Summary

מודל עכברי לחקר התפקיד של פיברובלסטים הקשורים לסרטן בצמיחת הגידול

Published: December 22, 2020
doi:

Summary

ניתן פרוטוקול להזרקה משותפת של תאים סרטניים ופיברובלסטים ולמעקב אחר צמיחת הגידול לאורך זמן. פרוטוקול זה יכול לשמש להבנת הבסיס המולקולרי לתפקידם של פיברובלסטים כמווסתים של צמיחת גידולים.

Abstract

פיברובלסטים הקשורים לסרטן (CAFs) יכולים למלא תפקיד חשוב בצמיחת הגידול על ידי יצירת מיקרו-סביבה המקדמת גידולים. מודלים לחקר התפקיד של CAFs במיקרו-סביבה של הגידול יכולים להיות מועילים להבנת החשיבות התפקודית של פיברובלסטים, פיברובלסטים מרקמות שונות וגורמים גנטיים ספציפיים בפיברובלסטים. מודלים של עכברים חיוניים להבנת התורמים לצמיחת הגידול ולהתקדמות בהקשר in vivo. כאן, פרוטוקול שבו תאים סרטניים מעורבבים עם פיברובלסטים ומוכנסים לעכברים לפתח גידולים מסופקים. גודל הגידול לאורך זמן ומשקלי הגידול הסופיים נקבעים ומושווים בין קבוצות. הפרוטוקול המתואר יכול לספק תובנה נוספת לגבי התפקיד התפקודי של CAFs בגדילה ובהתקדמות של גידולים.

Introduction

בתוך המיקרו-סביבה של הגידול, אחד מסוגי התאים הבולטים ביותר הוא הפיברובלסט הקשור לסרטן (CAF)1. פיברובלסטים אלה הקשורים לקרצינומה יכולים למלא תפקיד מדכא גידול 2,3. לדוגמה, פיברובלסטים המבטאים S100A מפרישים קולגנים שיכולים לעטוף חומרים מסרטנים ולהגן מפני היווצרות קרצינומה4. יתר על כן, דלדול של שריר α חלק אקטין (SMA) חיובי myofibroblasts בסרטן הלבלב גורם לדיכוי חיסוני ומאיץ את התקדמות סרטן הלבלב2. CAFs יכולים גם להתפתח יחד עם תאים סרטניים ולקדם את התקדמות הגידול 5,6,7,8. פיברובלסטים יכולים לסנתז ולהפריש חלבוני מטריצה חוץ-תאיים היוצרים סביבה מקדמת גידול8. חלבוני מטריצה חוץ-תאיים אלה יכולים לגרום להתקשות מכנית של הרקמה, אשר קשורה להתקדמות הגידול 9,10. המטריצה החוץ-תאית השוקעת יכולה לשמש כמחסום פיזי המעכב חדירה חיסונית11. שקיעת מטריקס על ידי CAFs נקשרה גם לפלישת גידולים מכיוון שפיברונקטין שנוצר על ידי CAFs הוכח כמקדם פלישה לגידול12. CAFs מקדמים אנגיוגנזה ומגייסים תאים מדכאי חיסון למיקרו-סביבה של הגידול על ידי הפרשת גורם גדילה-β (TGF-β), גורם גדילה אנדותל כלי דם (VEGF), אינטרלוקין-6 (IL-6) וליגנד CXC-כימוקין 12 (CXCL12)13,14,15. בגלל תפקידם המרכזי בקידום צמיחת הגידול, פיברובלסטים הקשורים לסרטן הם יעד מתפתח לטיפול אנטי סרטני 6,16,17,18.

