Summary

Murine Hepatosit Organoidlerinin Kurulması ve Genetik Manipülasyonu

Published: February 12, 2022
doi:

Summary

Fare hepatatitlerinden uzun süreli ek vitro 3D organoid kültür sistemi kuruldu. Bu organoidler shRNA/ektopik yapı, siRNA transfeksiyonu ve CRISPR-Cas9 mühendisliğinin lentivirüs enfeksiyonu ile geçiş ve genetik olarak manipüle edilebilir.

Abstract

Karaciğer memelilerdeki en büyük organdır. Glikoz depolama, protein salgılama, metabolizma ve detoksifikasyonda önemli bir rol oynar. Karaciğer fonksiyonlarının çoğu için uygulayıcı olarak, birincil hepatositler sınırlı çoğalma kapasitesine sahiptir. Bu, karaciğer fizyolojik ve patolojik araştırmalar için ex vivo hepatosit genleşme modellerinin kurulmasını gerektirir. Burada, murine hepatositleri iki adım kollajenaz perfüzyonu ile izole ettik ve hücre-hücre etkileşimlerini ve fiziksel fonksiyonları yeniden oluşturmak için ‘mini karaciğer’ olarak 3D organoid kültürü kurduk. Organoidler, progenitörler ve olgun hepatositler de dahil olmak üzere heterojen hücre popülasyonlarından oluşur. 2-3 hafta içinde organoid oluşturmak için murine hepatositleri veya fetal hepatositleri izole etmek ve kültüre etmek ve mekanik olarak yukarı ve aşağı pipetleyerek nasıl geçişlerini göstereceğimizi göstermek için süreci ayrıntılı olarak tanıtıyoruz. Ek olarak, shRNA / ektopik yapı, siRNA transfeksiyonu ve CRISPR-Cas9 mühendisliğinin lentivirüs enfeksiyonu için organoidlerin tek hücreye nasıl sindirileceğini de tanıtacağız. Organoidler, karaciğer biyolojisi ve patobiyolojisi modellenerek ilaç elekleri, hastalık modellemesi ve temel karaciğer araştırmaları için kullanılabilir.

Introduction

Organoidler, kendi kendini yenileyen kök hücreleri ve çok soylu farklılaştırılmış hücreleri içeren kendi kendine organize edilmiş, üç boyutlu (3D) in vitro kümelerdir1,2. Birçok organın organoidleri, bağırsak, beyin, kolon, böbrek, karaciğer, pankreas, tiroid, mide, cilt ve akciğer3,4,5,6,7 gibi iyi tanımlanmış niş faktörlerle pluripotent veya yetişkin kök hücrelerinden kurulmuştur. . Organoidler, hastalık araştırma ve tedavisinde yeni yollar açan gelişim (embriyonik veya indüklenmiş pluripotent kök hücrelerden, PSC’lerden) veya homeostaz/rejenerasyon ilerlemesini (yetişkin kök hücrelerinden, ASC’lerden kaynaklanır) taklit ederek fiziksel hücre fonksiyonlarını yeniden kapsüllerler8,9.

Memelilerde en büyük organ olarak, karaciğer esas olarak depolama, metabolizma ve detoksifikasyondan sorumludur. İki tür epitel hücre tipi, hepatositler ve kolanjiositler, bir karaciğer lobüllerinin temel birimini oluşturur. Hepatositler karaciğer fonksiyonlarının % 70-80’inden sorumludur10. Karaciğer olağanüstü rejenerasyon kapasitesine sahip olmasına rağmen, hepatosit özelliklerinin hızlı kaybı, düzensiz hücre polarizasyonu ve adanmışlık ile geleneksel monolayer kültleme sırasında meydana gelir ve bu da araştırmacıların ve klinisyenlerin bir tabakta ‘boşluk köprüleme’ karaciğer modelleri inşa etme ihtiyacını arttırır. Bununla birlikte, yakın zamana kadar birincil hepatositlerden ex vivo genişletme modelleri iyi kurulmamıştı11,12,13,14,15. Karaciğer organoidleri embriyonik/indüklenmiş pluripotent kök hücrelerden, fibroblast hepatosit benzeri hücrelere ve dokudan türetilmiş hücrelerden kurulabilir. Karaciğer organoidlerinin gelişimi, ilaç elekleri ve karaciğer toksisitesi tahlilleri için bir in vitro modelin uygulanmasını artırır16,17.

