Summary

Elektriske og magnetiske feltenheter for stimulering av biologisk vev

Published: May 15, 2021
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver den trinnvise prosessen for å bygge både elektriske og magnetiske stimulatorer som brukes til å stimulere biologisk vev. Protokollen inkluderer en retningslinje for å simulere beregningsmessig elektriske og magnetiske felt og produksjon av stimulatorenheter.

Abstract

Elektriske felt (EFer) og magnetiske felt (MFs) har blitt mye brukt av vevsteknikk for å forbedre celledynamikken som spredning, migrasjon, differensiering, morfologi og molekylær syntese. Variabler som stimuli styrke og stimuleringstider må imidlertid vurderes ved stimulering av enten celler, vev eller stillaser. Gitt at EFer og MFs varierer i henhold til cellulær respons, er det fortsatt uklart hvordan man bygger enheter som genererer tilstrekkelig biofysiske stimuli for å stimulere biologiske prøver. Faktisk er det mangel på bevis angående beregning og distribusjon når biofysiske stimuli påføres. Denne protokollen er fokusert på design og produksjon av enheter for å generere EFer og MFs og implementering av en beregningsmetodikk for å forutsi biofysisk stimulifordeling i og utenfor biologiske prøver. EF-enheten bestod av to parallelle elektroder i rustfritt stål plassert øverst og nederst i biologiske kulturer. Elektroder ble koblet til en oscillator for å generere spenninger (50, 100, 150 og 200 Vp-p) ved 60 kHz. MF-enheten var sammensatt av en spole, som ble strømførende med en transformator for å generere en strøm (1 A) og spenning (6 V) ved 60 Hz. En polymetylmetakrylatstøtte ble bygget for å lokalisere de biologiske kulturene midt i spolen. Beregningssimuleringen belyste den homogene fordelingen av EFer og MFs i og utenfor biologisk vev. Denne beregningsmodellen er et lovende verktøy som kan endre parametere som spenninger, frekvenser, vevsmorfologier, brønnplatetyper, elektroder og spolestørrelse for å estimere EFs og MFs for å oppnå en cellulær respons.

Introduction

EFer og MFs har vist seg å endre celledynamikk, stimulere spredning og øke syntesen av de viktigste molekylene knyttet til den ekstracellulære matrisen av vev1. Disse biofysiske stimuliene kan brukes på forskjellige måter ved å bruke spesifikke innstillinger og enheter. Når det gjelder enhetene for å generere EFer, bruker direkte koblingstimulatorer elektroder som er i kontakt med biologiske prøver in vitro eller implantert direkte i vev av pasienter og dyr in vivo2; Det er imidlertid fortsatt begrensninger og mangler som inkluderer utilstrekkelig biokompatibilitet av elektrodene i kontakt, endringer i pH og molekylær oksygennivå1. Tvert imot genererer indirekte koblingsenheter EFer mellom to elektroder, som er plassert parallelt med biologiske prøver3, slik at en ikke-invasiv alternativ teknikk kan stimulere biologiske prøver og unngå direkte kontakt mellom vev og elektroder. Denne typen enhet kan ekstrapoleres til fremtidige kliniske applikasjoner for å utføre prosedyrer med minimal invasjon til pasienten. I forhold til enheter som genererer MFer, skaper induktive koblingstimulatorer en tidsvarierende elektrisk strøm, som strømmer gjennom en spole som ligger rundt cellekulturer4,5. Til slutt er det kombinerte enheter, som bruker EFer og statiske MFer til å generere forbigående elektromagnetiske felt1. Gitt at det er forskjellige konfigurasjoner for å stimulere biologiske prøver, er det nødvendig å vurdere variabler som spenning og frekvens når biofysiske stimuli påføres. Spenning er en viktig variabel, siden den påvirker oppførselen til biologisk vev; For eksempel har det vist seg at cellemigrasjon, orientering og genuttrykk avhenger av amplituden til anvendt spenning3,6,7,8,9,10. Frekvens spiller en viktig rolle i biofysisk stimulering, da det har blitt bevist at disse forekommer naturlig in vivo. Det har vist seg at høye og lave frekvenser har gunstige effekter på celler; spesielt i cellemembranspenningsporterte kalsiumkanaler eller endoplasmic retikulum, som utløser forskjellige signalveier på intracellulært nivå1,7,11.