הפרוטוקול שלהלן מתאר שיטה לבדיקת האופן שבו פיברובלסטים משפיעים על צמיחת גידולים במודל עכברי מבוסס ונפוץ של צמיחת גידולים. על מנת להבין את חשיבותם של פיברובלסטים במיקרו-סביבה של הגידול, שונה הפרוטוקול הסטנדרטי להחדרת תאים סרטניים לעכברים כדי לעקוב אחר גדילתם כך שיכלול פיברובלסטים עם החדרת התאים הסרטניים. התאים הסרטניים יכולים להיות הציג תת עורית או intradermally. החדרה תוך עורית תגרום לגידולים הנובעים מהעור עצמו. Xenografts שבו תאים סרטניים ופיברובלסטים מוזרקים במשותף לעכברים מייצגים כלי מתודולוגי חשוב לניתוח התפקיד של פיברובלסטים, תת-אוכלוסיות של פיברובלסטים וגורמי חלבון ביכולת לקדם צמיחת סרטן 19,20,21. פרוטוקול מפורט להזרקה משותפת של תאים סרטניים ופיברובלסטים לעכברים מסופק. שיטה זו יכולה לשמש להשוואת נוכחות או היעדר פיברובלסטים, להשוואת פיברובלסטים ממקורות שונים20, או להשוואת פיברובלסטים עם וללא ביטוי של חלבונים ספציפיים19. לאחר החדרת התאים הסרטניים והפיברובלסטים, ניתן לעקוב אחר גודל הגידול לאורך זמן. בתום הניסויים ניתן לנתח ולשקול גידולים. על ידי מעקב אחר צמיחת הגידול לאורך זמן, ניתן לנתח את חשיבותם של גורמים שונים.

ישנן גישות חלופיות אפשריות לחקר תפקידם של פיברובלסטים בצמיחת גידולים. לדוגמה, ישנם מודלים מבוססי Cre-loxed המספקים נוקאאוט ספציפי לרקמות של גנים עם מניעים המתבטאים באופן מועדף בפיברובלסטים. גישות כאלה מספקות גם הזדמנויות לחקור את תפקידם של גנים ומסלולים ספציפיים בפיברובלסטים להתקדמות הגידול. בהשוואה לגישות מבוססות Cre-lox, הפרוטוקול שסופק ייצג גישה מהירה יותר באופן משמעותי לניטור תפקידם של פיברובלסטים מכיוון שצמיחת הגידול תנוטר במשך מספר שבועות בלבד. הגישה המסופקת היא גם זולה משמעותית מכיוון שהיא אינה דורשת ייצור ושיכון מושבות של עכברים מהונדסים גנטית. הפרוטוקול המסופק יכול לשמש לבדיקה מהירה של ההשפעה של הפלת גנים שונים באמצעות shRNA במקום צורך לפתח מושבות עכברים. הגישה המסופקת היא גם גמישה יותר מכיוון שהיא תאפשר השוואה של מספרים שונים של פיברובלסטים, יחסים שונים של תאים סרטניים ופיברובלסטים, הפלת גנים שונים, ואפילו השוואה של פיברובלסטים מאתרי רקמות או מינים שונים. לגישת Cre-lox יהיה יתרון בכך שהפיברובלסטים נמצאים בתוך העכברים בהקשר פיזיולוגי יותר.

הפרוטוקול המדווח כאן יהיה בעל ערך עבור מדענים המבקשים לעקוב אחר ההשפעות של פיברובלסטים על צמיחת הגידול במהירות ובאופן חסכוני. פרוטוקול זה חשוב במיוחד עבור מדענים החוקרים תת-קבוצות שונות של פיברובלסטים או פיברובלסטים ממקורות שונים על צמיחת הגידול על צמיחת הגידול. אם חשוב שהתחלת הגידול תתרחש בהקשר פיזיולוגי, יש לשקול מודלים של עכברים מהונדסים גנטית.

ישנן מספר גישות אפשריות לביצוע ניסויים אלה. עכברים בעלי כשירות חיסונית יכולים לשמש כפונדקאים, מה שיאפשר חקירה של אינטראקציות פיברובלסטיות-חיסוניות בין תאים. עבור מודלים של עכברים בעלי כשירות חיסונית, יש להזריק תאי סרטן עכבר ופיברובלסטים עובריים של עכברים (MEFs). השימוש ב-MEFs גם מאפשר לחוקר לנצל את המגוון הרחב של זני עכברי נוקאאוט כדי לבדוק את נוכחותו או היעדרו של גן מעניין. לחלופין, ניתן להשתמש בעכברים עם חסר חיסוני כדי לבחון את תפקידם של פיברובלסטים אנושיים בקידום הצמיחה של גידולים בעכברים שמקורם בתאים סרטניים אנושיים. החדרת התאים הסרטניים יכולה להתבצע באופן תת עורי או אורתוטופי. עבור מלנומה, כפי שיתואר להלן, ניתן להזריק את תערובת הגידול-פיברובלסטים תוך עורית להזרקה אורתוטופית המדמה באופן הדוק יותר את המיקום בתוך העור שבו תתפתח מלנומה.

