Summary

Etablering och genetisk manipulering av Murine Hepatocyte Organoids

Published: February 12, 2022
doi:

Summary

Ett långsiktigt ex vitro 3D organoid kultursystem inrättades från mus hepatocyter. Dessa organoider kan passeras och genetiskt manipuleras av lentivirus infektion av shRNA/ektopisk konstruktion, siRNA transfection och CRISPR-Cas9 teknik.

Abstract

Levern är det största organet hos däggdjur. Det spelar en viktig roll i glukoslagring, proteinsekresion, metabolism och avgiftning. Som exekutor för de flesta leverfunktioner har primära hepatocyter begränsad prolifererande kapacitet. Detta kräver upprättandet av ex vivo hepatocytexpansion modeller för leverfysiologisk och patologisk forskning. Här isolerade vi murin hepatocyter genom två steg av kollagenas perfusion och etablerade en 3D organoid kultur som “mini-lever” för att rekapitulera cell-cell interaktioner och fysiska funktioner. Organoiderna består av heterogena cellpopulationer inklusive stamceller och mogna hepatocyter. Vi introducerar processen i detalj för att isolera och odla murin hepatocyter eller fetala hepatocyter för att bilda organoider inom 2-3 veckor och visa hur man passerar dem genom att mekaniskt pipettera upp och ner. Dessutom kommer vi också att introducera hur man smälter organoiderna i enstaka celler för lentivirusinfektion av shRNA / utomkvedskonstruktion, siRNA-transfektion och CRISPR-Cas9-teknik. Organoiderna kan användas för läkemedelsskärmar, sjukdomsmodellering och grundläggande leverforskning genom modellering av leverbiologi och patobiologi.

Introduction

Organoider är självorganiserade, tredimensionella (3D) in vitro-kluster som inkluderar självförnyande stamceller och differentierade multi-lineageceller1,2. Organoiderna i många organ har etablerats antingen från pluripotenta eller vuxna stamceller av väldefinierade nischfaktorer inklusive tarmen, hjärnan, tjocktarmen, njuren, levern, bukspottkörteln, sköldkörteln, magen, huden och lungan3,4,5,6,7 . Organoiderna rekapitulerar fysiska cellfunktioner genom att efterlikna antingen utveckling (som härrör från embryonala eller inducerade pluripotenta stamceller, PSC) eller homeostas/regenereringsprogression (härrör från vuxna stamceller, ASCs), vilket öppnar nya vägar inom sjukdomsforskning och terapi8,9.

Som det största organet hos däggdjur är levern främst ansvarig för lagring, metabolism och avgiftning. Två typer av epitelial celltyper, hepatocyter och cholangiocyter, konstruera den grundläggande enheten i en leverlobule. Hepatocyter är ansvariga för 70-80% av leverfunktionen10. Även om levern har anmärkningsvärd regenereringskapacitet, sker snabb förlust av hepatocytfunktioner under traditionell monolayer-odling av dysreglerad cellpolarisering och dedifferentiation, vilket ökar behovet av forskare och kliniker att bygga “gap-överbryggande” levermodeller i en maträtt. Fram till nyligen hade dock ex vivo-expansionsmodellerna från primära hepatocyter inte varit väletablerade11,12,13,14,15. Leverorganoider kan etableras från embryonala/inducerade pluripotenta stamceller, fibroblastkonvertering till hepatocytliknande celler och vävnadsbaserade celler. Utvecklingen av leverorganoider ökar tillämpningen av en in vitro-modell för läkemedelsskärmar och levertoxicitetsanalyser16,17.

Här beskriver vi ett detaljerat protokoll för att fastställa lever organoider från murine primära hepatocyter. Genom att använda detta protokoll, vi inrätta ett in vitro kultursystem av hepatocyt organoider med två perfusioner av kollagenas. Dessa organoider kan passeras för långsiktig expansion i månader. Deras fysiologiska funktion är mycket förenlig med hepatocyter. Dessutom ger vi också en detaljerad beskrivning av hur man utför genetisk manipulation, såsom lentivirusinfektion, siRNA-transduktion och CRISPR-Cas9-teknik med hjälp av organoider. Förökningen av hepatocytorganoider belyser möjligheten att använda organoider för att förstå leverbiologi och utveckla personliga och translationella medicinska metoder.