Burada, murine primer hepatositlerden karaciğer organoidleri oluşturmak için ayrıntılı bir protokol açıklıyoruz. Bu protokolü kullanarak, kollajenazın iki perfüzyonu ile hepatosit organoidlerinden oluşan bir in vitro kültür sistemi kurduk. Bu organoidler aylarca uzun süreli genişleme için geçiş yapılabilir. Fizyolojik fonksiyonları hepatositlerle oldukça uyumludur. Ayrıca, organoidler kullanılarak lentivirüs enfeksiyonu, siRNA transdüksiyonu ve CRISPR-Cas9 mühendisliği gibi genetik manipülasyonun nasıl gerçekleştirildiğinin ayrıntılı bir açıklamasını da sunuyoruz. Hepatosit organoidlerinin yayılması, karaciğer biyolojisini anlamak ve kişiselleştirilmiş ve çevirisel tıp yaklaşımları geliştirmek için organoid kullanma olasılığına ışık tutmaktadır.

Protocol

Tüm fare deneyleri Shandong Üniversitesi Temel Tıp Bilimleri Okulu Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi tarafından onaylanmıştır ve İçişleri Bakanlığı yönergeleri ve yönetmelikleri uyarınca Lisansa göre gerçekleştirilmiştir (Hayır. ECSBMSSDU2019-2-079). NOT: Bu protokol esas olarak izole primer hepatositlerden 3D organoidleri kültüre etmek için kullanılır. 1. Murine Hepatosit Organoid Kültürünün Kurulması NOT: …

Representative Results

Dişi Alb-Cre’den hepatatit organoidleri; Rosa26-GFP fare (8 hafta) tohumlamadan beş gün sonra gözlendi (Şekil 1A). Organoidler Ki67 pozitif lekeleme ile çoğalmaktadır (Şekil 1B). Hepatosit organoidlerinde siRNA transfeksiyonu veya lentivirüs enfeksiyonu ile temsili genlerin müdahale edici ekspresyonu qRT-PCR ve batı blotu ile incelendi. Sonuçlar Şekil 2A ve 2B’de gösterilmiştir. …

Discussion

Olgun hepatositleri uzun süreler boyunca kültürleme yeteneği, karaciğer temel bilimi, ilaç toksikolojisi ve sıtma ve hepatit virüsleri gibi hepatotropik konak mikrobiyoloji enfeksiyonlarının incelenmesinde temeldir. İyi tanımlanmış bir niş ile, protokol burada hepatositler için bir kültür sistemi kurar. Bu protokol, olgun hepatositlerin hücre-hücre etkileşimini, çoğu hepatosit fonksiyonunu ve genetik değişiklikleri yeniden sağlayan bir heterojenlikle 3D kültüründe genişlemesini sağlar ve ge…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Profesör Hans Clevers’e rekombinant R-spondin1 üretmek için hücre hatlarını sağladığı için teşekkür ederiz. Bu çalışma, Çin Ulusal Anahtar Ar-Ge Programı’ndan (2019YFA0111400), Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı’ndan (31970779) H.H.’ye ve Shandong Üniversitesi Gençler Arası ve İnovasyon Araştırma Grubu’ndan (2020QNQT003) H.H.’ye verilen hibelerle desteklendi.