Protocol

כל הניסויים המתוארים אושרו על ידי הוועדה לטיפול בבעלי חיים באוניברסיטת קליפורניה בלוס אנג’לס. הערה: בחר תאים סרטניים ופיברובלסטים המתאימים לעכברים המארחים עבור זן עכבר. בחר תאים סרטניים ופיברובלסטים המתאימים למין העכבר המארח. להשיג עכברים ממושבות רבייה או לרכוש אותם מספק?…

Representative Results

תאי מלנומה אנושיים A2058 ופיברובלסטים עוריים אנושיים ראשוניים גודלו בתרבית בתנאים סטריליים. התאים נאספו ונשטפו שלוש פעמים עם PBS. עכברים מדוכאי חיסון (NU/J – Foxn1 nude strain) הוזרקו תת עורית על צד אחד עם 0.25 מיליון תאי מלנומה A2058 בלבד. בצד השני הוזרקה לעכברים תערובת של 0.25 מיליון תאי מלנ…

Discussion

בניסוי באיור 1, החדרה משותפת של פיברובלסטים עוריים אנושיים עם תאי מלנומה אנושיים מסוג A2058 הביאה לגידולים גדולים יותר מאשר כאשר תאי המלנומה הוצגו ללא פיברובלסטים בהזרקה משותפת. הבדל זה יכול להיות מזוהה בקלות על סמך נפח הגידול ומשקל הגידול. התוצאות עולות בקנה אחד עם דיווחים ?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

המחברים מבקשים להודות לכל חברי מעבדת קולר על תרומתם המועילה. H.A.C. היה חוקר מילטון א. קסל של קרן ריטה אלן. אנו מכירים ב- NIH/NCI 1 R01 CA221296-01A1, NIH 1 R01 AR070245-01A1, פרס המדע של צוות ברית המחקר למלנומה, פרס תוכנית שילוב מעבדה קלינית של המכון לחקר הסרטן, המרכז לבריאות האישה ע”ש איריס קנטור / מענק UCLA CTSI NIH UL1TR000124, הוועדה המתאמת לחקר הסרטן באוניברסיטת קליפורניה, פרס נושא חילוף החומרים של בית הספר לרפואה ע”ש דיוויד גפן, המכון למדע תרגומי קליני ומרכז הסרטן המקיף ג’ונסון, פרסי חדשנות מהמרכז לחקר תאי גזע רחבים (רוז הילס והא גאבה), פרס מטעם UCLA SPORE בסרטן הערמונית (המכון הלאומי לסרטן של המכונים הלאומיים לבריאות תחת פרס מספר P50CA092131), פרס חדשנות ממרכז תאי גזע רחבים, מרכז אלי ואדית ברוד לרפואה רגנרטיבית ומחקר תאי גזע באוניברסיטת UCLA, תוכנית ההכשרה לביולוגיה של תאי הגידול (פרס שירות המחקר הלאומי המוסדי של רות ל. קירששטיין # T32 CA009056), תוכנית דרמטולוגיה T32 ב- UCLA AR071307, ותוכנית ההכשרה לביולוגיה של תאי שריר, פתופיזיולוגיה וטיפולים T32 של UCLA 5 T32 AF 65972.

