Summary

In vitro Analys av E3 Ubiquitin Ligase Funktion

Published: May 14, 2021
doi:

Summary

Denna studie ger detaljerade in vitro ubiquitylation analys protokoll för analys av E3 ubiquitin ligase katalytisk aktivitet. Rekombinanta proteiner uttrycktes med hjälp av prokaryota system såsom Escherichia coli kultur.

Abstract

Den kovalenta fastsättningen av ubiquitin (Ub) till inre lysinrester av ett substratprotein, en process som kallas allestädes närvarande, representerar en av de viktigaste post-translationella modifieringarna i eukaryota organismer. Ubiquitylation medieras av en sekventiell kaskad av tre enzymklasser inklusive ubiquitinaktiverande enzymer (E1 enzymer), ubiquitinkonjugerande enzymer (E2-enzymer) och ubiquitinligaser (E3-enzymer), och ibland ubiquitin-kedjan långsträckningsfaktorer (E4 enzymer). Här tillhandahålls in vitro-protokoll för allestädes närvarande analyser, som möjliggör bedömning av E3 ubiquitin ligase verksamhet, samarbetet mellan E2-E3-par och substratval. Samarbetande E2-E3-par kan screenas genom övervakning av generering av fria poly-ubiquitinkedjor och/eller automatisk allestädes närvarande inge av E3-ligasen. Substrat ubiquitylation definieras genom selektiv bindning av E3 ligase och kan detekteras genom western blotting av in vitro reaktionen. Dessutom beskrivs en E2~Ub-avslutningsanalys, vilket är ett användbart verktyg för direkt bedömning av funktionellt E2-E3-samarbete. Här följs den E3-beroende överföringen av ubiquitin från motsvarande E2-enzym till fria lysin aminosyror (härma substrat ubiquitylation) eller inre lysin i själva E3-ligasen (auto-ubiquitylation). Sammanfattningsvis tillhandahålls tre olika in vitro-protokoll som är snabba och enkla att utföra för att hantera E3 ligase katalytisk funktionalitet.

Introduction

Ubiquitylation är den process genom vilken Ub är kovalent kopplad till ett substratprotein1. Ub-modifieringen katalyseras av successiva enzymatiska reaktioner som involverar verkan av tre olika enzymklasser, dvs.Ub-aktiverande enzymer (E1s), Ubkonjugerande enzymer (E2s), Ub ligases (E3s) och eventuellt Ub-kedjeförlängningsfaktorer (E4s)2,3,4 ,4,5. Efter adenosintrifosfat (ATP) – och magnesium (Mg2+) beroende aktivering av Ub av E1, attackerar den aktiva platsen cystein av E1 C-terminal glycin av Ub, bildar ett tioesterkomplex (Ub ~ E1). Energin som dras från ATP-hydrolys gör att Ub uppnår ett övergångstillstånd med hög energi, som upprätthålls i hela följande enzymkaskad. Därefter överför E2-enzymet den aktiverade Ub till sin inre katalytiska cystein och bildar därmed en övergående Ub ~ E2 tioesterbindning. Därefter överförs Ub till substratproteinet.

Detta kan göras på två sätt. Antingen kan E3-ligasen först binda till E2, eller så kan E3-ligasen direkt binda Ub. Det senare sättet resulterar i bildandet av en E3 ~ Ub-mellanliggande. I båda fallen är Ub kopplat till substratproteinet genom bildandet av en isopeptidbindning mellan C-terminalkarboxylgruppen Ub och lysin-aminogruppen i substratet6. Det mänskliga genomet kodar två E1: or, cirka 40 E2 och mer än 600 förmodade ubiquitin ligases7. Baserat på Ub-överföringsmekanismen för E3 är Ub ligases indelade i tre kategorier som involverar Homologous till E6AP C-Terminus (HECT)-typ, Riktigt intressant ny gen (RING)/U-box-typ och RING mellan RING (RBR)-typ ligases8. I denna studie används U-boxen som innehåller ligas, Carboxyl Terminus av HSC70-interagerande protein (CHIP), som ett representativt E3-enzym. I motsats till HECT-typ E3 enzymer som bildar Ub ~ E3 tioesters, U-box domänen chip binder E2 ~ Ub och främjar efterföljande Ub / substrat överföring direkt från E2 enzym8,9. Baserat på vikten av U-boxen för enzymatisk funktion används en inaktiv CHIP U-box mutant, CHIP(H260Q), som en kontroll. CHIP(H260Q) binder inte till sin cognate E2s, vilket förlorar sin E3 ligase-aktivitet10.

