Summary

Pre-chiasmatisk, enkelt injektion af autologt blod for at inducere eksperimentel subaraknoid blødning i en rottemodel

Published: June 18, 2021
doi:

Summary

Subarachnoid blødning fortsætter med at bære en høj byrde af dødelighed og sygelighed hos mennesket. For at lette yderligere forskning i tilstanden og dens patofysiologi præsenteres en præ-chiasmatisk, enkelt injektionsmodel.

Abstract

På trods af fremskridt i behandlingen i løbet af de sidste årtier bærer subaraknoid blødning (SAH) fortsat en høj byrde af sygelighed og dødelighed, der stort set rammer en ret ung befolkning. Flere dyremodeller af SAH er blevet udviklet til at undersøge de patofysiologiske mekanismer bag SAH og til at teste farmakologiske interventioner. Den præ-chiasmatiske, enkelt injektionsmodel i rotten, der præsenteres i denne artikel, er en eksperimentel model af SAH med et forudbestemt blodvolumen. Kort sagt bedøves dyret, intuberes og holdes under mekanisk ventilation. Temperaturen reguleres med en varmepude. Et kateter placeres i halearterien, hvilket muliggør kontinuerlig blodtryksmåling samt blodprøvetagning. Atlantooccipitalmembranen skæres, og et kateter til trykoptagelse placeres i cisterna magna for at muliggøre intracerebral trykmåling. Dette kateter kan også bruges til intratekale terapeutiske indgreb. Rotten placeres i en stereotaksisk ramme, et burrhul bores anteriort til bregmaen, og et kateter indsættes gennem burrhullet og placeres lige foran den optiske chiasme. Autologt blod (0,3 ml) trækkes ud af halekateteret og injiceres manuelt. Dette resulterer i en stigning i intracerebralt tryk og et fald i cerebral blodgennemstrømning. Dyret holdes bedøvet i 30 minutter og gives subkutan saltvand og smertestillende midler. Dyret ekstuberes og returneres til sit bur. Den præchiasmatiske model har en høj reproducerbarhedshastighed og begrænset variation mellem dyr på grund af det forudbestemte blodvolumen. Det efterligner SAH hos mennesker, hvilket gør det til en relevant model for SAH-forskning.

Introduction

Ikke-traumatisk subaraknoid blødning (SAH) er en form for slagtilfælde, der repræsenterer omkring 5% af alle tilfælde. Den mest almindelige årsag til ikke-traumatisk SAH er den pludselige brud på en aneurisme (aSAH), som tegner sig for 85% af SAH’erne. Andre årsager omfatter brud på en arterio-venøs misdannelse, koagulopatier og brud på vener i perimesencephalic blødning1. Incidensraten er 9 pr. 100.000 personår med dødelighed omkring en ud af tre og en anden tredjedel, der kræver støtte fra dagligdagen efter SAH 2,3.

Efter indledende stabilisering og diagnosebekræftelse afhænger behandlingen af blødningens sværhedsgrad. De hårdest ramte patienter vil få indsat et ekstraventrikulært dræn i ventriklerne for at reducere det intracerebrale tryk (ICP) og blive indlagt på neurointensivafdelingen, hvor de overvåges nøje. Patienterne vil gennemgå en angiografi for at identificere den (sandsynlige) aneurisme og derefter få aneurismet oprullet eller klippet for at forhindre genblødning4. På trods af adskillige forsøg med farmakologiske terapier har kun nimodipin, en calciumkanalantagonist, vist sig at forbedre resultaterne5. Flere kliniske forsøg er i øjeblikket i gang. Se anmeldelsen af Daou og kolleger for en omfattende liste6.

Bruddet af en aneurisme er blevet beskrevet som den pludselige indtræden af den værste hovedpine, der nogensinde er oplevet, eller en tordenklaphovedpine. Bruddet resulterer i en kraftig stigning i ICP efterfulgt af en reduktion i cerebral blodgennemstrømning (CBF). Denne reduktion resulterer i global iskæmi i hjernen, hvilket kan resultere i bevidsthedstab. Denne mere mekanistiske vej sammen med den initierede nedbrydning af de ekstravaserede elementer i blodet giver anledning til cytokinfrigivelse og aktivering af det medfødte immunsystem, hvilket resulterer i steril neuroinflammation. Desuden observeres ofte nedbrydning af blod-hjerne-barrieren, hvilket resulterer i cerebralt ødem og forstyrrelse i ionhomeostasen. Alle disse ændringer og mere, opfundet tidlig hjerneskade (EBI), forekommer inden for de første par dage og resulterer i neuronalt tab og apoptose7.