Materials

26G Needles Fisher Scientific 14-826-10
Alcohol swabs Fisher Scientific 326895
Animal clipper miniARCO with surgical blade #40 WAHL Professional 8787-450A
Athymic nude mice (NU/J) The Jackson labs 002019 These mice are immunocompromised and can be used for experiments in which human cells are introduced. Immunocompetent mice can also be used if mouse cancer cells and fibroblasts will be introduced.
Cancer cells ATCC ATCC® CRL-11147™ This is the catalog number for a primary human melanoma cell line. Other cancer cell types can also be used.
Cell Culture Multi Flasks Fisher Scientific 14-826-95
Centrifuge for conical tubes capable of reaching 180 x g Fisher Scientific 14-432-22
Countess Cell Counting Chamber Fisher Scientific C10228
Dulbecco's Modified Eagle Medium Fisher Scientific 11965-118
Fetal bovine serum Fisher Scientific MT35010CV
Fibroblasts  ATCC PCS-201-012 We isolate fibroblasts from skin in our lab. This is a catalog number for an adult primary human dermal fibroblast cell line. MEFs and fibroblasts derived from other sites can also be used.
Isoflurane Henry Schein Animal Health NDC 11695-6776-2
PBS USP grade for injection into mice Fisher Scientific 50-751-7476
Sterile 10 ml serological pipet Celltreat 667210B
Sterile 5 ml serological pipet Celltreat 229005B
Sterile 50 ml centrifuge tubes Genesee Scientific 28-108
Sterile Syringe Filters pore size 0.2 microns Fisher Scientific 09-740-61A
Sterile tissue culture-grade Trypsin-EDTA Fisher Scientific 15400054
Sterile tissue-culture grade PBS Fisher Scientific 50-751-7476
Sterle 25 ml serological pipet Celltreat 667225B
TC treated 100 x 20 mm dishes Genesee Scientific 25-202
TC treated 150 x 20 mm dishes Genesee Scientific 25-203
TC treated 60 x 15 mm dishes Genesee Scientific 25-260
Trypan blue Fisher Scientific C10228