Protein ubiquitylation spelar en avgörande roll för att reglera en mängd cellulära händelser i eukaryota celler. Mångfalden av cellulära resultat som främjas av reversibel fastsättning av Ub-molekyler till substratproteiner kan hänföras till Ubs molekylära egenskaper. Eftersom Ub själv innehåller sju lysin (K) rester för ytterligare allestädes närvarande, finns det ett rikt utbud av Ub kedjetyper med olika storlekar och / eller topologier11. Till exempel kan substrat modifieras av en enda Ub-molekyl vid en (mono-ubiquitylation) eller flera lysiner (multimono-ubiquitylation), och även av Ub-kedjor (poly-allestädes närvarande)11. Ubkedjor bildas antingen homo- eller heterotypiskt via samma eller olika lysinrester av Ub, vilket till och med kan resultera i förgrenade Ub-kedjor9. Således leder proteinubiquitylation till olika arrangemang av Ub-molekyler som ger specifik information, t.ex.för nedbrytning, aktivering eller lokalisering av konjugerade proteiner12,13. Dessa olika Ub-signaler möjliggör snabb omprogrammering av cellulära signalvägar, vilket är ett viktigt krav för cellens förmåga att svara på förändrade miljöbehov.

En central aspekt av allestädes närvarande är relaterad till proteinkvalitetskontroll. Felveckade eller irreversibelt skadade proteiner måste brytas ned och ersättas av nyligen syntetiserade proteiner för att upprätthålla proteinhomeostas eller proteostas14. Kvalitetskontroll E3 ligase, CHIP, samarbetar med molekylära förkläden i den Ub-beroende nedbrytningen av skadade proteiner9,15,16,17. Bortsett från detta reglerar CHIP stabiliteten hos det myosinstyrda förklädet, UNC-45B (Unc-45 Homolog B), som är tätt samordnad med muskelfunktion och avvikelser från de optimala nivåerna leder till mänsklig myopati18,19,20,21. Nedbrytning av UNC-45B av 26S proteasomen förmedlas genom fastsättning av en K48-länkad poly-Ub kedja9. I avsaknad av substratproteiner utför CHIP auto-ubiquitylation10,22,23, vilket är karakteristiskt för RING / U-box E3 ubiquitin ligases24,25 och anses reglera ligasaktivitet26. Tillämpning av de in vitro-allestädes närvarande assaymetoder som beskrivs i detta dokument hjälpte till att systematiskt identifiera E2-enzymer som samarbetar med CHIP för att främja bildandet av fria poly-Ub-kedjor och/eller automatisk allestädes närvarande ingning av CHIP (protokoll avsnitt 2). Dessutom observerades CHIP-beroende allestädes närvarande ubiquitylation av UNC-45B, som är ett känt substrat av E3 ligase18,19 (protokoll avsnitt 3). I slutändan övervakades CHIP-beroende överföring av aktiverad Ub från Ub ~ E2-tioester (protokoll avsnitt 4).