Materials

Perfusion Buffer
EGTA Sangon Bitech A600077-0100 3.50 g/L
Glucose Sangon Bitech A100188-0500 9.00 g/L
KCl Sangon Bitech A100395-0500 4.00 g/L
Na2HPO4·12H2O Sangon Bitech A501727-0500 1.51 g/L
NaCl Sangon Bitech A501218-0001 80.0 g/L
NaH2PO4·2H2O Sangon Bitech A610404-0500 0.78 g/L
NaHCO3 Sangon Bitech A500873-0500 3.50 g/L
Phenol Red Sangon Bitech A100882-0025 0.06 g/L
Digestion Buffer
CaCl2 Sangon Bitech A501330-0005 0.50 M
Collagenase IV Sigma C1639 0.10 mg/mL
HEPES Sangon Bitech C621110-0010 23.80 g/L
KCl Sangon Bitech A100395-0500 4.00 g/L
Na2HPO4·12H2O Sangon Bitech A501727-0500 1.51 g/L
NaCl Sangon Bitech A501218-0001 80.0 g/L
NaH2PO4·2H2O Sangon Bitech A610404-0500 0.78 g/L
NaHCO3 Sangon Bitech A500873-0500 3.50 g/L
Tip-wash Buffer
Fetal Bovine Serum Gibco 10091148 stored at 4 °C
DPBS Gibco C14190500BT0 stored at 4 °C
Wash Medium
Advanced DMEM/F12 Invitrogen 12634-010 stored at 4 °C
GlutaMAX Gibco 35050-061 100 X
HEPES Gibco 15630-080 100 X
Penicillin/streptomycin Sangon Bitech  A600135-0025 100 X
Culture Medium
A83-01 Tocris 2939 Stock concentration 500 µM, final
concentration 2 µM
Advanced DMEM/F12 Invitrogen 12634-010 stored at 4 °C
B-27 supplement 50x, minus vitamin A Gibco 1704-044 50 X
Chir 99021 Tocris 4423 Stock concentration 30 mM, final
concentration 3 µM
DMEM/F12 Gibco 11330032 stored at 4 °C
Gastrin I Tocris 3006 Stock concentration 100 mM, final
concentration 10 nM
GlutaMAX Gibco 35050-061 100 X
HEPES Gibco 15630-080 100 X
Matrigel martix BD 356231 stored at -20 °C
N-acetylcysteine Sigma Aldrich A9165 Stock concentration 500 mM, final
concentration 1 mM
Nictinamide Sigma Aldrich N0636 Stock concentration 1 M, final concentration 3 mM
Penicillin/streptomycin Sangon Bitech  A600135-0025 100 X
Recombinant human EGF Peprotech AF-100-15 Stock concentration 100 µg/ml,final concentration 50 ng/ml
Recombinant human FGF10 Peprotech 100-26 Stock concentration 100 µg/ml, final concentration 100 ng/ml
Recombinant human HGF Peprotech 100-39 Stock concentration 100 µg/ml, final concentration 25 ng/ml
Recombinant Human TGF-α Peprotech 100-16A Stock concentration 100 µg/ml, final concentration 100 ng/ml
Recombinant Human TNF-α Origene TP750007-1000 Stock concentration 100 µg/ml, final concentration 100 ng/ml
Rho kinase inhibitor Y-27632 Abmole Bioscience Y-27632 dihydrochloride Stock concentration 10 mM, final concentration 10 µM
Rspondin-1conditioned medium Stable cell line generated in the Hu Lab. Final concentration 15%.
Others
0.22 µm filter Millipore SCGPT01RE
16 # silicone tube LangerPump
24 well, suspension Greiner bio-one GN662102-100EA
37 °C Water Bath
70 µm filter BD 352350
Accutase stemcell AT-104 stored at 4 °C
Anti-CTNNB1 BD 610154 Mouse
Anti-GAPDH CST 5174S Rabbit
Anti-HDAC7 Abcam ab50212 Mouse
Anti-KI67 Abcam ab15580 Rabbit
Biological safety cabinet ESCO CCL-170B-8
Cell Recovery Solution Corning 354253 stored at 4 °C
Centrifuge 5430 eppendorf 542700097
CO2 incubator ESCO AC2-4S1
DMSO Sangon Bitech  A100231 stored at RT
EVOS FL Color Imaging Systems Invitrogen AME4300
Hdac3 siRNA Guangzhou RiboBio Co., Ltd. siG2003180909192555 stored at -20 °C
Hdac7 lentivirus ShanghaiGenePharmaCo.,Ltd LV2020-2364 stored at -80 °C
Hitrans G A Shanghai Genechem Co.,Ltd. REVG004 Increased virus infection efficiency
Image Pro Plus software Media Cybernetics, Bethesda, MD, USA version 6.0
Lipofectamin RNAiMAX Transfection Reagent Invitrogen 13778150 Increased virus infection efficiency
Live cell dye Luna F23001 stored at 4 °C
Low-speed desktop centrifuge cence TD5A-WS/TD5AWS
Nucleofactor-α 2b Device Lonza
Opti-MEM Gibco 31985070 stored at 4 °C
Pasteur pipette Sangon Bitech F621006-0001
Peristaltic pump LangerPump BT100-2J
PVDF membrane Millipore IPVH00010 Activate with methanol
PX458 Addgene 48138 stored at -80 °C
Refrigerated centrifuge Thermo Scientific Heraeus Labofuge 400
RSL3 MCE HY-100218A Stock concentration 10 mM, final concentration 4 µM
Trypsin/EDTA Gibico 25200072 stored at 4 °C
Wee1 siRNA Guangzhou RiboBio Co., Ltd. siG2003180909205971 stored at -20 °C

