Summary

Etablering og genmanipulation af Murine Hepatocyte organoider

Published: February 12, 2022
doi:

Summary

Et langsigtet ex vitro 3D organoid kultursystem blev etableret fra musehæpatocytter. Disse organoider kan passage og genetisk manipuleres ved lentivirus infektion af shRNA / ektopisk konstruktion, siRNA transfection og CRISPR-Cas9 engineering.

Abstract

Leveren er det største organ hos pattedyr. Det spiller en vigtig rolle i glukoseopbevaring, proteinsekretion, metabolisme og afgiftning. Som eksekutor for de fleste af leveren funktioner, primære hepatocytter har begrænset voksende kapacitet. Dette kræver, at der oprettes ex vivo hepatocyt ekspansion modeller for lever fysiologisk og patologisk forskning. Her isolerede vi murine hepatocytter med to trin af kollagenaseperfusion og etablerede en 3D-organoidkultur som ‘minilever’ for at generogulere cellecelleinteraktioner og fysiske funktioner. Organoiderne består af heterogene cellepopulationer, herunder forfædre og modne hepatocytter. Vi introducerer processen i detaljeret at isolere og kultur murine hepatocytter eller foster hepatocyt at danne organoider inden for 2-3 uger og vise, hvordan man passage dem ved mekanisk pipetter op og ned. Derudover vil vi også introducere, hvordan man fordøjer organoiderne i enkeltceller til lentivirusinfektion af shRNA / ektopisk konstruktion, siRNA transfection og CRISPR-Cas9 engineering. Organoiderne kan bruges til lægemiddelskærme, sygdomsmodellering og grundlæggende leverforskning ved at modellere leverbiologi og patobiologi.

Introduction

Organoider er selvorganiserede, tredimensionelle (3D) in vitro-klynger, der omfatter selvfornyende stamceller og differentierede celler med flere slægter1,2. Organoiderne i mange organer er blevet etableret enten fra pluripotente eller voksne stamceller ved veldefinerede nichefaktorer, herunder tarmen, hjernen, tyktarmen, nyrerne, leveren, bugspytkirtlen, skjoldbruskkirtlen, maven, huden og lungen3,4,5,6,7 . Organoiderne generobrer fysiske cellefunktioner ved at efterligne enten udvikling (stammer fra embryonale eller inducerede pluripotente stamceller, PSC’er) eller homøostase / regenerering progression (stammer fra voksne stamceller, ASCs), som åbner nye veje i sygdomsforskning og terapi8,9.

Som det største organ hos pattedyr er leveren primært ansvarlig for opbevaring, metabolisme og afgiftning. To slags epitelcelletyper, hepatocytter og cholangiocytter, konstruere den grundlæggende enhed af en leverlobule. Hepatocytter er ansvarlige for 70-80% af leverfunktionen10. Selv om leveren har bemærkelsesværdig regenerering kapacitet, hurtigt tab af hepatocyt funktioner sker under traditionelle monolayer dyrkning af dysreguleret celle polarisering og dedifferentiation, hvilket øger behovet for forskere og klinikere til at opbygge ‘gap-bridging’ lever modeller i en skål. Indtil for nylig havde ex vivo-ekspansionsmodellerne fra primære hepatocytter imidlertid ikke været veletablerede11,12,13,14,15. Leverorganoider kan etableres fra embryonale / inducerede pluripotente stamceller, fibroblast konvertering til hepatocyt-lignende celler, og væv-afledte celler. Udviklingen af leverorganoider øger anvendelsen af en in vitro-model til lægemiddelskærme og levertoksicitetsanalyser16,17.

Her beskriver vi en detaljeret protokol til etablering af leverorganoider fra murin primære hepatocytter. Ved at bruge denne protokol, vi oprettet en in vitro kultur system af hepatocyt organoider med to perfusioner af kollagenase. Disse organoider kan passeres for langsigtet ekspansion i flere måneder. Deres fysiologiske funktion er meget i overensstemmelse med hepatocytter. Derudover giver vi også en detaljeret beskrivelse af, hvordan man udfører genmanipulation, såsom lentivirusinfektion, siRNA transduktion og CRISPR-Cas9-teknik ved hjælp af organoider. Udbredelsen af hepatocytorganoider kaster lys over muligheden for at bruge organoider til at forstå leverbiologi og udvikle personlige og translationelle medicintilgange.

