Summary

पतली परत क्रोमेटोग्राफी द्वारा माइकोबैक्टीरिया की लिपिड संरचना का विश्लेषण

Published: April 16, 2021
doi:

Summary

माइकोबैक्टीरिया की एक विस्तृत श्रृंखला की सेल दीवार की कुल लिपिड सामग्री निकालने के लिए एक प्रोटोकॉल प्रस्तुत किया जाता है। इसके अलावा, विभिन्न प्रकार के माइकोलिक एसिड के निष्कर्षण और विश्लेषणात्मक प्रोटोकॉल दिखाए जाते हैं। इन माइकोबैक्टीरियल यौगिकों की निगरानी के लिए एक पतली परत क्रोमेटोग्राफिक प्रोटोकॉल भी प्रदान किया जाता है।

Abstract

माइकोबैक्टीरिया प्रजातियां विकास की दर, पिगमेंटेशन की उपस्थिति, ठोस मीडिया पर प्रदर्शित कॉलोनी आकृति विज्ञान, साथ ही अन्य फेनोटाइपिक विशेषताओं में एक-दूसरे से भिन्न हो सकती हैं। हालांकि, वे सभी आम में माइकोबैक्टीरिया के सबसे प्रासंगिक चरित्र हैं: इसकी अनूठी और अत्यधिक हाइड्रोफोबिक सेल दीवार। माइकोबैक्टीरिया प्रजातियों में झिल्ली-सहसंयोजक लिंक्ड कॉम्प्लेक्स होता है जिसमें अरबिनोगालेक्टन, पेप्टिडोग्लाइकन और माइकोलिक एसिड की लंबी श्रृंखला शामिल होती है, जो माइकोबैक्टीरिया प्रजातियों के बीच भिन्न होती है। इसके अतिरिक्त, माइकोबैक्टीरिया लिपिड का उत्पादन भी कर सकता है जो उनकी कोशिका सतहों पर स्थित हैं, गैर-सहसंयोजक रूप से जुड़े हुए हैं, जैसे कि फथियोसेरोल डिमिकोसेरोसेट (पीडीआईएम), फिनोलिक ग्लाइकोक्लिपिड्स (पीजीएल), ग्लाइकोपेप्टिडोक्लिपिड्स (जीपीएल), अकिल्ट्रेहलोस (एए) या फोस्फेटिडिल-इनोसिटॉल मैनसाइडो (पीआईएसएम), दूसरों के बीच। उनमें से कुछ को रोगजनक माइकोबैक्टीरिया में उग्रता कारक माना जाता है, या मेजबान-माइकोबैक्टीरिया इंटरैक्शन में महत्वपूर्ण एंटीजेनिक लिपिड। इन कारणों से, कई क्षेत्रों में उनके आवेदन के कारण माइकोबैक्टीरियल लिपिड के अध्ययन में महत्वपूर्ण रुचि है, माइकोबैक्टीरिया संक्रमणों की रोगजनकता में उनकी भूमिका को समझने से, संक्रामक रोगों और कैंसर जैसी अन्य विकृतियों के उपचार के लिए इम्यूनोमोडुलेटरी एजेंटों के रूप में संभावित प्रभाव तक। यहां, कुल लिपिड सामग्री को निकालने और विश्लेषण करने के लिए एक सरल दृष्टिकोण और कार्बनिक सॉल्वैंट्स के मिश्रण का उपयोग करके एक ठोस माध्यम में उगाई जाने वाली माइकोबैक्टीरिया कोशिकाओं की माइकोलिक एसिड संरचना प्रस्तुत की जाती है। एक बार लिपिड अर्क प्राप्त हो जाने के बाद, निकाले गए यौगिकों की निगरानी के लिए पतली परत क्रोमेटोग्राफी (टीएलसी) किया जाता है। उदाहरण प्रयोग चार अलग-अलग माइकोबैक्टीरिया के साथ किया जाता है: पर्यावरण तेजी से बढ़ते माइकोलिसिबैक्टीरियम ब्रूमे और माइकोलिसिबैक्टीरियम फोर्टुइटम, तनु धीमी गति से बढ़ते माइकोबैक्टीरियम बोविस बैसिलस कैलमेट-गुएरिन (बीसीजी), और अवसरवादी रोगजनक तेजी से बढ़ते माइकोबैक्टीरियम फोड़ा, यह प्रदर्शित करता है कि वर्तमान प्रोटोकॉल में दिखाए गए तरीकों का उपयोग माइकोबैक्टीरिया की एक विस्तृत श्रृंखला के लिए किया जा सकता है।

