Summary

एंडोन्यूक्लियज़-आधारित साइट-विशिष्ट डीएनए क्षति की कल्पना और मात्रा निर्धारित करना

Published: August 21, 2021
doi:

Summary

यह लेख इम्यूनोस्टेपिंग और क्रोमेटिन इम्यूनोप्रिपिटेशन के आवश्यक चरणों का परिचय देता है। इन प्रोटोकॉल आमतौर पर डीएनए क्षति से संबंधित सेलुलर प्रक्रियाओं का अध्ययन करने और कल्पना और डीएनए की मरंमत में फंसा प्रोटीन की भर्ती की मात्रा के लिए उपयोग किया जाता है ।

Abstract

कोशिकाओं को लगातार विभिन्न डीएनए हानिकारक एजेंटों के संपर्क में हैं, विभिन्न सेलुलर प्रतिक्रियाओं को प्रेरित करते हैं। जैव रासायनिक और आनुवंशिक दृष्टिकोण लागू करने की भर्ती और डीएनए क्षति की साइट पर डीएनए मरम्मत परिसरों की विधानसभा के साथ जुड़े सेलुलर घटनाओं का खुलासा करने में आवश्यक है । पिछले कुछ वर्षों में, साइट-विशिष्ट डीएनए क्षति को प्रेरित करने के लिए कई शक्तिशाली उपकरण विकसित किए गए हैं। इसके अलावा, उपन्यास मौलिक तकनीकें हमें निश्चित और जीवित कोशिकाओं दोनों का उपयोग करके एकल-कोशिका संकल्प स्तर पर इन प्रक्रियाओं का अध्ययन करने की अनुमति देती हैं। यद्यपि इन तकनीकों का उपयोग विभिन्न जैविक प्रक्रियाओं का अध्ययन करने के लिए किया गया है, इसके बाद हम डीएनए मरम्मत, फ्लोरेसेंस इम्यूनोस्टेपिंग (आईएफ) और क्रोमेटिन इम्यूनोप्रिपिटेशन (सीआईपी) के क्षेत्र में सबसे व्यापक रूप से उपयोग किए जाने वाले प्रोटोकॉल प्रस्तुत करते हैं, जो एंडोक्यूक्लिज-आधारित साइट-विशिष्ट डीएनए क्षति के संयोजन में निर्देशित और विनियमित फैशन में डीएनए मरम्मत कारकों की जीनोमो अधिभोग की कल्पना करना और मात्रा निर्धारित करना संभव बनाते हैं। क्रमशः। ये तकनीकें शोधकर्ताओं को क्षतिग्रस्त जीनोमिक लोकस से बंधे उपन्यास प्रोटीन की पहचान करने के साथ-साथ डीएनए मरम्मत के दौरान उनके ठीक धुन नियमन के लिए आवश्यक उनके पोस्ट-ट्रांसलेशनल संशोधनों की पहचान करने के लिए शक्तिशाली उपकरण प्रदान करती हैं ।

