury in a Murine Model. J. Vis. Exp. (163), e61546, doi:10.3791/61546 (2020).

View Video