Riferimenti

  1. Liu, T., et al. Cancer-associated fibroblasts: an emerging target of anti-cancer immunotherapy. Journal of Hematology and Oncololgy. 12 (1), 86 (2019).
  2. Ozdemir, B. C., et al. Depletion of carcinoma-associated fibroblasts and fibrosis induces immunosuppression and accelerates pancreas cancer with reduced survival. Cancer Cell. 25 (6), 719-734 (2014).
  3. Rhim, A. D., et al. Stromal elements act to restrain, rather than support, pancreatic ductal adenocarcinoma. Cancer Cell. 25 (6), 735-747 (2014).
  4. Zhang, J., et al. Fibroblast-specific protein 1/S100A4-positive cells prevent carcinoma through collagen production and encapsulation of carcinogens. Ricerca sul cancro. 73 (9), 2770-2781 (2013).
  5. Ohlund, D., Elyada, E., Tuveson, D. Fibroblast heterogeneity in the cancer wound. Journal of Experimental Medicine. 211 (8), 1503-1523 (2014).
  6. Chen, X., Song, E. Turning foes to friends: targeting cancer-associated fibroblasts. Nature Reviews Drug Discovery. 18 (2), 99-115 (2019).
  7. Wang, W., et al. Crosstalk to stromal fibroblasts induces resistance of lung cancer to epidermal growth factor receptor tyrosine kinase inhibitors. Clinical Cancer Research. 15 (21), 6630-6638 (2009).
  8. Hwang, R. F., et al. Cancer-associated stromal fibroblasts promote pancreatic tumor progression. Ricerca sul cancro. 68 (3), 918-926 (2008).
  9. Tsujino, T., et al. Stromal myofibroblasts predict disease recurrence for colorectal cancer. Clinical Cancer Research. 13 (7), 2082-2090 (2007).
  10. Laklai, H., et al. Genotype tunes pancreatic ductal adenocarcinoma tissue tension to induce matricellular fibrosis and tumor progression. Nature Medicine. 22 (5), 497-505 (2016).
  11. Cukierman, E., Bassi, D. E. Physico-mechanical aspects of extracellular matrix influences on tumorigenic behaviors. Seminars in Cancer Biology. 20 (3), 139-145 (2010).
  12. Attieh, Y., et al. Cancer-associated fibroblasts lead tumor invasion through integrin-beta3-dependent fibronectin assembly. Journal of Cell Biology. 216 (11), 3509-3520 (2017).
  13. Ahmadzadeh, M., Rosenberg, S. A. TGF-beta 1 attenuates the acquisition and expression of effector function by tumor antigen-specific human memory CD8 T cells. Journal of Immunology. 174 (9), 5215-5223 (2005).
  14. Feig, C., et al. Targeting CXCL12 from FAP-expressing carcinoma-associated fibroblasts synergizes with anti-PD-L1 immunotherapy in pancreatic cancer. Proceedings of the National Academy of Science, U S A. 110 (50), 20212-20217 (2013).
  15. Kojima, Y., et al. Autocrine TGF-beta and stromal cell-derived factor-1 (SDF-1) signaling drives the evolution of tumor-promoting mammary stromal myofibroblasts. Proceedings of the National Academy of Science, U S A. 107 (46), 20009-20014 (2010).
  16. Kalluri, R. The biology and function of fibroblasts in cancer. Nature Reviews Cancer. 16 (9), 582-598 (2016).
  17. Ziani, L., Chouaib, S., Thiery, J. Alteration of the Antitumor Immune Response by Cancer-Associated Fibroblasts. Frontiers in Immunology. 9, 414 (2018).
  18. Sahai, E., et al. A framework for advancing our understanding of cancer-associated fibroblasts. Nature Reviews Cancer. 20 (3), 174-186 (2020).
  19. Grum-Schwensen, B., et al. Suppression of tumor development and metastasis formation in mice lacking the S100A4(mts1) gene. Ricerca sul cancro. 65 (9), 3772-3780 (2005).
  20. Kojima, M., et al. Human subperitoneal fibroblast and cancer cell interaction creates microenvironment that enhances tumor progression and metastasis. PLoS One. 9 (2), 88018 (2014).
  21. Noel, A., et al. Enhancement of tumorigenicity of human breast adenocarcinoma cells in nude mice by matrigel and fibroblasts. British Journal of Cancer. 68 (5), 909-915 (1993).
  22. Sullivan, L. M. Estimation from samples. Circulation. 114 (5), 445-449 (2006).
  23. Yamada, K. M., Cukierman, E. Modeling tissue morphogenesis and cancer in 3D. Cell. 130 (4), 601-610 (2007).
  24. Damianova, R., Stefanova, N., Cukierman, E., Momchilova, A., Pankov, R. Three-dimensional matrix induces sustained activation of ERK1/2 via Src/Ras/Raf signaling pathway. Cell Biology International. 32 (2), 229-234 (2008).
  25. Rhee, S. Fibroblasts in three dimensional matrices: cell migration and matrix remodeling. Experimental & Molecular Medicine. 41 (12), 858-865 (2009).
  26. Hoffman, R. M. Application of GFP imaging in cancer. Labortatory Investigation. 95 (4), 432-452 (2015).
  27. Orimo, A., et al. Stromal fibroblasts present in invasive human breast carcinomas promote tumor growth and angiogenesis through elevated SDF-1/CXCL12 secretion. Cell. 121 (3), 335-348 (2005).