Introduction

हमारे जीनोम को विभिन्न डीएनए हानिकारक एजेंटों द्वारा लगातार चुनौती दी जा रही है । ये हमले पर्यावरणीय स्रोतों से प्राप्त हो सकते हैं, जैसे यूवी प्रकाश या विकिरण, साथ ही अंतर्जात स्रोतों से, जैसे मेटाबोलिक बाय-उत्पाद ऑक्सीडेटिव तनाव या प्रतिकृति त्रुटियों के कारण1,2। ये घाव या तो एक या दोनों डीएनए किस्में की अखंडता को प्रभावित कर सकते हैं, और यदि उत्पन्न त्रुटियां लगातार हो जाती हैं, तो यह अक्सर ट्रांसलोकेशन और जीनोम अस्थिरता की ओर ले जाती है, जिसके परिणामस्वरूप ट्यूमरजीनेसिस3,4हो सकता है। जीनोम अखंडता को बनाए रखने के लिए, विकास के दौरान कई मरम्मत प्रणाली विकसित की गई हैं। डीएनए क्षति के विशिष्ट प्रकार के रासायनिक और भौतिक गुणों के अनुसार, कई मरम्मत तंत्र सक्रिय किया जा सकता है । बेमेल, ऑबेसिक साइटें, सिंगल-स्ट्रैंड ब्रेक, और 8-ऑक्सोगुइन (8-ऑक्सोग) को बेमेल मरम्मत या बेस-एक्सिशन रिपेयर पाथवे5,6द्वारा हटाया जा सकता है। यूवी-प्रेरित फोटोप्रोडक्ट्स और भारी-भरकम एडडक्ट्स के कारण होने वाले घावों की मरम्मत या तो न्यूक्लियोटाइड-एक्सिशन रिपेयर (एनईआर) या डीएनए डबल-स्ट्रैंड ब्रेक रिपेयर (डीएसबीआर) प्रक्रिया7,8द्वारा की जा सकती है। एनईआर में दो मुख्य उप-रास्ते होते हैं: ट्रांसक्रिप्शन-युग्मित एनईआर (टीसी-एनईआर) और वैश्विक जीनोमिक एनईआर (जीजी-एनईआर)। कोशिका चक्र चरण के बारे में, डीएनए डबल-स्ट्रैंड ब्रेक इंडक्शन के बाद, दो उप-मार्गों को सक्रिय किया जा सकता है: गैर-मुताबिक़ अंत में शामिल होना (एनएचईजे) और मुताबिक़ पुनर्संयोजन (एचआर)1,9। एनएचईजे, जो आराम कोशिकाओं में प्रमुख मार्ग है, सभी सेल चक्र चरणों में सक्रिय किया जा सकता है, जो एक तेज लेकिन त्रुटि-प्रवण मार्ग10का प्रतिनिधित्व करता है। दूसरी ओर, मानव संसाधन एक त्रुटि मुक्त मार्ग है, जिसमें डीएसबी की मरम्मत बहन क्रोमेटिड्स की अनुक्रम-होमोलॉजी खोज के आधार पर की जाती है, इसलिए यह मुख्य रूप से एस और जी-2 सेल चक्र चरणों11में मौजूद है। इसके अलावा, माइक्रोहोमोलॉजी-मध्यस्थता अंत में शामिल होने (MMEJ) एक और DSB मरम्मत तंत्र है, जो उपरोक्त लोगों से अलग है, जो एक KU70/80-और RAD51-स्वतंत्र तरीके से पहले से पुनः प्राप्त माइक्रोहोमोलॉगस दृश्यों के पुनः बंधन के आधार पर टूटा हुआ डीएनए समाप्त होता है । इसलिए, एमएमईजे को त्रुटि-प्रवण और अत्यधिक उत्परिवर्तनीय12माना जाता है। डीएनए मरम्मत के दौरान, डीएसबी डीएनए क्षति प्रतिक्रिया (डीडीआर) को प्रेरित कर सकते हैं, जिसके परिणामस्वरूप चेकपॉइंट किनासे की सक्रियता होती है जोमरम्मत13,14, 15के दौरान कोशिका चक्र कोरोकतीहै। डीडीआर को भर्ती और घावों के आसपास मरम्मत प्रक्रिया के सर्जक प्रमुख खिलाड़ियों के व्यापक प्रसार के जवाब के रूप में सक्रिय किया जाता है, जो मरम्मत फोकस के गठन में योगदान देता है। इस प्रारंभिक सिग्नलिंग झरना में, एटीएम (एटैक्सिया तेलंगिएसिया म्यूटेटेड) किनेज़ घाव16के आसपास सेर139 (जिसे γH2AX के रूप में संदर्भित) में हिस्टोन संस्करण एच2एक्स के फॉस्फोरिलेशन को उत्प्रेरित करके एक महत्वपूर्ण भूमिका निभाता है। यह प्रारंभिक घटना अतिरिक्त मरम्मत कारकों की भर्ती और डाउनस्ट्रीम मरम्मत प्रक्रियाओं की शुरुआत के लिए जिम्मेदार है। हालांकि मरम्मत फोकस में भर्ती प्रोटीन के सटीक कार्य को अभी तक पूरी तरह से विशेषता नहीं दी गई है, लेकिन मरम्मत फोसी के गठन और गतिशीलता की कई प्रयोगशालाओं द्वारा जांच की गई है। इन मार्कर बड़े पैमाने पर मरम्मत गतिज का पालन करने के लिए उपयोग किया जाता है, लेकिन मरम्मत प्रक्रिया के दौरान उनकी सटीक भूमिका मायावी बनी हुई है। डीएनए मरम्मत से संबंधित सेलुलर प्रक्रियाओं की बहुत महत्व अभी तक खराब समझ के कारण, डीडीआर को प्रेरित करने और कल्पना करने के लिए अब तक कई तरीके विकसित किए गए हैं।