I følge ovennevnte består en enhet for å generere EFer av en spenningsgenerator koblet til to parallelle kondensatorer12. Denne enheten ble implementert av Armstrong et al. for å stimulere både spredningshastigheten og den molekylære syntesen av kondrocytter13. En tilpasning av denne enheten ble utført av Brighton et al. som modifiserte cellekulturbrønnplater ved å bore topp- og bunnlokkene. Hullene ble fylt av dekselsklier, hvor bunnbrillene ble brukt til å dyrke biologisk vev. Elektroder ble plassert på hvert dekselsklie for å generere EFer14. Denne enheten ble brukt til å stimulere kondrocytter, osteoblaster og bruskplanter elektrisk, noe som viser en økning i celleproliferasjon14,15,16 og molekylær syntese3,17. Enheten designet av Hartig et al. besto av en bølgegenerator og en spenningsforsterker, som var koblet til parallelle kondensatorer. Elektroder ble laget av rustfritt stål av høy kvalitet plassert i et isolerende etui. Enheten ble brukt til å stimulere osteoblaster, som viser en betydelig økning i spredning og proteinsekresjon18. Enheten som brukes av Kim et al. besto av en bifasisk strømstimulatorbrikke, som ble bygget ved hjelp av en produksjonsprosess av komplementære halvledere av høyspent metalloksid. En kulturbrønnplate ble designet for å dyrke celler over en ledende overflate med elektrisk stimulering. Elektroder ble belagt i gull over silisiumplater19. Denne enheten ble brukt til å stimulere osteoblaster, som viser en økning i spredning og syntese av vaskulær endotel vekstfaktor19, og stimulerer produksjonen av alkalisk fosfataseaktivitet, kalsiumavsetning og benmorfogene proteiner20. På samme måte ble denne enheten brukt til å stimulere spredningshastigheten og uttrykket for vaskulær endotel vekstfaktor for menneskelig benmarg mesenchymale stamceller21. Enheten designet av Nakasuji et al. var sammensatt av en spenningsgenerator koblet til platinaplater. Elektroder ble bygget for å måle det elektriske potensialet på 24 forskjellige punkter. Denne enheten ble brukt til å stimulere kondrocytter, som viste at EFer ikke endret cellemorfologi og økt spredning og molekylær syntese22. Enheten som brukes av Au et al. besto av et glasskammer utstyrt med to karbonstenger koblet til en hjertestimulator med platinatråder. Denne stimulatoren ble brukt til å stimulere kardiomyocytter og fibroblaster, forbedre celleforlengelse og fibroblastjustering23.

Ulike MF-enheter er produsert basert på Helmholtz-spoler for å stimulere til flere typer biologiske prøver. For eksempel har Helmholtz-spoler blitt brukt til å stimulere spredning og molekylær syntese av kondrocytter24,25, forbedre proteoglykansyntese av leddbrusk explants26, forbedre gen upregulering relatert til beindannelse av osteoblastlignende celler27, og øke spredning og molekylær uttrykk for endotelceller28. Helmholtz-spoler genererer MFs gjennom to spoler som ligger den ene foran den andre. Spolene må plasseres med en avstand som er lik spolens radius for å sikre en homogen MF. Ulempen med å bruke Helmholtz-spoler ligger i spoledimensjonene, fordi de må være store nok til å generere den nødvendige MF-intensiteten. I tillegg må avstanden mellom spoler være tilstrekkelig for å sikre en homogen fordeling av MFs rundt biologisk vev. For å unngå problemer forårsaket av Helmholtz-spoler, har forskjellige studier vært fokusert på solenoidspoler produksjon. Solenoidspoler er basert på et rør, som er såret med kobbertråd for å generere MFs. Kobbertrådinnganger kan kobles direkte til stikkontakten eller en strømforsyning for å energisere spolen og lage MFs i midten av spolen. Jo flere svinger spolen har, jo større genereres MF. MF-størrelsen avhenger også av spenningen og strømmen som påføres for å energisere spolen29. Solenoidspoler har blitt brukt til å stimulere magnetisk forskjellige typer celler som HeLa, HEK293 og MCF730 eller mesenchymale stamceller31.