Protocol

1. Beredning av buffertar och reagenser OBS: Buffertar och reagenser som manuellt bereddes i laboratoriet listas nedan. Alla andra buffertar och reagenser som användes i protokollen köptes från olika källor och användes enligt tillverkarnas instruktioner. Förbered 10x fosfatbuffrad saltlösning (10x PBS). Blanda för detta ändamål 1,37 M natriumklorid (NaCl), 27 mM kaliumklorid (KCl), 80 mM disodium-vätefosfatdihydrat (Na2HPO4.2H2O) och 20 mM…

Representative Results

För att identifiera E2-enzymer som samarbetar med ubiquitin ligase CHIP testades en uppsättning E2-kandidater i individuella in vitro-ubiquitylationsreaktioner. Samarbetande E2-E3-par övervakades genom bildandet av E3-beroende allestädes närvarande produkter, dvs.automatisk allestädes närvarande 1999 av E3-ligasen och bildandet av fria Ub-polymerer. Ubiquitylation produkter analyserades av västra blotting. Datatolkningen baseras på storleksjämförelsen av de resulterande proteinbanden med mol…

Discussion

Detta dokument beskriver grundläggande in vitro ubiquitylation metoder för analys av E3 ligase funktion. Vid in vitro-allestädes närvarande analyser bör det anses att vissa E2-enzymer kan utföra auto-allestädes närvarande på grund av attacken av deras aktiva cystein på sina egna lysinrester som ligger i närheten av den aktiva platsen30. För att kringgå detta problem rekommenderas användning av en E2-mutant där respektive lysinrester byts ut mot arginin, vilket res…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar medlemmarna i vårt laboratorium för kritisk diskussion och hjälpsamma råd om manuskriptet. Vi ber om ursäkt för att vi inte har citerat värdefulla bidrag på grund av storleksbegränsning. Detta arbete stöds av Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG, German Research Foundation) – SFB 1218 – Projektnumber 269925409 och Cluster of Excellence EXC 229 / CECAD till TH. Detta arbete finansierades av Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG, Tyska forskningsstiftelsen) under Tysklands excellence strategy – EXC 2030 – 390661388 och – SFB 1218 – Projektnumber 269925409 till T.H. Diese Arbeit wurde von der Deutschen Forschungsgemeinschaft (DFG) im Rahmen der deutschen Exzellenzstrategie – EXC 2030 – 390661388 und – SFB 1218 – Projektnummer: 269925409 an T.H. gefördert.

Materials

Amershan Protran 0.1 µm NC GE Healthcare 10600000 nitrocellulose membrane
Anti-CHIP Cell Signaling 2080 Monoclonal rabbit anti-CHIP antibody, clone C3B6
Anti-MYC Roche OP10 Monoclonal mouse anti-MYC antibody, clone 9E10
Anti-ubiquitin Upstate 05-944 Monoclonal mouse anti-Ub antibody, clone P4D1-A11
Apyrase Sigma A6535-100UN
ATP (10x) Enzo 12091903
BSA Sigma A6003-10G
EDTA Roth 8043.2
KCl Roth 6781.1
K2HPO4 Roth P749.2
KH2PO4 Roth 3904.1
LDS sample buffer (4x) novex B0007
L-Lysine Sigma L5501-5G
MES Roth 4256.4
MeOH VWR Chemicals 2,08,47,307 100%
Milchpulver Roth T145.3
NaCl Roth P029.3
NuPAGE Antioxidant invitrogen NP0005
NuPAGE Transfer buffer (20x) novex NP0006-1
Page ruler plus Thermo Fisher 26619 Protein ladder
RotiBlock Roth A151.1 Blocking reagent
SDS (20%) Roth 1057.1
S1000 Thermal Cycler Bio Rad 1852196
Trans-Blot Turbo Bio Rad 1704150EDU Transfer system
Tris base Roth 4855.3
Tween 20 Roth 9127.2
UbcH Enzyme Set BostonBiochem K-980B E2 enzymes
Ubiquitin BostonBiochem U-100H
Ubiquitin-activating enzyme E1 Enzo BML-UW941U-0050
Ubiquitylation buffer (10x) Enzo BML-KW9885-001
Whatman blotting paper Bio Rad 1703969 Extra thick filter paper