Introduction

Mycobacterium एक जीनस है जिसमें रोगजनक और गैर-रोगजनक प्रजातियां शामिल हैं, जो उनके अजीब लिपिड द्वारा गठित अत्यधिक हाइड्रोफोबिक और अभेद्य कोशिका दीवार होने की विशेषता है। विशेष रूप से, माइकोबैक्टीरियल सेल वॉल में माइकोलिक एसिड होता है, जो α-alkyl और β-हाइड्रोक्सी फैटी एसिड हैं, जिसमें α-शाखा सभी माइकोलिक एसिड (लंबाई को छोड़कर) में स्थिर है और β-श्रृंखला, जिसे मेरोमायकोलेट चेन कहा जाता है, एक लंबी एलिफेटिक चेन है जिसमें साहित्य के साथ वर्णित विभिन्न कार्यात्मक रासायनिक समूह हो सकते हैं (α-, α’, मेथॉक्सी इसलिए सात प्रकार के माइकोलिक एसिड (आई-VII) का उत्पादन करते हैं, एपॉक्सी-, कार्बोक्सी-, और ω-1-मेथॉक्सी-माइकोलेट्स, इसलिए सात प्रकार के माइकोलिक एसिड का उत्पादन करते हैं1. इसके अलावा, साइबर महत्व वाले अन्य लिपिड भी माइकोबैक्टीरिया प्रजातियों की सेल दीवार में मौजूद हैं। रोगजनक प्रजातियां जैसे Mycobacterium tuberculosis, तपेदिक का कारक एजेंट2 विशिष्ट लिपिड-आधारित उग्रता कारकों जैसे कि फेथियोसेरोल डिमिकोसेरोसेट (पीडीआईएम), फेनोलिक ग्लाइकोलिपिड (पीजीएल), डी-, त्रि-और पेंटा-एकिलट्रेहलोस (डैट, टीएटी, और पैट), या सल्फोलिपिड्स का उत्पादन करें।3. माइकोबैक्टीरियल सतह पर उनकी उपस्थिति मेजबान प्रतिरक्षा प्रतिक्रिया को संशोधित करने की क्षमता के साथ जुड़ी हुई है और इसलिए, मेजबान के अंदर माइकोबैक्टीरियम का विकास और दृढ़ता4. उदाहरण के लिए, ट्राइसिलग्लिसेरोल (टैग) की उपस्थिति वंश 2-बीजिंग उप-वंश के हाइपरवायरुलेंट फेनोटाइप के साथ जुड़ी हुई है M. tuberculosis, संभवतः मेजबान प्रतिरक्षा प्रतिक्रिया को कम करने की अपनी क्षमता के कारण5,6. अन्य प्रासंगिक लिपिड तपेदिक और गैर-ट्यूबरकस माइकोबैक्टीरिया में मौजूद लिपूलिगोसाकराइड्स (एलओएस) हैं। के मामले में Mycobacterium marinum, इसकी सेल दीवार में LOSs की उपस्थिति फिसलने गतिशीलता और बायोफिल्म बनाने की क्षमता से संबंधित है और मैक्रोफेज पैटर्न मान्यता रिसेप्टर्स द्वारा मान्यता के साथ हस्तक्षेप करती है, जो मेजबान फैगोसाइट्स द्वारा बैक्टीरिया को तेज और उन्मूलन को प्रभावित करती है7,8. इसके अतिरिक्त, कुछ लिपिड की अनुपस्थिति या उपस्थिति मेजबान कोशिकाओं के साथ बातचीत करते समय उग्र या क्षीण प्रोफाइल के साथ विभिन्न मॉर्फोटाइप में वर्गीकृत होने की अनुमति देती है। उदाहरण के लिए, किसी न किसी मॉर्फोटाइप में ग्लाइकोपिप्टिडोक्लिपिड्स (जीपीएल) की अनुपस्थिति Mycobacterium abscessus इंट्राफागोसोमल एसिडिफिकेशन को प्रेरित करने की क्षमता से जुड़ा हुआ है, और इसके परिणामस्वरूप सेल एपोप्टोसिस9, चिकनी मॉर्फोटाइप के विपरीत जो उनकी सतह में जीपीएलएस के पास होता है। इसके अलावा, माइकोबैक्टीरियल सेल वॉल की लिपिड सामग्री मेजबान में प्रतिरक्षा प्रतिक्रिया को संशोधित करने की क्षमता से संबंधित है। यह विभिन्न विकृतियों के खिलाफ एक सुरक्षात्मक प्रतिरक्षा प्रोफ़ाइल को ट्रिगर करने के लिए कुछ माइकोबैक्टीरिया का उपयोग करने के संदर्भ में प्रासंगिक है10,11,12,13उदाहरण के लिए, यह प्रदर्शित किया गया है कि Mycolicibacterium vaccae, एक सैप्रोफाइटिक माइकोबैक्टीरियम, जो वर्तमान में तपेदिक के लिए इम्यूनोथेराप्यूटिक वैक्सीन के रूप में तीसरे चरण के नैदानिक परीक्षणों में है, दो औपनिवेशिक मॉर्फोटाइप प्रदर्शित करता है। जबकि चिकनी फेनोटाइप, जिसमें इसकी सतह में एक पॉलिएस्टर होता है, Th2 प्रतिक्रिया को ट्रिगर करता है, पॉलिएस्टर से रहित मोटा फेनोटाइप एक Th1 प्रोफ़ाइल को प्रेरित कर सकता है जब यह मेजबान प्रतिरक्षा कोशिकाओं के साथ बातचीत करता है14. माइकोबैक्टीरियल सेल में मौजूद लिपिड का प्रदर्शनों की सूची न केवल माइकोबैक्टीरिया प्रजातियों पर निर्भर करती है, बल्कि माइकोबैक्टीरियल संस्कृतियों की स्थितियों पर भी निर्भर करती है: समय इनक्यूबेशन15,16 या संस्कृति माध्यम की संरचना17,18. वास्तव में, संस्कृति माध्यम संरचना में परिवर्तन एंटीट्यूमर और इम्यूनोस्टिमुलेटरी गतिविधि को प्रभावित करते हैं M. bovis बीसीजी और Mycolicibacterium brumae in vitro17. इसके अलावा, सुरक्षात्मक प्रतिरक्षा प्रोफ़ाइल से शुरू M. bovis बीसीजी के खिलाफ M. tuberculosis चूहों मॉडल में चुनौती भी संस्कृति मीडिया जिसमें M. bovis बीसीजी बढ़ता है17. ये तब प्रत्येक संस्कृति स्थिति में माइकोबैक्टीरिया की लिपिड संरचना से संबंधित हो सकते हैं। इन सभी कारणों से, माइकोबैक्टीरिया की लिपिड सामग्री का अध्ययन प्रासंगिक है। माइकोबैक्टीरियल सेल दीवार की लिपिड संरचना को निकालने और विश्लेषण करने के लिए एक दृश्य प्रक्रिया प्रस्तुत की गई है।