Enheter som brukes av forskjellige forfattere har ikke vurdert verken tilstrekkelig størrelse på elektroder eller riktig lengde på spolen for homogent å distribuere både EFer og MFs. Videre genererer enheter faste spenninger og frekvenser, noe som begrenser bruken av dem til å stimulere spesifikke biologiske vev. Av denne grunn utføres en beregningssimuleringsretningslinje i denne protokollen for å simulere både kapasitive systemer og spoler for å sikre homogen distribusjon av EFer og MFs over biologiske prøver, og unngå kanteffekten. I tillegg er det vist at utformingen av elektroniske kretser genererer spenninger og frekvens mellom elektrodene og spolen, og skaper EFer og MFs som vil overvinne begrensninger forårsaket av impedans av cellekulturens brønnplater og luft. Disse modifikasjonene vil tillate opprettelse av ikke-invasive og adaptive bioreaktorer for å stimulere ethvert biologisk vev.

Protocol

1. Simulering av EFer og MFs MERK: Simulering av EFer og MFs ble utført i COMSOL Multiphysics. Velg en aksisymmetrisk 2D-konfigurasjon som representerer både domener som er elektriske og magnetiske. I den fysiske konfigurasjonen velger du enten det elektriske strømgrensesnittet for å beregne EFer i parallelle elektroder eller magnetfeltgrensesnittet for å beregne MFer rundt spoler. I studiekonfigurasjonen velger du Fr…

Representative Results

BeregningssimuleringDistribusjoner av EFer og MFer vises i figur 3. På den ene siden var det mulig å observere den homogene fordelingen av EFer i kapasitivsystemet (figur 3A). EF ble plottet inn for å observere i detalj størrelsen på feltet inne i den biologiske prøven (Figur 3B). Denne simuleringen var nyttig for å parametrize størrelsen på elektrodene og produsere dem for å unngå kanteffekten. På d…

Discussion

Behandlinger som brukes til å helbrede forskjellige patologier som påvirker humant vev er farmakologiske terapier32 eller kirurgiske inngrep33, som søker å lindre smerte lokalt eller erstatte berørte vev med explants eller transplantasjoner. Nylig har autolog celleterapi blitt foreslått som en alternativ terapi for å behandle skadet vev, hvor celler er isolert fra pasienten og utvidet, gjennom in vitro-teknikker, som skal implanteres på skadestedet

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker den økonomiske støtten fra “Fondo Nacional de Financiamiento para la Ciencia, la Tecnología, y la Innovación -Fondo Francisco José de Caldas- Minciencias” og Universidad Nacional de Colombia gjennom stipendet Nr. 80740-290-2020 og støtten mottatt av Valteam Tech – Research and Innovation for å gi utstyr og teknisk støtte i utgaven av videoen.

Materials

Electrical stimulator
Operational amplifier Motorola LF-353N —-
Quantity: 1
Resistors —- —- 22 kΩ
Quantity: 1
Resistors —- —- 10 kΩ
Quantity: 3
Resistors —- —- 2.6 kΩ
Quantity: 2
Resistors —- —- 2.2 kΩ
Quantity: 1
Resistors —- —- 1 kΩ
Quantity: 1
Resistors —- —- 220 Ω
Quantity: 2
Resistors —- —- 22 Ω
Quantity: 5
Resistors —- —- 10 Ω
Quantity: 1
Resistors —- —- 6.8 Ω
Quantity: 1
Resistors —- —- 3.3 Ω
Quantity: 2
Polyester capacitors —- —- 1 nF
Quantity: 2
Polyester capacitors —- —- 100 nF
Quantity: 1
VHF Band Amplifier Transistor JFET Toshiba 2SK161 —-
Quantity: 1
Power transistor BJT NPN Mospec TIP 31C —-
Quantity: 1
Zener diode Microsemi 1N4148 —-
Quantity: 1
Switch Toogle Switch SPDT – T13 —-
Quantity: 3
Toroidal ferrite core Caracol —- T*22*14*8
Quantity: 1
Cooper wire Greenshine —- AWG – 24
Quantity: 1
Relimate header with female housing ADAFRUIT —- 8 pin connectors
Quantity: 1
Relimate header with female housing ADAFRUIT —- 2 pin connectors
Quantity: 1
Female plug terminal connector JIALUN —- 4mm Lantern Plugs (Plug + Socket) 15 A
Quantity: 1
Aluminum Heat Sink AWIND —- For TIP 31C transistor
Quantity: 1
Led CHANZON —- 5 mm red
Quantity: 1
Integrated circuit socket connector Te Electronics Co., Ltd. —- Double row 8-pin DIP
Quantity: 1
3 pin connectors set STAR —- JST PH 2.0
Quantity: 3
2 pin screw connectors STAR —- For PCB
Quantity: 1
3 pin screw connectors STAR —- For PCB
Quantity: 1
Banana connector test lead JIALUN —- P1041 – 4 mm – 15 A
Quantity: 7
Bullet connectors to banana plug charge lead JIALUN —- 4 mm male-male/female-female adapters – 15 A
Quantity: 1
Case —- —- ABS
Quantity: 1
Electrodes —- —- Stainless – steel
Quantity: 2
Electrode support —- —- Teflon
Quantity: 2
Printed circuit board Quantity: 1
Magnetic stimulator
Cooper wire Greenshine —- AWG – 18
Quantity: 1
AC power plugs —- —- 120 V AC – 60 Hz
Quantity: 1
Banana female connector test lead JIALUN —- 1Set Dual Injection – 4 mm – 15 A
Quantity: 2
Banana male connector test lead JIALUN —- 1Set Dual Injection – 4 mm 15 A
Quantity: 1
Cell culture well plate support —- —- PMMA
Quantity: 1
Fuse Bussmann 2A —-
Quantity: 1
Transformer —- —- 1A – 6 V AC
Quantity: 1
Tube —- —- PVC
Quantity: 1
Variable rheostat MCP BXS150 10 Ω
Quantity: 1
General equipment
Digital dual source  PeakTech DG 1022Z 2 x 0 – 30 V / 0 – 5 A CC / 5 V / 3 A fijo
Quantity: 1
Digital Oscilloscope Rigol DS1104Z Plus 100 MHz, bandwidth, 4 channels
Quantity: 1
Digital multimeter Fluke F179 Voltage CC – CA (1000 V). Current CC – CA 10 A. Frequency 100 kHz
Quantity: 1