Protocol

Alla mössexperiment godkändes av Animal Care and Use Committee vid School of Basic Medical Sciences vid Shandong University och utfördes enligt licensen enligt Home Office riktlinjer och förordningar (Nr. ECSBMSSDU2019-2-079). OBS: Detta protokoll används främst för att odla 3D-organoider från isolerade primära hepatocyter. 1. Upprättande av Murine Hepatocyte Organoid Kultur OBS: Extracellulär matris som Matrigel eller BME använ…

Representative Results

Hepatocytorganoiderna från kvinnliga Alb-Cre; Rosa26-GFP mus (8 veckor) observerades fem dagar efter sådd (figur 1A). Organoiderna fortplantar sig med Ki67 positiv färgning (figur 1B). Störande uttryck av representativa gener i hepatocyt organoider antingen genom siRNA transfection eller lentivirus infektion undersöktes av qRT-PCR och västra blot. Resultaten visas i figur 2A och 2B. Figur …

Discussion

Förmågan att odla mogna hepatocyter under långa perioder är grundläggande för att studera lever grundläggande vetenskap, läkemedelstoxikologi och hepatotropa värdmikrobiologi infektioner såsom malaria och hepatitvirus. Med en väldefinierad nisch inrättar protokollet här ett kultursystem för hepatocyter. Detta protokoll driver mogna hepatocyter att expandera i 3D-kulturen med en heterogenitet som rekapitulerar cell-cellinteraktion, de flesta hepatocytfunktion och genetiska modifieringar, vilket möjliggör d…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar professor Hans Clevers för att han vänligen tillhandahåller cellinjerna för att producera rekombinant R-spondin1. Detta arbete stöddes av bidrag från National Key R&D Program of China (2019YFA0111400), National Natural Science Foundation of China (31970779) till H.H., och Funds for Youth Interdisciplinary and Innovation Research Group of Shandong University (2020QNQT003) till H.H.

Materials

Perfusion Buffer
EGTA Sangon Bitech A600077-0100 3.50 g/L
Glucose Sangon Bitech A100188-0500 9.00 g/L
KCl Sangon Bitech A100395-0500 4.00 g/L
Na2HPO4·12H2O Sangon Bitech A501727-0500 1.51 g/L
NaCl Sangon Bitech A501218-0001 80.0 g/L
NaH2PO4·2H2O Sangon Bitech A610404-0500 0.78 g/L
NaHCO3 Sangon Bitech A500873-0500 3.50 g/L
Phenol Red Sangon Bitech A100882-0025 0.06 g/L
Digestion Buffer
CaCl2 Sangon Bitech A501330-0005 0.50 M
Collagenase IV Sigma C1639 0.10 mg/mL
HEPES Sangon Bitech C621110-0010 23.80 g/L
KCl Sangon Bitech A100395-0500 4.00 g/L
Na2HPO4·12H2O Sangon Bitech A501727-0500 1.51 g/L
NaCl Sangon Bitech A501218-0001 80.0 g/L
NaH2PO4·2H2O Sangon Bitech A610404-0500 0.78 g/L
NaHCO3 Sangon Bitech A500873-0500 3.50 g/L
Tip-wash Buffer
Fetal Bovine Serum Gibco 10091148 stored at 4 °C
DPBS Gibco C14190500BT0 stored at 4 °C
Wash Medium
Advanced DMEM/F12 Invitrogen 12634-010 stored at 4 °C
GlutaMAX Gibco 35050-061 100 X
HEPES Gibco 15630-080 100 X
Penicillin/streptomycin Sangon Bitech  A600135-0025 100 X
Culture Medium
A83-01 Tocris 2939 Stock concentration 500 µM, final
concentration 2 µM
Advanced DMEM/F12 Invitrogen 12634-010 stored at 4 °C
B-27 supplement 50x, minus vitamin A Gibco 1704-044 50 X
Chir 99021 Tocris 4423 Stock concentration 30 mM, final
concentration 3 µM
DMEM/F12 Gibco 11330032 stored at 4 °C
Gastrin I Tocris 3006 Stock concentration 100 mM, final
concentration 10 nM
GlutaMAX Gibco 35050-061 100 X
HEPES Gibco 15630-080 100 X
Matrigel martix BD 356231 stored at -20 °C
N-acetylcysteine Sigma Aldrich A9165 Stock concentration 500 mM, final
concentration 1 mM
Nictinamide Sigma Aldrich N0636 Stock concentration 1 M, final concentration 3 mM
Penicillin/streptomycin Sangon Bitech  A600135-0025 100 X
Recombinant human EGF Peprotech AF-100-15 Stock concentration 100 µg/ml,final concentration 50 ng/ml
Recombinant human FGF10 Peprotech 100-26 Stock concentration 100 µg/ml, final concentration 100 ng/ml
Recombinant human HGF Peprotech 100-39 Stock concentration 100 µg/ml, final concentration 25 ng/ml
Recombinant Human TGF-α Peprotech 100-16A Stock concentration 100 µg/ml, final concentration 100 ng/ml
Recombinant Human TNF-α Origene TP750007-1000 Stock concentration 100 µg/ml, final concentration 100 ng/ml
Rho kinase inhibitor Y-27632 Abmole Bioscience Y-27632 dihydrochloride Stock concentration 10 mM, final concentration 10 µM
Rspondin-1conditioned medium Stable cell line generated in the Hu Lab. Final concentration 15%.
Others
0.22 µm filter Millipore SCGPT01RE
16 # silicone tube LangerPump
24 well, suspension Greiner bio-one GN662102-100EA
37 °C Water Bath
70 µm filter BD 352350
Accutase stemcell AT-104 stored at 4 °C
Anti-CTNNB1 BD 610154 Mouse
Anti-GAPDH CST 5174S Rabbit
Anti-HDAC7 Abcam ab50212 Mouse
Anti-KI67 Abcam ab15580 Rabbit
Biological safety cabinet ESCO CCL-170B-8
Cell Recovery Solution Corning 354253 stored at 4 °C
Centrifuge 5430 eppendorf 542700097
CO2 incubator ESCO AC2-4S1
DMSO Sangon Bitech  A100231 stored at RT
EVOS FL Color Imaging Systems Invitrogen AME4300
Hdac3 siRNA Guangzhou RiboBio Co., Ltd. siG2003180909192555 stored at -20 °C
Hdac7 lentivirus ShanghaiGenePharmaCo.,Ltd LV2020-2364 stored at -80 °C
Hitrans G A Shanghai Genechem Co.,Ltd. REVG004 Increased virus infection efficiency
Image Pro Plus software Media Cybernetics, Bethesda, MD, USA version 6.0
Lipofectamin RNAiMAX Transfection Reagent Invitrogen 13778150 Increased virus infection efficiency
Live cell dye Luna F23001 stored at 4 °C
Low-speed desktop centrifuge cence TD5A-WS/TD5AWS
Nucleofactor-α 2b Device Lonza
Opti-MEM Gibco 31985070 stored at 4 °C
Pasteur pipette Sangon Bitech F621006-0001
Peristaltic pump LangerPump BT100-2J
PVDF membrane Millipore IPVH00010 Activate with methanol
PX458 Addgene 48138 stored at -80 °C
Refrigerated centrifuge Thermo Scientific Heraeus Labofuge 400
RSL3 MCE HY-100218A Stock concentration 10 mM, final concentration 4 µM
Trypsin/EDTA Gibico 25200072 stored at 4 °C
Wee1 siRNA Guangzhou RiboBio Co., Ltd. siG2003180909205971 stored at -20 °C