Protocol

1. माइकोबैक्टीरिया से कुल गैर-सहसंयोजक-लिंक्ड्स कानिष्कर्षण (चित्रा 1) एक ठोस मीडिया से माइकोबैक्टीरिया के स्क्रैच 0.2 ग्राम और पॉलीटट्राफ्लोरोएथलीन (पीटीएफई) लाइनर स्क्रू कैप के साथ एक ग?…

Representative Results

विभिन्न माइकोबैक्टीरिया प्रजातियों में मौजूद लिपिड की एक विस्तृत श्रृंखला दिखाने के उद्देश्य से, एम बोविस बीसीजी को चुना गया क्योंकि यह किसी न किसी और धीमी गति से बढ़ने वाला माइकोबैक्टीरिया है। इ…

Discussion

माइकोबैक्टीरियल सेल दीवार से गैर-सहावता से जुड़े लिपिड यौगिकों को निकालने के लिए सोने के मानक विधि के रूप में माना जाने वाला एक सरल प्रोटोकॉल प्रस्तुत किया जाता है। चार अलग-अलग माइकोबैक्टीरिया के निक?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस शोध को स्पेन के विज्ञान, नवाचार और विश्वविद्यालय मंत्रालय (RTI2018-098777-B-I00), फेडरर फंड्स और जनरलिट ऑफ कैटालुन्या (2017SGR-229) द्वारा वित्त पोषित किया गया था। सैंड्रा गुल्लार-गार्रिडो जनरलिट डी कैटालुन्या से पीएचडी कॉन्ट्रैक्ट (एफआई) की प्राप्तकर्ता हैं ।