वांछित प्रकार के डीएनए क्षति को प्रेरित करने के लिए विभिन्न तरीकों और प्रणालियों की स्थापना की गई है । उदाहरण के लिए, कुछ एजेंटों [जैसे नियोकार्ज़िनोस्टैटिन (एनसीएस), फ्लेमोमाइसिन, ब्लेओमाइसिन, γ-विकिरण, यूवी] गैर-भविष्य कहनेवाला जीनोमिक पदों पर बड़ी संख्या में यादृच्छिक डीएनए ब्रेक को प्रेरित कर सकता है, जबकि अन्य (एंडोन्यूक्लिस, जैसे एएसआईएसआई, आई-पीपीओआई या आई-टीसीआई, साथ ही लेजर स्ट्रिपिंग) ज्ञात जीनोमिक लोकी17,18,19,20, 21पर डीएनए ब्रेक को प्रेरित कर सकते हैं। यहां, हम वर्तमान में स्तनधारी और खमीर कोशिकाओं में डीडीआर का अध्ययन करने के लिए उपयोग की जाने वाली एंडोक्यूलेज-आधारित तकनीकों पर ध्यान केंद्रित करते हैं। इन तकनीकों के सिद्धांतों को उजागर करने के अलावा, हम उनके फायदे और नुकसान दोनों पर जोर देते हैं।

Protocol

1. विशिष्ट प्रोटीन का इम्यूनोडेटेक्शन सेल कल्चर और प्रायोगिक सेटअप की तैयारी डीएमईएम संस्कृति माध्यम में मोनोलेयर्स में U2OS कोशिकाओं को बनाए रखें 10% भ्रूण बछड़ा सीरम, 2 mM ग्लूटामाइन, और 1% एंट…

Representative Results

कोशिकाओं में साइट-निर्देशित डीएसबी-प्रेरित मरम्मत प्रक्रियाओं का अध्ययन स्थिर या क्षणिक ट्रांसफैक्शन के माध्यम से प्राप्त किया जा सकता है। हालांकि, यह ध्यान दिया जाना चाहिए कि स्थिर ट्रांसफैक्शन ए?…

Discussion

हालांकि डीएनए की मरम्मत एक अपेक्षाकृत हाल ही में अनुसंधान क्षेत्र है, हमारे ज्ञान तेजी से विभिन्न जैव रासायनिक और सूक्ष्म तरीकों की मदद से विस्तार हो रहा है। आनुवंशिक जानकारी को संरक्षित करना कोशिका?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस शोध को राष्ट्रीय अनुसंधान, विकास और नवाचार कार्यालय अनुदान GINOP-2.3.2-15-2016-00020 द्वारा वित्त पोषित किया गया था, GINOP-2.3.2-15-2016-00036, GINOP-2.2.1-15-2017-00052, EFOP 3.6.3-VEKOP-16-2017-00009, NKFI-FK 132080, हंगरी एकेडमी ऑफ साइंसेज बो/27/20, ÚNKP-20-5-SZTE-265, EMBO अल्पकालिक फैलोशिप ८५१३, और टेम्पस फाउंडेशन के János Bolyai अनुसंधान छात्रवृत्ति ।