Protocol

Alle mus eksperimenter blev godkendt af Animal Care and Use Committee af School of Basic Medical Sciences på Shandong University og blev udført i henhold til licensen i henhold til Home Office retningslinjer og regler (Nr. ECSBMSSDU2019-2-079). BEMÆRK: Denne protokol bruges hovedsageligt til at dyrke 3D-organoider fra isolerede primære hepatocytter. 1. Etablering af Murine Hepatocyte Organoid Kultur BEMÆRK: Ekstracellulære matrix sås…

Representative Results

Hepatocyt organoider fra kvindelige Alb-Cre; Rosa26-GFP mus (8 uger) blev observeret fem dage efter såning (Figur 1A). Organoiderne breder sig med Ki67 positiv farvning (figur 1B). Interfererende udtryk for repræsentative gener i hepatocytorganoider enten ved siRNA transinfektion eller lentivirusinfektion blev undersøgt af qRT-PCR og western blot. Resultaterne er vist i figur 2A og 2B. Figur …

Discussion

Evnen til at kultur modne hepatocytter over lange perioder er grundlæggende i at studere lever grundlæggende videnskab, narkotika toksikologi og hepatotropiske host-mikrobiologi infektioner såsom malaria og hepatitis virus. Med en veldefineret niche opretter protokollen her et kultursystem for hepatocytter. Denne protokol driver modne hepatocytter til at udvide i 3D-kultur med en heterogenitet, der opsummerer celle-celle interaktion, de fleste hepatocyt funktion og genetiske modifikationer, så design af genfunktion u…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker professor Hans Clevers for venligt at give cellelinjer til at producere rekombinant R-spondin1. Dette arbejde blev støttet af tilskud fra National Key R &D Program of China (2019YFA01111400), National Natural Science Foundation of China (31970779) til H.H., og Fondene for Ungdomsinterdisciplinær og Innovation Research Group of Shandong University (2020QNQT003) til H.H.

Materials

Perfusion Buffer
EGTA Sangon Bitech A600077-0100 3.50 g/L
Glucose Sangon Bitech A100188-0500 9.00 g/L
KCl Sangon Bitech A100395-0500 4.00 g/L
Na2HPO4·12H2O Sangon Bitech A501727-0500 1.51 g/L
NaCl Sangon Bitech A501218-0001 80.0 g/L
NaH2PO4·2H2O Sangon Bitech A610404-0500 0.78 g/L
NaHCO3 Sangon Bitech A500873-0500 3.50 g/L
Phenol Red Sangon Bitech A100882-0025 0.06 g/L
Digestion Buffer
CaCl2 Sangon Bitech A501330-0005 0.50 M
Collagenase IV Sigma C1639 0.10 mg/mL
HEPES Sangon Bitech C621110-0010 23.80 g/L
KCl Sangon Bitech A100395-0500 4.00 g/L
Na2HPO4·12H2O Sangon Bitech A501727-0500 1.51 g/L
NaCl Sangon Bitech A501218-0001 80.0 g/L
NaH2PO4·2H2O Sangon Bitech A610404-0500 0.78 g/L
NaHCO3 Sangon Bitech A500873-0500 3.50 g/L
Tip-wash Buffer
Fetal Bovine Serum Gibco 10091148 stored at 4 °C
DPBS Gibco C14190500BT0 stored at 4 °C
Wash Medium
Advanced DMEM/F12 Invitrogen 12634-010 stored at 4 °C
GlutaMAX Gibco 35050-061 100 X
HEPES Gibco 15630-080 100 X
Penicillin/streptomycin Sangon Bitech  A600135-0025 100 X
Culture Medium
A83-01 Tocris 2939 Stock concentration 500 µM, final
concentration 2 µM
Advanced DMEM/F12 Invitrogen 12634-010 stored at 4 °C
B-27 supplement 50x, minus vitamin A Gibco 1704-044 50 X
Chir 99021 Tocris 4423 Stock concentration 30 mM, final
concentration 3 µM
DMEM/F12 Gibco 11330032 stored at 4 °C
Gastrin I Tocris 3006 Stock concentration 100 mM, final
concentration 10 nM
GlutaMAX Gibco 35050-061 100 X
HEPES Gibco 15630-080 100 X
Matrigel martix BD 356231 stored at -20 °C
N-acetylcysteine Sigma Aldrich A9165 Stock concentration 500 mM, final
concentration 1 mM
Nictinamide Sigma Aldrich N0636 Stock concentration 1 M, final concentration 3 mM
Penicillin/streptomycin Sangon Bitech  A600135-0025 100 X
Recombinant human EGF Peprotech AF-100-15 Stock concentration 100 µg/ml,final concentration 50 ng/ml
Recombinant human FGF10 Peprotech 100-26 Stock concentration 100 µg/ml, final concentration 100 ng/ml
Recombinant human HGF Peprotech 100-39 Stock concentration 100 µg/ml, final concentration 25 ng/ml
Recombinant Human TGF-α Peprotech 100-16A Stock concentration 100 µg/ml, final concentration 100 ng/ml
Recombinant Human TNF-α Origene TP750007-1000 Stock concentration 100 µg/ml, final concentration 100 ng/ml
Rho kinase inhibitor Y-27632 Abmole Bioscience Y-27632 dihydrochloride Stock concentration 10 mM, final concentration 10 µM
Rspondin-1conditioned medium Stable cell line generated in the Hu Lab. Final concentration 15%.
Others
0.22 µm filter Millipore SCGPT01RE
16 # silicone tube LangerPump
24 well, suspension Greiner bio-one GN662102-100EA
37 °C Water Bath
70 µm filter BD 352350
Accutase stemcell AT-104 stored at 4 °C
Anti-CTNNB1 BD 610154 Mouse
Anti-GAPDH CST 5174S Rabbit
Anti-HDAC7 Abcam ab50212 Mouse
Anti-KI67 Abcam ab15580 Rabbit
Biological safety cabinet ESCO CCL-170B-8
Cell Recovery Solution Corning 354253 stored at 4 °C
Centrifuge 5430 eppendorf 542700097
CO2 incubator ESCO AC2-4S1
DMSO Sangon Bitech  A100231 stored at RT
EVOS FL Color Imaging Systems Invitrogen AME4300
Hdac3 siRNA Guangzhou RiboBio Co., Ltd. siG2003180909192555 stored at -20 °C
Hdac7 lentivirus ShanghaiGenePharmaCo.,Ltd LV2020-2364 stored at -80 °C
Hitrans G A Shanghai Genechem Co.,Ltd. REVG004 Increased virus infection efficiency
Image Pro Plus software Media Cybernetics, Bethesda, MD, USA version 6.0
Lipofectamin RNAiMAX Transfection Reagent Invitrogen 13778150 Increased virus infection efficiency
Live cell dye Luna F23001 stored at 4 °C
Low-speed desktop centrifuge cence TD5A-WS/TD5AWS
Nucleofactor-α 2b Device Lonza
Opti-MEM Gibco 31985070 stored at 4 °C
Pasteur pipette Sangon Bitech F621006-0001
Peristaltic pump LangerPump BT100-2J
PVDF membrane Millipore IPVH00010 Activate with methanol
PX458 Addgene 48138 stored at -80 °C
Refrigerated centrifuge Thermo Scientific Heraeus Labofuge 400
RSL3 MCE HY-100218A Stock concentration 10 mM, final concentration 4 µM
Trypsin/EDTA Gibico 25200072 stored at 4 °C
Wee1 siRNA Guangzhou RiboBio Co., Ltd. siG2003180909205971 stored at -20 °C