  28. Naito, Y., et al. CD8+ T cells infiltrated within cancer cell nests as a prognostic factor in human colorectal cancer. Ricerca sul cancro. 58 (16), 3491-3494 (1998).
  29. Fu, C., Jiang, A. Dendritic Cells and CD8 T Cell Immunity in Tumor Microenvironment. Frontiers Immunolofy. 9, 3059 (2018).
  30. Lakins, M. A., Ghorani, E., Munir, H., Martins, C. P., Shields, J. D. Cancer-associated fibroblasts induce antigen-specific deletion of CD8 (+) T Cells to protect tumour cells. Nature Communications. 9 (1), 948 (2018).
  31. Kato, T., et al. Cancer-Associated Fibroblasts Affect Intratumoral CD8(+) and FoxP3(+) T Cells Via IL6 in the Tumor Microenvironment. Clinical Cancer Research. 24 (19), 4820-4833 (2018).
  32. Gorchs, L., et al. Human Pancreatic Carcinoma-Associated Fibroblasts Promote Expression of Co-inhibitory Markers on CD4(+) and CD8(+) T-Cells. Frontiers Immunology. 10, 847 (2019).
  33. Duscher, D., et al. Fibroblast-Specific Deletion of Hypoxia Inducible Factor-1 Critically Impairs Murine Cutaneous Neovascularization and Wound Healing. Plastic Reconstructive Surgery. 136 (5), 1004-1013 (2015).
  34. Zheng, B., Zhang, Z., Black, C. M., de Crombrugghe, B., Denton, C. P. Ligand-dependent genetic recombination in fibroblasts : a potentially powerful technique for investigating gene function in fibrosis. American Journal of Pathology. 160 (5), 1609-1617 (2002).
  35. Swonger, J. M., Liu, J. S., Ivey, M. J., Tallquist, M. D. Genetic tools for identifying and manipulating fibroblasts in the mouse. Differentiation. 92 (3), 66-83 (2016).
  36. Krtolica, A., Parrinello, S., Lockett, S., Desprez, P. Y., Campisi, J. Senescent fibroblasts promote epithelial cell growth and tumorigenesis: a link between cancer and aging. Proceedings of the National Academy of Science, U S A. 98 (21), 12072-12077 (2001).
  37. Ortiz-Montero, P., Londono-Vallejo, A., Vernot, J. P. Senescence-associated IL-6 and IL-8 cytokines induce a self- and cross-reinforced senescence/inflammatory milieu strengthening tumorigenic capabilities in the MCF-7 breast cancer cell line. Cell Communication and Signaling. 15 (1), 17 (2017).
  38. Coppe, J. P., et al. Senescence-associated secretory phenotypes reveal cell-nonautonomous functions of oncogenic RAS and the p53 tumor suppressor. PLoS Biology. 6 (12), 2853-2868 (2008).
  39. Coller, H. A., Sang, L., Roberts, J. M. A new description of cellular quiescence. PLoS Biolofy. 4 (3), 83 (2006).
  40. Mitra, M., et al. Alternative polyadenylation factors link cell cycle to migration. Genome Biolofy. 19 (1), 176 (2018).
  41. Lemons, J. M., et al. Quiescent fibroblasts exhibit high metabolic activity. PLoS Biology. 8 (10), 1000514 (2010).
  42. Suh, E. J., et al. A microRNA network regulates proliferative timing and extracellular matrix synthesis during cellular quiescence in fibroblasts. Genome Biology. 13 (12), 121 (2012).
  43. Legesse-Miller, A., et al. Quiescent fibroblasts are protected from proteasome inhibition-mediated toxicity. Molecular Biology of the Cell. 23 (18), 3566-3581 (2012).
  44. Evertts, A. G., et al. H4K20 methylation regulates quiescence and chromatin compaction. Molecular Biology of the Cell. 24 (19), 3025-3037 (2013).
  45. Johnson, L. A., et al. Matrix stiffness corresponding to strictured bowel induces a fibrogenic response in human colonic fibroblasts. Inflammatory Bowel Disease. 19 (5), 891-903 (2013).
  46. Marinkovic, A., Liu, F., Tschumperlin, D. J. Matrices of physiologic stiffness potently inactivate idiopathic pulmonary fibrosis fibroblasts. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 48 (4), 422-430 (2013).
  47. Tschumperlin, D. J. Fibroblasts and the ground they walk on. Physiology (Bethesda). 28 (6), 380-390 (2013).
  48. Tschumperlin, D. J., et al. Mechanotransduction through growth-factor shedding into the extracellular space. Nature. 429 (6987), 83-86 (2004).
  49. Doyle, A. D., Wang, F. W., Matsumoto, K., Yamada, K. M. One-dimensional topography underlies three-dimensional fibrillar cell migration. Journal of Cell Biology. 184 (4), 481-490 (2009).
  50. Alexander, J., Cukierman, E. Stromal dynamic reciprocity in cancer: intricacies of fibroblastic-ECM interactions. Current Opinions in Cell Biology. 42, 80-93 (2016).
check_url/it/61883?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Jelinek, D., Zhang, E. R., Ambrus, A., Haley, E., Guinn, E., Vo, A., Le, P., Kesaf, A. E., Nguyen, J., Guo, L., Frederick, D., Sun, Z., Guo, N., Sevier, P., Bilotta, E., Atai, K., Voisin, L., Coller, H. A. A Mouse Model to Investigate the Role of Cancer-Associated Fibroblasts in Tumor Growth. J. Vis. Exp. (166), e61883, doi:10.3791/61883 (2020).

View Video