Materials

Acetic Acid Merck 100063 CAUTION. Anhydrous for analysis EMSURE® ACS,ISO,Reag. Ph Eur
Acetone Carlo Erba 400971N CAUTION. ACETONE RPE-ACS-ISO FOR ANALYS ml 1000
Anthrone Merck 8014610010 Anthrone for synthesis.
Benzene Carlo Erba 426113 CAUTION. Benzene RPE – For analysis – ACS 2.5 l
Capillary glass tube Merck BR708709 BRAND® disposable BLAUBRAND® micropipettes, intraMark
Chloroform Carlo Erba 412653 CAUTION. Chloroform RS – For HPLC – Isocratic grade – Stabilized with ethanol 2.5 L
Dry block heater J.P. Selecta 7471200
Dicloromethane Carlo Erba 412622 CAUTION. Dichloromethane RS – For HPLC – Isocratic grade – Stabilized with amylene 2.5 L
Diethyl ether Carlo Erba 412672 CAUTION. Diethyl ether RS – For HPLC – Isocratic grade – Not stabilized 2.5 L
Ethyl Acetate Panreac 1313181211 CAUTION. Ethyl acetate (Reag. USP, Ph. Eur.) for analysis, ACS, ISO
Ethyl Alcohol Absolute Carlo Erba 4146072 CAUTION. Ethanol absolute anhydrous RPE – For analysis – ACS – Reag. Ph.Eur. – Reag. USP 1 L
Glass funnel VidraFOC DURA.2133148 1217/1
Glass tube VidraFOC VFOC.45066A-16125 Glass tube with PTFE recovered cap
Methanol Carlo Erba 412722 CAUTION. Methanol RS – For HPLC – GOLD – Ultragradient grade 2.5 L
Molybdatophosphoric acid hydrate Merck 51429-74-4 CAUTION.
Molybdenum Blue Spray Reagent, 1.3% Sigma M1942-100ML CAUTION.
n-hexane Carlo Erba 446903 CAUTION. n-Hexane 99% RS – ATRASOL – For traces analysis 2.5 L
n-nitroso-n-methylurea Sigma N4766 CAUTION
Orbital shaking platform DDBiolab 995018 NB-205L benchtop shaking incubator
Petroleum ether (60-80ºC) Carlo Erba 427003 CAUTION. Petroleum ether 60 – 80°C RPE – For analysis 2.5 L
Sprayer VidraFOC 712/1
Sodium sulphate anhydrous Merck 238597
Sulfuric acid 95-97% Merck 1007311000 CAUTION. Sulfuric acid 95-97%
TLC chamber Merck Z204226-1EA Rectangular TLC developing tanks, complete L × H × W 22 cm × 22 cm × 10 cm
TLC plate Merck 1057210001 TLC SilicaGel 60- 20×20 cm x 25 u
TLC Plate Heater CAMAG 223306 CAMAG TLC Plat Heater III
Toluene Carlo Erba 488551 CAUTION. Toluene RPE – For analysis – ISO – ACS – Reag.Ph.Eur. – Reag.USP 1 L
Vortex Fisher Scientific 10132562 IKA Agitador IKA vórtex 3
1-naphthol Sigma-Aldrich 102269427 CAUTION.