Riferimenti

  1. Lancaster, M. A., Knoblich, J. A. Organogenesis in a dish: modeling development and disease using organoid technologies. Science. 345 (6194), 124-125 (2014).
  2. Sasai, Y. Next-generation regenerative medicine: organogenesis from stem cells in 3D culture. Cell Stem Cell. 12 (5), 520-530 (2013).
  3. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459 (7244), 262-265 (2009).
  4. Paola, A., et al. Individual brain organoids reproducibly form cell diversity of the human cerebral cortex. Nature. 570, 523-527 (2019).
  5. Atsuhiro, T., Ryuichi, N. Higher-Order Kidney Organogenesis from Pluripotent Stem Cells. Cell Stem Cell. 21 (6), 730-746 (2017).
  6. Huch, M., et al. In vitro expansion of single Lgr5+ liver stem cells induced by Wnt-driven regeneration. Nature. 494 (7436), 247-250 (2013).
  7. Wang, D. S., et al. Long-Term Expansion of Pancreatic Islet Organoids from Resident Procr + Progenitors. Cell. 180 (6), 1198-1211 (2020).
  8. Jarno, D., Hans, C. Organoids in cancer research. Nature Reviews Cancer. 18, 407-418 (2018).
  9. Hans, C. Modeling Development and Disease with Organoids. Cell. 165 (7), 1586-1597 (2016).
  10. Forbes, S. J., Newsome, P. N. Liver regeneration-mechanisms and models to clinical application. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 13 (8), 473-485 (2016).
  11. Zhang, K., et al. In Vitro Expansion of Primary Human Hepatocytes with Efficient Liver Repopulation Capacity. Cell Stem Cell. 23 (6), 806-819 (2018).
  12. Katsuda, T., et al. Conversion of Terminally Committed Hepatocytes to Culturable Bipotent Progenitor Cells with Regenerative Capacity. Cell Stem Cell. 20 (1), 41-55 (2017).
  13. Hu, H., et al. Long-Term Expansion of Functional Mouse and Human Hepatocytes as 3D Organoids. Cell. 175 (6), 1591-1606 (2018).
  14. Peng, W., et al. Inflammatory Cytokine TNFalpha Promotes the Long-Term Expansion of Primary Hepatocytes in 3D Culture. Cell. 175 (6), 1607-1619 (2018).
  15. Xiang, C., et al. Long-term functional maintenance of primary human hepatocytes in vitro. Science. 364 (6438), 399-402 (2019).
  16. Huch, M., et al. Long-term culture of genome-stable bipotent stem cells from adult human liver. Cell. 160 (1-2), 299-312 (2015).
  17. Broutier, L., et al. Culture and establishment of self-renewing human and mouse adult liver and pancreas 3D organoids and their genetic manipulation. Nature Protocol. 11 (9), 1724-1743 (2016).
check_url/it/62438?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Lian, J., Meng, X., Zhang, X., Hu, H. Establishment and Genetic Manipulation of Murine Hepatocyte Organoids. J. Vis. Exp. (180), e62438, doi:10.3791/62438 (2022).

View Video