Riferimenti

  1. Balint, R., Cassidy, N. J., Cartmell, S. H. Electrical Stimulation: A Novel Tool for Tissue Engineering. Tissue Engineering Part B: Reviews. 19 (1), 48-57 (2013).
  2. Ercan, B., Webster, T. J. The effect of biphasic electrical stimulation on osteoblast function at anodized nanotubular titanium surfaces. Biomaterials. 31 (13), 3684-3693 (2010).
  3. Brighton, C., Wang, W., Clark, C. The effect of electrical fields on gene and protein expression in human osteoarthritic cartilage explants. The Journal of Bone and Joint Surgery-American. 90 (4), 833-848 (2008).
  4. Baerov, R. M., Morega, A. M., Morega, M. Analysis of magnetotherapy effects for post-traumatic recovery of limb fractures. Revue Roumaine des Sciences Techniques- Série électrotechnique et énergétique. 65 (1-2), 145-150 (2020).
  5. Escobar, J. F., et al. In Vitro Evaluation of the Effect of Stimulation with Magnetic Fields on Chondrocytes. Bioelectromagnetics. 41 (1), 41-51 (2019).
  6. Brighton, C., Wang, W., Clark, C. Up-regulation of matrix in bovine articular cartilage explants by electric fields. Biochemical and Biophysical Research Communications. 342 (2), 556-561 (2006).
  7. Xu, J., Wang, W., Clark, C., Brighton, C. Signal transduction in electrically stimulated articular chondrocytes involves translocation of extracellular calcium through voltage-gated channels. Osteoarthritis and Cartilage. 17 (3), 397-405 (2009).
  8. Xia, Y., et al. Magnetic field and nano-scaffolds with stem cells to enhance bone regeneration. Biomaterials. 183, 151-170 (2018).
  9. Richter, A., Bartoš, M., Ferková, &. #. 3. 8. 1. ;. Physical Analysis of Pulse Low-Dynamic Magnetic Field Applied in Physiotherapy BT. World Congress on Medical Physics and Biomedical Engineering 2018. , 239-245 (2019).
  10. Miyakoshi, J. Effects of static magnetic fields at the cellular level. Progress in Biophysics and Molecular Biology. 87, 213-223 (2005).
  11. Zhang, K., Guo, J., Ge, Z., Zhang, J. Nanosecond Pulsed Electric Fields (nsPEFs) Regulate Phenotypes of Chondrocytes through Wnt/β-catenin Signaling Pathway. Scientific Reports. 4 (5836), 1-8 (2014).
  12. Brighton, C. T., Unger, A. S., Stambough, J. L. In vitro growth of bovine articular cartilage chondrocytes in various capacitively coupled electrical fields. Journal of Orthopaedic Research. 2 (1), 15-22 (1984).
  13. Armstrong, P. F., Brighton, C., Star, A. M. Capacitively coupled electrical stimulation of bovine growth plate chondrocytes grown in pellet form. Journal of Orthopaedic Research. 6 (2), 265-271 (1988).
  14. Brighton, C., Townsend, P. Increased cAMP production after short-term capacitively coupled stimulation in bovine growth plate chondrocytes. Journal of Orthopaedic Research. 6 (4), 552-558 (1988).
  15. Brighton, C. T., Jensen, L., Pollack, S. R., Tolin, B. S., Clark, C. Proliferative and synthetic response of bovine growth plate chondrocytes to various capacitively coupled electrical fields. Journal of Orthopaedic Research. 7 (5), 759-765 (1989).
  16. Brighton, C. T., Okereke, E., Pollack, S. R., Clark, C. In vitro bone-cell response to a capacitively coupled electrical field. The role of field strength, pulse pattern, and duty cycle. Clinical Orthopaedics and Related Research. 285, 255-262 (1992).