Materials

4-OHT Sigma Aldrich H7904
Agarose Lonza 50004
Antibiotic-Antimycotic Solution (100×), Stabilized Sigma Aldrich A5955
Anti-gamma H2A.X (phospho S139) antibody Abcam ab26350
Bovine Serum Fraction V albumin Biosera PM-T1725
TrackIt™ Cyan/Yellow Loading Buffer Thermo Fisher Scientific 10482035
DMEM with 1.0 g/L Glucose, without L-Glutamine Lonza 12-707F
Doxycycline Sigma Aldrich D9891
Dynabeads™ M-280 Sheep Anti-Mouse IgG Invitrogen 11202D
Dynabeads™ M-280 Sheep Anti-Rabbit IgG Invitrogen 11204D
EDTA Sigma Aldrich E6758
EGTA Sigma Aldrich E3889
Ethanol Molar Chemicals 02910-101-340
Fetal Bovine Serum (South America Origin), EU-approved Gibco ECS0180L
Formaldehyde 37% solution free from acid Sigma Aldrich 1.03999
GlutaMAX™ Supplement Thermo Fisher Scientific 35050038
Glycine Sigma Aldrich 50046
IPure kit v2 Diagenode C03010015
Isoamyl alcohol Sigma Aldrich W205702
LiCl Sigma Aldrich L9650
NaCl Sigma Aldrich S5886
Na-DOC Sigma Aldrich D6750
NaHCO3 Sigma Aldrich S5761
Neocarzinostatin from Streptomyces carzinostaticus Sigma Aldrich N9162
NP-40 Sigma Aldrich I8896
PBS Powder without Ca2+, Mg2+ Sigma Aldrich L182-50-BC
Phenol Sigma Aldrich P4557
PIPES Sigma Aldrich P1851
Polysorbate 20 (Tween 20) Molar Chemicals 09400-203-190
KCl Sigma Aldrich P5405
ProLong™ Gold Antifade Mountant with DAPI Thermo Fisher Scientific P36935
Protease Inhibitor Cocktail Set I Roche 11873580001
Proteinase K Sigma Aldrich P2308
P-S2056 DNAPKcs antibody Abcam ab18192
RNase A Roche 10109169001
CH3COONa Sigma Aldrich S2889
SDS Sigma Aldrich L3771
Tris Acetate-EDTA buffer Sigma Aldrich T6025
Tris-HCl Sigma Aldrich 91228
TRITON X-100 Molar Chemicals 09370-006-340
Trypsin from porcine pancreas Sigma Aldrich T4799
Trypsin-EDTA (0.5%), no phenol red Gibco 15400054