Riferimenti

  1. Kuhlbrodt, K., Mouysset, J., Hoppe, T. Orchestra for assembly and fate of polyubiquitin chains. Essays in Biochemistry. 41, 1-14 (2005).
  2. Pickart, C. M., Eddins, M. J. Ubiquitin: structures, functions, mechanisms. Biochimica et Biophysica Acta. 1695 (1-3), 55-72 (2004).
  3. Dye, B. T., Schulman, B. A. Structural mechanisms underlying posttranslational modification by ubiquitin-like proteins. Annual Review of Biophysics and Biomolecular Structure. 36, 131-150 (2007).
  4. Koegl, M., et al. A novel ubiquitination factor, E4, is involved in multiubiquitin chain assembly. Cell. 96 (5), 635-644 (1999).
  5. Hoppe, T. Multiubiquitylation by E4 enzymes: ‘one size’ doesn’t fit all. Trends in Biochemical Sciences. 30 (4), 183-187 (2005).
  6. Stewart, M. D., Ritterhoff, T., Klevit, R. E., Brzovic, P. S. E2 enzymes: more than just the middle men. Cell Research. 26 (4), 423-440 (2016).
  7. Clague, M. J., Heride, C., Urbé, S. The demographics of the ubiquitin system. Trends in Cell Biology. 25 (7), 417-426 (2015).
  8. Buetow, L., Huang, D. T. Structural insights into the catalysis and regulation of E3 ubiquitin ligases. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 17 (10), 626-642 (2016).
  9. French, M. E., Koehler, C. F., Hunter, T. Emerging functions of branched ubiquitin chains. Cell Discovery. 7, 6 (2021).
  10. Hatakeyama, S., Yada, M., Matsumoto, M., Ishida, N., Nakayama, K. I. U box proteins as a new family of ubiquitin-protein ligases. Journal of Biological Chemistry. 276 (35), 33111-33120 (2001).
  11. Herhaus, L., Dikic, I. Expanding the ubiquitin code through post-translational modification. EMBO Reports. 16 (9), 1071-1083 (2015).
  12. Deshaies, R. J., Joazeiro, C. A. RING domain E3 ubiquitin ligases. Annual Review of Biochemistry. 78, 399-434 (2009).
  13. Hochstrasser, M. Lingering mysteries of ubiquitin-chain assembly. Cell. 124 (1), 27-34 (2006).
  14. Hoppe, T., Cohen, E. Organismal protein homeostasis mechanisms. Genetica. 215 (4), 889-901 (2020).
  15. Okiyoneda, T., et al. Peripheral protein quality control removes unfolded CFTR from the plasma membrane. Science. 329 (5993), 805-810 (1997).
  16. Tawo, R., et al. The Ubiquitin ligase CHIP integrates proteostasis and aging by regulation of insulin receptor turnover. Cell. 169 (3), 470-482 (2017).
  17. Albert, M. C., et al. CHIP ubiquitylates NOXA and induces its lysosomal degradation in response to DNA damage. Cell Death and Disease. 11 (9), 740 (2020).
  18. Hoppe, T., et al. Regulation of the myosin-directed chaperone UNC-45 by a novel E3/E4-multiubiquitylation complex in C. elegans. Cell. 118 (3), 337-349 (2004).
  19. Kim, J., Löwe, T., Hoppe, T. Protein quality control gets muscle into shape. Trends in Cell Biology. 18 (6), 264-272 (2008).
  20. Janiesch, P. C., et al. The ubiquitin-selective chaperone CDC-48/p97 links myosin assembly to human myopathy. Nature Cell Biology. 9 (4), 379-390 (2007).
  21. Donkervoort, S., et al. Pathogenic variants in the myosin chaperone UNC-45B cause progressive myopathy with eccentric cores. The American Journal of Human Genetics. 107 (6), 1078-1095 (2020).