Riferimenti

  1. Lancaster, M. A., Knoblich, J. A. Organogenesis in a dish: modeling development and disease using organoid technologies. Science. 345 (6194), 124-125 (2014).
  2. Sasai, Y. Next-generation regenerative medicine: organogenesis from stem cells in 3D culture. Cell Stem Cell. 12 (5), 520-530 (2013).
  3. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459 (7244), 262-265 (2009).
  4. Paola, A., et al. Individual brain organoids reproducibly form cell diversity of the human cerebral cortex. Nature. 570, 523-527 (2019).
  5. Atsuhiro, T., Ryuichi, N. Higher-Order Kidney Organogenesis from Pluripotent Stem Cells. Cell Stem Cell. 21 (6), 730-746 (2017).
  6. Huch, M., et al. In vitro expansion of single Lgr5+ liver stem cells induced by Wnt-driven regeneration. Nature. 494 (7436), 247-250 (2013).
  7. Wang, D. S., et al. Long-Term Expansion of Pancreatic Islet Organoids from Resident Procr + Progenitors. Cell. 180 (6), 1198-1211 (2020).
  8. Jarno, D., Hans, C. Organoids in cancer research. Nature Reviews Cancer. 18, 407-418 (2018).
  9. Hans, C. Modeling Development and Disease with Organoids. Cell. 165 (7), 1586-1597 (2016).
  10. Forbes, S. J., Newsome, P. N. Liver regeneration-mechanisms and models to clinical application. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 13 (8), 473-485 (2016).
  11. Zhang, K., et al. In Vitro Expansion of Primary Human Hepatocytes with Efficient Liver Repopulation Capacity. Cell Stem Cell. 23 (6), 806-819 (2018).
  12. Katsuda, T., et al. Conversion of Terminally Committed Hepatocytes to Culturable Bipotent Progenitor Cells with Regenerative Capacity. Cell Stem Cell. 20 (1), 41-55 (2017).
  13. Hu, H., et al. Long-Term Expansion of Functional Mouse and Human Hepatocytes as 3D Organoids. Cell. 175 (6), 1591-1606 (2018).
  14. Peng, W., et al. Inflammatory Cytokine TNFalpha Promotes the Long-Term Expansion of Primary Hepatocytes in 3D Culture. Cell. 175 (6), 1607-1619 (2018).
  15. Xiang, C., et al. Long-term functional maintenance of primary human hepatocytes in vitro. Science. 364 (6438), 399-402 (2019).
  16. Huch, M., et al. Long-term culture of genome-stable bipotent stem cells from adult human liver. Cell. 160 (1-2), 299-312 (2015).
  17. Broutier, L., et al. Culture and establishment of self-renewing human and mouse adult liver and pancreas 3D organoids and their genetic manipulation. Nature Protocol. 11 (9), 1724-1743 (2016).
check_url/it/62438?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Lian, J., Meng, X., Zhang, X., Hu, H. Establishment and Genetic Manipulation of Murine Hepatocyte Organoids. J. Vis. Exp. (180), e62438, doi:10.3791/62438 (2022).

View Video