Riferimenti

  1. Borsos, B. N., Majoros, H., Pankotai, T. Ubiquitylation-Mediated Fine-Tuning of DNA Double-Strand Break Repair. Cancers (Basel). 12 (6), (2020).
  2. Borsos, B. N., Majoros, H., Pankotai, T. Emerging Roles of Post-Translational Modifications in Nucleotide Excision Repair. Cells. 9 (6), (2020).
  3. Stephens, P. J., et al. The landscape of cancer genes and mutational processes in breast cancer. Nature. 486 (7403), 400-404 (2012).
  4. Turnbull, C., et al. Gene-gene interactions in breast cancer susceptibility. Human Molecular Genetics. 21 (4), 958-962 (2012).
  5. Saxowsky, T. T., Meadows, K. L., Klungland, A., Doetsch, P. W. 8-Oxoguanine-mediated transcriptional mutagenesis causes Ras activation in mammalian cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (48), 18877-18882 (2008).
  6. Jiricny, J. The multifaceted mismatch-repair system. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 7 (5), 335-346 (2006).
  7. Hanawalt, P. C., Spivak, G. Transcription-coupled DNA repair: two decades of progress and surprises. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 9 (12), 958-970 (2008).
  8. Kanaar, R., Wyman, C., Rothstein, R. Quality control of DNA break metabolism: in the ‘end’, it’s a good thing. EMBO Journal. 27 (4), 581-588 (2008).
  9. Lemaitre, C., et al. Nuclear position dictates DNA repair pathway choice. Genes & Development. 28 (22), 2450-2463 (2014).
  10. Lieber, M. R. The mechanism of double-strand DNA break repair by the nonhomologous DNA end-joining pathway. Annual Review of Biochemistry. 79, 181-211 (2010).
  11. Lambert, S., Lopez, B. S. Characterization of mammalian RAD51 double strand break repair using non-lethal dominant-negative forms. EMBO Journal. 19 (12), 3090-3099 (2000).
  12. Xu, S., et al. p300-mediated acetylation of histone demethylase JMJD1A prevents its degradation by ubiquitin ligase STUB1 and enhances its activity in prostate cancer. Ricerca sul cancro. , (2020).
  13. Kastan, M. B., Bartek, J. Cell-cycle checkpoints and cancer. Nature. 432 (7015), 316-323 (2004).
  14. Roy, R., Chun, J., Powell, S. N. BRCA1 and BRCA2: different roles in a common pathway of genome protection. Nature Reviews Cancer. 12 (1), 68-78 (2011).
  15. Krenning, L., vanden Berg, J., Medema, R. H. Life or Death after a Break: What Determines the Choice. Molecular Cell. 76 (2), 346-358 (2019).
  16. Rogakou, E. P., Pilch, D. R., Orr, A. H., Ivanova, V. S., Bonner, W. M. DNA double-stranded breaks induce histone H2AX phosphorylation on serine 139. Journal of Biological Chemistry. 273 (10), 5858-5868 (1998).
  17. Caron, P., et al. WWP2 ubiquitylates RNA polymerase II for DNA-PK-dependent transcription arrest and repair at DNA breaks. Genes & Development. 33 (11-12), 684-704 (2019).
  18. Caron, P., et al. Cohesin protects genes against gammaH2AX Induced by DNA double-strand breaks. PLoS Genetics. 8 (1), 1002460 (2012).
  19. Berkovich, E., Monnat, R. J., Kastan, M. B. Assessment of protein dynamics and DNA repair following generation of DNA double-strand breaks at defined genomic sites. Nature Protocols. 3 (5), 915-922 (2008).
  20. Paques, F., Duchateau, P. Meganucleases and DNA double-strand break-induced recombination: perspectives for gene therapy. Current Gene Therapy. 7 (1), 49-66 (2007).
  21. Pankotai, T., Bonhomme, C., Chen, D., Soutoglou, E. DNAPKcs-dependent arrest of RNA polymerase II transcription in the presence of DNA breaks. Nature Structural & Molecular Biology. 19 (3), 276-282 (2012).
  22. Iacovoni, J. S., et al. High-resolution profiling of gammaH2AX around DNA double strand breaks in the mammalian genome. EMBO Journal. 29 (8), 1446-1457 (2010).
  23. Poinsignon, C., et al. Phosphorylation of Artemis following irradiation-induced DNA damage. European Journal of Immunology. 34 (11), 3146-3155 (2004).
  24. Varga, D., Majoros, H., Ujfaludi, Z., Erdelyi, M., Pankotai, T. Quantification of DNA damage induced repair focus formation via super-resolution dSTORM localization microscopy. Nanoscale. 11 (30), 14226-14236 (2019).
  25. Kim, J. A., Kruhlak, M., Dotiwala, F., Nussenzweig, A., Haber, J. E. Heterochromatin is refractory to gamma-H2AX modification in yeast and mammals. Journal of Cell Biology. 178 (2), 209-218 (2007).
  26. Daniels, D. L., Urh, M. Isolation of intracellular protein–DNA complexes using HaloCHIP, an antibody-free alternative to chromatin immunoprecipitation. Methods in Molecular Biology. 977, 111-124 (2013).
check_url/it/62175?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Pantazi, V., Berzsenyi, I., Borsos, B. N., Pankotai, T. Visualizing and Quantifying Endonuclease-Based Site-Specific DNA Damage. J. Vis. Exp. (174), e62175, doi:10.3791/62175 (2021).

View Video