  22. Murata, S., Minami, Y., Minami, M., Chiba, T., Tanaka, K. CHIP is a chaperone-dependent E3 ligase that ubiquitylates unfolded protein. EMBO Reports. 2 (12), 1133-1138 (2001).
  23. Jiang, J., et al. CHIP is a U-box-dependent E3 ubiquitin ligase: identification of Hsc70 as a target for ubiquitylation. Journal of Biological Chemistry. 276 (64), 42938-42944 (2001).
  24. Yang, Y., Yu, X. Regulation of apoptosis: the ubiquitous way. The FASEB Journal. 17 (8), 790-799 (2003).
  25. Lamothe, B., et al. TRAF6 ubiquitin ligase is essential for RANKL signaling and osteoclast differentiation. Biochemical and Biophysical Research Communication. 359 (4), 1044-1049 (2007).
  26. Amemiya, Y., Azmi, P., Seth, A. Autoubiquitination of BCA2 RING E3 ligase regulates its own stability and affects cell migration. Molecular Cancer Research. 6 (9), 1385 (2008).
  27. Brzovic, P. S., Lissounov, A., Christensen, D. E., Hoyt, D. W., Klevit, R. E. A UbcH5/ubiquitin noncovalent complex is required for processive BRCA1-directed ubiquitination. Molecular Cell. 21 (6), 873-880 (2006).
  28. Sakata, E., et al. Crystal structure of UbcH5b~ubiquitin intermediate: Insight into the formation of the self-assembled E2~Ub conjugates. Structure. 18 (1), 138-147 (2010).
  29. Eddins, M. J., Carlile, C. M., Gomez, K. M., Pickart, C. M., Wolberger, C. Mms2-Ubc13 covalently bound to ubiquitin reveals the structural basis of linkage-specific polyubiquitin chain formation. Nature Structural and Molecular Biology. 13 (10), 915-920 (2006).
  30. Buetow, L., et al. Activation of a primed RING E3-E2 ubiquitin complex by non-covalent ubiquitin. Molecular Cell. 58 (2), 297-310 (2015).
  31. Dou, H., Buetow, L., Sibbet, G. J., Cameron, K., Huang, D. T. BIRC7-E2 ubiquitin conjugate structure reveals the mechanism of ubiquitin transfer by a RING dimer. Nature Structural and Molecular Biology. 19 (9), 876-883 (2012).
  32. McKenna, S., et al. Noncovalent interaction between ubiquitin and the human DNA repair protein Mms2 is required for Ubc13-mediated polyubiquitination. Journal of Biological Chemistry. 276 (43), 40120-40125 (2001).
  33. Plechanovová, A., et al. Mechanism of ubiquitylation by dimeric RING ligase RNF4. Nature Structural Biology. 18 (9), 1052-1059 (2011).
  34. Pierce, N. W., Kleiger, G., Shan, S. O., Deshaies, R. J. Detection of sequential polyubiquitylation on a millisecond timescale. Nature. 462 (7273), 615-619 (2009).
  35. Jain, A. K., Barton, M. C. Regulation of p53: TRIM24 enters the RING. Cell Cycle. 8 (22), 3668-3674 (2009).
  36. Swatek, K. N., Komander, D. Ubiquitin modifications. Cell Research. 26, 399-422 (2016).
  37. Yan, K., et al. The role of K63-linked polyubiquitination in cardiac hypertrophy. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 22 (10), 4558-4567 (2018).
  38. Dammer, E. B., et al. Polyubiquitin linkage profiles in three models of proteolytic stress suggest the etiology of Alzheimer disease. Journal of Biological Chemistry. 286 (12), 10457-10465 (2011).
check_url/it/62393?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Müller, L., Kutzner, C. E., Balaji, V., Hoppe, T. In Vitro Analysis of E3 Ubiquitin Ligase Function. J. Vis. Exp. (171), e62393, doi:10.3791/62393 (2021).

View Video