Riferimenti

  1. Watanabe, M., et al. Location of functional groups in mycobacterial meromycolate chains; the recognition of new structural principles in mycolic acids. Microbiology. 148 (6), 1881-1902 (2002).
  2. Global Health Organization World Health Organization. (2018) Global tuberculosis report. WHO. , (2019).
  3. Jackson, M. The Mycobacterial cell envelope-lipids. Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine. 4 (10), 1-36 (2014).
  4. Jankute, M., et al. The role of hydrophobicity in tuberculosis evolution and pathogenicity. Scientific Reports. 7 (1), 1315 (2017).
  5. Reed, M. B., Gagneux, S., DeRiemer, K., Small, P. M., Barry, C. E. The W-Beijing lineage of Mycobacterium tuberculosis overproduces triglycerides and has the DosR dormancy regulon constitutively upregulated. Journal of Bacteriology. 189 (7), 2583-2589 (2007).
  6. Ly, A., Liu, J. Mycobacterial virulence factors: Surface-exposed lipids and secreted proteins. International Journal of Molecular Sciences. 21 (11), 3985 (2020).
  7. Szulc-Kielbik, I., et al. Severe inhibition of lipooligosaccharide synthesis induces TLR2-dependent elimination of Mycobacterium marinum from THP1-derived macrophages. Microbial Cell Factories. 16 (1), 217 (2017).
  8. Ren, H., et al. Identification of the lipooligosaccharide biosynthetic gene cluster from Mycobacterium marinum. Molecular Microbiology. 63 (5), 1345-1359 (2007).
  9. Roux, A. L., et al. The distinct fate of smooth and rough Mycobacterium abscessus variants inside macrophages. Open Biology. 6 (11), 160185 (2016).
  10. Guallar-Garrido, S., Julián, E. Bacillus Calmette-Guérin (BCG) therapy for bladder cancer: An update. ImmunoTargets and Therapy. 9, 1-11 (2020).
  11. Bach-Griera, M., et al. Mycolicibacterium brumae is a safe and non-toxic immunomodulatory agent for cancer treatment. Vaccines. 8 (2), 2-17 (2020).
  12. Noguera-Ortega, E., et al. Nonpathogenic Mycobacterium brumae inhibits bladder cancer growth in vitro, ex vivo, and in vivo. European Urology Focus. 2 (1), 67-76 (2015).
  13. Noguera-Ortega, E., et al. Mycobacteria emulsified in olive oil-in-water trigger a robust immune response in bladder cancer treatment. Scientific Reports. 6, 27232 (2016).
  14. Rodríguez-Güell, E., et al. The production of a new extracellular putative long-chain saturated polyester by smooth variants of Mycobacterium vaccae interferes with Th1-cytokine production. Antonie van Leeuwenhoek. 90, 93-108 (2006).
  15. Garcia-Vilanova, A., Chan, J., Torrelles, J. B. Underestimated manipulative roles of Mycobacterium tuberculosis cell envelope glycolipids during infection. Frontiers in Immunology. 10, (2019).
  16. Yang, L., et al. Changes in the major cell envelope components of Mycobacterium tuberculosis during in vitro growth. Glycobiology. 23 (8), 926-934 (2013).
  17. Guallar-Garrido, S., Campo-Pérez, V., Sánchez-Chardi, A., Luquin, M., Julián, E. Each mycobacterium requires a specific culture medium composition for triggering an optimized immunomodulatory and antitumoral effect. Microorganisms. 8 (5), 734 (2020).
  18. Venkataswamy, M. M., et al. et al. In vitro culture medium influences the vaccine efficacy of Mycobacterium bovis BCG. Vaccine. 30 (6), 1038-1049 (2012).
  19. Secanella-Fandos, S., Luquin, M., Pérez-Trujillo, M., Julián, E. Revisited mycolic acid pattern of Mycobacterium confluentis using thin-layer chromatography. Journal of Chromatography B. 879, 2821-2826 (2011).
  20. Minnikin, D. E., et al. Analysis of mycobacteria mycolic acids. Topics in Lipid Research: From Structural Elucidation to Biological Function. , 139-143 (1986).
  21. Minnikin, D. E., Hutchinson, I. G., Caldicott, A. B., Goodfellow, M. Thin-layer chromatography of methanolysates of mycolic acid-containing bacteria. Journal of Chromatography A. 188 (1), 221-233 (1980).
  22. Minnikin, D. E., Goodfellow, M. Lipid composition in the classification and identification of acid-fast bacteria. Society for Applied Bacteriology Symposium Series. 8, 189-256 (1980).
  23. Muñoz, M., et al. Occurrence of an antigenic triacyl trehalose in clinical isolates and reference strains of Mycobacterium tuberculosis. FEMS Microbiology Letters. 157 (2), 251-259 (1997).