  17. Wang, W., Wang, Z., Zhang, G., Clark, C., Brighton, C. T. Up-regulation of chondrocyte matrix genes and products by electric fields. Clinical Orthopaedics and Related Research. 427, 163-173 (2004).
  18. Hartig, M., Joos, U., Wiesmann, H. P. Capacitively coupled electric fields accelerate proliferation of osteoblast-like primary cells and increase bone extracellular matrix formation in vitro. European Biophysics Journal. 29 (7), 499-506 (2000).
  19. Kim, I. S., et al. Biphasic electric current stimulates proliferation and induces VEGF production in osteoblasts. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Molecular Cell Research. 1763 (9), 907-916 (2006).
  20. Kim, I., et al. Novel Effect of Biphasic Electric Current on In Vitro Osteogenesis and Cytokine Production in Human Mesenchymal Stromal Cells. Tissue Engineering Part A. 15, 2411-2422 (2009).
  21. Kim, I., et al. Novel action of biphasic electric current in vitro osteogenesis of human bone marrow mesenchymal stromal cells coupled with VEGF production. Bone. 43, 43-44 (2008).
  22. Nakasuji, S., Morita, Y., Tanaka, K., Tanaka, T., Nakamachi, E. Effect of pulse electric field stimulation on chondrocytes. Asian Pacific Conference for Materials and Mechanics. 1, 13-16 (2009).
  23. Au, H. T. H., Cheng, I., Chowdhury, M. F., Radisic, M. Interactive effects of surface topography and pulsatile electrical field stimulation on orientation and elongation of fibroblasts and cardiomyocytes. Biomaterials. 28 (29), 4277-4293 (2007).
  24. Vanessa, N., et al. In vitro exposure of human chondrocytes to pulsed electromagnetic fields. European Journal of Histochemistry. 51 (3), 203-211 (2007).
  25. Pezzetti, F., et al. Effects of pulsed electromagnetic fields on human chondrocytes: An in vitro study. Calcified Tissue International. 65 (5), 396-401 (1999).
  26. De Mattei, M., et al. Effects of electromagnetic fields on proteoglycan metabolism of bovine articular cartilage explants. Connective Tissue Research. 44 (3-4), 154-159 (2003).
  27. Sollazzo, V., Massari, L., Caruso, A., Mattei, M., Pezzetti, F. Effects of Low-Frequency Pulsed Electromagnetic Fields on Human Osteoblast-Like Cells In Wtro. Electromagnetobiology. 15, 75-83 (2009).
  28. Martino, C. F., Perea, H., Hopfner, U., Ferguson, V. L., Wintermantel, E. Effects of weak static magnetic fields on endothelial cells. Bioelectromagnetics. 31 (4), 296-301 (2010).
  29. Wada, K., et al. Design and implementation of multi-frequency magnetic field generator producing sinusoidal current waveform for biological researches. 2016 18th European Conference on Power Electronics and Applications (EPE’16 ECCE Europe). 2016, 1-8 (2016).
  30. Cho, H., Kim, S., Kim, K. K., Kim, K., Kim, K. Pulsed Electromagnetic Fields Stimulate Cellular Proliferation in Different Types of Cells. IEEE Transactions on Magnetics. 52 (7), 1-4 (2016).
  31. Yan, J., Dong, L., Zhang, B., Qi, N. Effects of extremely low-frequency magnetic field on growth and differentiation of human mesenchymal stem cells. Electromagnetic Biology and Medicine. 29 (4), 165-176 (2010).
  32. Enoch, S., Grey, J. E., Harding, K. G. ABC of wound healing. Non-surgical and drug treatments. BMJ. 332 (7546), 900-903 (2006).
  33. Bhosale, A. M., Richardson, J. B. Articular cartilage: Structure, injuries and review of management. British Medical Bulletin. 87 (1), 77-95 (2008).