Riferimenti

  1. Lancaster, M. A., Knoblich, J. A. Organogenesis in a dish: modeling development and disease using organoid technologies. Science. 345 (6194), 124-125 (2014).
  2. Sasai, Y. Next-generation regenerative medicine: organogenesis from stem cells in 3D culture. Cell Stem Cell. 12 (5), 520-530 (2013).
  3. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459 (7244), 262-265 (2009).
  4. Paola, A., et al. Individual brain organoids reproducibly form cell diversity of the human cerebral cortex. Nature. 570, 523-527 (2019).
  5. Atsuhiro, T., Ryuichi, N. Higher-Order Kidney Organogenesis from Pluripotent Stem Cells. Cell Stem Cell. 21 (6), 730-746 (2017).
  6. Huch, M., et al. In vitro expansion of single Lgr5+ liver stem cells induced by Wnt-driven regeneration. Nature. 494 (7436), 247-250 (2013).
  7. Wang, D. S., et al. Long-Term Expansion of Pancreatic Islet Organoids from Resident Procr + Progenitors. Cell. 180 (6), 1198-1211 (2020).
  8. Jarno, D., Hans, C. Organoids in cancer research. Nature Reviews Cancer. 18, 407-418 (2018).
  9. Hans, C. Modeling Development and Disease with Organoids. Cell. 165 (7), 1586-1597 (2016).
  10. Forbes, S. J., Newsome, P. N. Liver regeneration-mechanisms and models to clinical application. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 13 (8), 473-485 (2016).
  11. Zhang, K., et al. In Vitro Expansion of Primary Human Hepatocytes with Efficient Liver Repopulation Capacity. Cell Stem Cell. 23 (6), 806-819 (2018).
  12. Katsuda, T., et al. Conversion of Terminally Committed Hepatocytes to Culturable Bipotent Progenitor Cells with Regenerative Capacity. Cell Stem Cell. 20 (1), 41-55 (2017).
  13. Hu, H., et al. Long-Term Expansion of Functional Mouse and Human Hepatocytes as 3D Organoids. Cell. 175 (6), 1591-1606 (2018).
  14. Peng, W., et al. Inflammatory Cytokine TNFalpha Promotes the Long-Term Expansion of Primary Hepatocytes in 3D Culture. Cell. 175 (6), 1607-1619 (2018).
  15. Xiang, C., et al. Long-term functional maintenance of primary human hepatocytes in vitro. Science. 364 (6438), 399-402 (2019).
  16. Huch, M., et al. Long-term culture of genome-stable bipotent stem cells from adult human liver. Cell. 160 (1-2), 299-312 (2015).
  17. Broutier, L., et al. Culture and establishment of self-renewing human and mouse adult liver and pancreas 3D organoids and their genetic manipulation. Nature Protocol. 11 (9), 1724-1743 (2016).
check_url/it/62438?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Lian, J., Meng, X., Zhang, X., Hu, H. Establishment and Genetic Manipulation of Murine Hepatocyte Organoids. J. Vis. Exp. (180), e62438, doi:10.3791/62438 (2022).

View Video