  24. Daffé, M., Lacave, C., Lanéelle, M. A., Gillois, M., Lanéelle, G. Polyphthienoyl trehalose, glycolipids specific for virulent strains of the tubercle bacillus. European Journal of Biochemistry. 172 (3), 579-584 (1988).
  25. Singh, P., et al. Revisiting a protocol for extraction of mycobacterial lipids. International Journal of Mycobacteriology. 3 (3), 168-172 (2014).
  26. Camacho, L. R., et al. Analysis of the phthiocerol dimycocerosate locus of Mycobacterium tuberculosis. Evidence that this lipid is involved in the cell wall permeability barrier. Journal of Biological Chemistry. 276 (23), 19845-19854 (2001).
  27. Dhariwal, K. R., Chander, A., Venkitasubramanian, T. A. Alterations in lipid constituents during growth of Mycobacterium smegmatis CDC 46 and Mycobacterium phlei ATCC 354. Microbios. 16 (65-66), 169-182 (1976).
  28. Chandramouli, V., Venkitasubramanian, T. A. Effect of age on the lipids of mycobacteria. Indian Journal of Chest Diseases & Allied Sciences. 16, 199-207 (1982).
  29. Hameed, S., Sharma, S., Fatima, Z. Techniques to understand mycobacterial lipids and use of lipid-based nanoformulations for tuberculosis management. NanoBioMedicine. , (2020).
  30. Folch, J., Lees, M., Sloane Stanley, G. H. A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues. The Journal of Biological Chemistry. 226 (1), 497-509 (1957).
  31. Pal, R., Hameed, S., Kumar, P., Singh, S., Fatima, Z. Comparative lipidome profile of sensitive and resistant Mycobacterium tuberculosis strain. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences. 1 (1), 189-197 (2015).
  32. Slayden, R. A., Barry, C. E. Analysis of the lipids of Mycobacterium tuberculosis. Mycobacterium tuberculosis Protocols. 54, 229-245 (2001).
  33. Ojha, A. K., et al. Growth of Mycobacterium tuberculosis biofilms containing free mycolic acids and harbouring drug-tolerant bacteria. Molecular Microbiology. 69 (1), 164-174 (2008).
  34. Ojha, A. K., Trivelli, X., Guerardel, Y., Kremer, L., Hatfull, G. F. Enzymatic hydrolysis of trehalose dimycolate releases free mycolic acids during mycobacterial growth in biofilms. The Journal of Biological Chemistry. 285 (23), 17380-17389 (2010).
  35. Layre, E., et al. Mycolic acids constitute a scaffold for mycobacterial lipid antigens stimulating CD1-restricted T cells. Chemistry and Biology. 16 (1), 82-92 (2009).
  36. Llorens-Fons, M., et al. Trehalose polyphleates, external cell wall lipids in Mycobacterium abscessus, are associated with the formation of clumps with cording morphology, which have been associated with virulence. Frontiers in Microbiology. 8, (2017).
  37. Butler, W. R., Guthertz, L. S. Mycolic acid analysis by high-performance liquid chromatography for identification of mycobacterium species. Clinical Microbiology Reviews. 14 (4), 704-726 (2001).
  38. Teramoto, K., et al. Characterization of mycolic acids in total fatty acid methyl ester fractions from Mycobacterium species by high resolution MALDI-TOFMS. Mass Spectrometry. 4 (1), 0035 (2015).
  39. Sartain, M. J., Dick, D. L., Rithner, C. D., Crick, D. C., Belisle, J. T. Lipidomic analyses of Mycobacterium tuberculosis based on accurate mass measurements and the novel “Mtb LipidDB”. Journal of Lipid Research. 52 (5), 861-872 (2011).
  40. Li, M., Zhou, Z., Nie, H., Bai, Y., Liu, H. Recent advances of chromatography and mass spectrometry in lipidomics. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 399 (1), 243-249 (2011).
  41. Nahar, A., Baker, A. L., Nichols, D. S., Bowman, J. P., Britz, M. L. Application of Thin-Layer Chromatography-Flame Ionization Detection (TLC-FID) to total lipid quantitation in mycolic-acid synthesizing Rhodococcus and Williamsia species. International Journal of Molecular Sciences. 21 (5), 1670 (2020).
check_url/it/62368?article_type=t

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Citazione di questo articolo
Guallar-Garrido, S., Luquin, M., Julián, E. Analysis of the Lipid Composition of Mycobacteria by Thin Layer Chromatography. J. Vis. Exp. (170), e62368, doi:10.3791/62368 (2021).

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