  34. Al Hamed, R., Bazarbachi, A. H., Malard, F., Harousseau, J. -. L., Mohty, M. Current status of autologous stem cell transplantation for multiple myeloma. Blood Cancer Journal. 9 (4), 44 (2019).
  35. Massari, L., et al. Biophysical stimulation of bone and cartilage: state of the art and future perspectives. International Orthopaedics. 43 (3), 539-551 (2019).
  36. Naskar, S., Kumaran, V., Basu, B. Reprogramming the Stem Cell Behavior by Shear Stress and Electric Field Stimulation: Lab-on-a-Chip Based Biomicrofluidics in Regenerative Medicine. Regenerative Engineering and Translational Medicine. 5 (2), 99-127 (2019).
  37. Hunckler, J., de Mel, A. A current affair: electrotherapy in wound healing. Journal of Multidisciplinary Healthcare. 10, 179-194 (2017).
  38. Henry, S. L., Concannon, M. J., Yee, G. J. The effect of magnetic fields on wound healing: experimental study and review of the literature. Eplasty. 8, 393-399 (2008).
  39. Hiemer, B., et al. Effect of electric stimulation on human chondrocytes and mesenchymal stem cells under normoxia and hypoxia. Molecular Medicine Reports. 18 (2), 2133-2141 (2018).
  40. Chao, P. H., et al. Chondrocyte translocation response to direct current electric fields. Journal of Biomechanical Engineering. 122 (3), 261-267 (2000).
  41. Zhao, M., Bai, H., Wang, E., Forrester, J., McCaig, C. Electrical stimulation directly induces pre-angiogenic responses in vascular endothelial cells by signaling through VEGF receptors. Journal of Cell Science. 117 (3), 397-405 (2004).
  42. Li, X., Kolega, J. Effects of direct current electric fields on cell migration and actin filament distribution in bovine vascular endothelial cells. Journal of Vascular Research. 39 (5), 391-404 (2002).
  43. Singh, B., Dixit, A. Multistage amplifier and tuned amplifier. Analog Electronics. , 87-131 (2007).
  44. Esfandiari, E., et al. The effect of high frequency electric field on enhancement of chondrogenesis in human adipose-derived stem cells. Iranian Journal Basic Medical Sciences. 4 (3), 571-576 (2014).
  45. Mardani, M., et al. Induction of chondrogenic differentiation of human adipose-derived stem cells by low frequency electric field. Advanced Biomedical Research. 5 (97), 1-7 (2016).
  46. Karaman, O., Gümüşay, M., Demirci, E. A., Kaya, A. Comparative assessment of pulsed electromagnetic fields (PEMF) and pulsed radio frequency energy (PRFE) on an in vitro wound healing model. International Journal of Applied Electromagnetics and Mechanics. 57, 427-437 (2018).
  47. Glinka, M., et al. Test chambers for cell culture in static magnetic field. Journal of Magnetism and Magnetic Materials. 331, 208-215 (2013).
  48. Vacek, T. P., et al. Electrical stimulation of cardiomyocytes activates mitochondrial matrix metalloproteinase causing electrical remodeling. Biochemical and Biophysical Research Communications. 404 (3), 762-766 (2011).
  49. Okutsu, S., et al. Electric Pulse Stimulation Induces NMDA Glutamate Receptor mRNA in NIH3T3 Mouse Fibroblasts. The Tohoku Journal of Experimental Medicine. 215 (2), 181-187 (2008).
check_url/it/62111?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Saiz Culma, J. J., Escobar Huertas, J. F., Garzón-Alvarado, D. A., Vaca-Gonzalez, J. J. Electric and Magnetic Field Devices for Stimulation of Biological Tissues. J. Vis. Exp. (171), e62111, doi:10.3791/62111 (2021).

View Video