Ca. 1/3 af patienterne ramt af aSAH vil udvikle forsinket cerebral iskæmi (DCI) mellem dag 4-148. DCI defineres som enten debut af en fokal, neurologisk svækkelse eller et fald på mindst to point på Glasgow komaskalaen, der varer i mindst 1 time, når andre årsager, herunder anfald og genblødning, er udelukket. DCI er forbundet med en øget risiko for død og nedsat funktionsresultat efter aSAH9. Cerebral vasospasme (CVS), indsnævring af cerebrale arterier, har været kendt for at være forbundet med DCI i årtier og blev tidligere anset for at være den eneste årsag til DCI. Det er siden blevet vist, at CVS kan forekomme uden udvikling af DCI, og flere faktorer, herunder mikrovaskulær trombose og indsnævring, kortikal spredningsdepression og et inflammatorisk respons af EBI er siden blevet identificeret10,11,12.

På grund af EBI’s og DCI’s store indflydelse på sygdomsforløbet og udfaldet af de ramte patienter, skal dyremodeller efterligne disse i videst muligt omfang, samtidig med at de stadig er reproducerbare. Forskere har anvendt en bred vifte af forskellige modeller i en række dyr fra mus til ikke-menneskelige primater for at forsøge at simulere aSAH. Sprague-Dawley og Wistar vildtype rotter er i øjeblikket de mest almindeligt anvendte forsøgsdyr, og de mest almindelige modeller er den endovaskulære perforeringsmodel, cisterna-magna dobbeltinjektionsmodellen og endelig den præ-chiasmatiske enkeltinjektionsmodel, som vil blive beskrevet i denne artikel13.

Den præ-chiasmatiske, enkeltinjektionsmodel blev oprindeligt udviklet af Prunell og kolleger for at imødegå nogle af manglerne ved de andre eksperimentelle modeller14. Når operationen mestres, er den meget reproducerbar og minimerer variation mellem dyr. Modellen efterligner SAH hos mennesker på flere punkter, herunder den pludselige stigning i ICP efter injektion af blod, hvilket resulterer i forbigående global iskæmi på grund af et fald i CBF15,16. Det påvirker den forreste cirkulation, hvor de fleste aSAH hos mennesker forekommer17. Dødeligheden varierer fra 10% -33% afhængigt af undersøgelsen og mængden af injiceret blod14,18. Forsinket celledød og neuroinflammation kan påvises på dag 2 og 7, hvorved der tilvejebringes variabler til undersøgelse af konsekvenserne af EBI og DCI 19,20.

Studiet præsenterer en opdateret beskrivelse af den præchiasmatiske enkeltinjektionsmodel hos rotter sammen med en beskrivelse af, hvordan ICP-sonden kan udnyttes som port til intratekal administration af lægemidler.

Protocol

Denne procedure udføres i overensstemmelse med EU’s direktiv 2010/63/EU om beskyttelse af dyr, der anvendes til videnskabelige formål og er godkendt af Dyreforsøgstilsynet (licens nr. 2016-15-0201-00940). Kirurgi udføres ved hjælp af aseptisk teknik i videst muligt omfang, herunder sterile instrumenter, handsker, katetre og suturer. Undersøgelsen anvendte han- og hunrotter fra Sprague-Dawley, der vejede 230-350 g, grupperet i 12-timers lys/mørk cyklus med konstant temperatur på 22 °C (± 2 °C) og fugtighed på …

Representative Results

Kvinder har en øget risiko for aSAH sammenlignet med mænd. På trods af dette anvendes mandlige gnavere primært i forsøg på grund af mulig bias fra heterogenitet af østruscyklus hos kvinder. De repræsentative resultater, der præsenteres her, er fra en nylig publikation, der sammenligner hun- og hanrotter, hvilket bekræfter, at modellen giver lignende resultater hos hundyr sammenlignet med hanrotterpå 21 år. Undersøgelsen omfattede 34 hunrotter fra Sprague-Dawley (18 SAH’er og 16 shams)…

Discussion

Den præchiasmatiske enkeltinjektionsmodel af SAH efterligner flere vigtige elementer i human SAH, herunder stigningen i ICP, reduktion af CBF, forbigående global iskæmi, opregulering af neuroinflammatoriske markører og CVS 14,15,16,18,19,20. ICP-sonden blev også anvendt som port til intratekal administration (<strong cla…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Arbejdet er støttet af Lundbeckfonden og Lundbeck Grant of Excellence (nr. R59-A5404). Funders havde ingen rolle i nogen del af manuskriptet.

Materials

16 G peripheral vein catheter BD Venflon 393229 Needle shortened, distal 1 cm curved. Wings removed
Anesthesia bell/ chamber Unknown
Blood gas analyzer Radiometer ABL80
Blood pressure (BP) monitor Adinstruments ML117 Connects to Powerlab
Curved forceps, 12 cm x 3 F.S.T 11001-12 For anesthesia
Cylindrical pillow, 28 cm x 4 cm Homemade Made from surgical towels
Data acquisition hardware Adinstruments ML870 Powerlab
Data acquistion software Adinstruments LabChart 6.0
Drill KMD 1189
Drill controller Silfradent 300 IN
Flexible light Schott KL200
Heating pad Minco 1135
Hypodermic needle, 20 G KD Medical 301300 Connects to stereotaxic frame
ICP monitor Adinstruments ML117 Connects to Powerlab
Isoflurane vaporizer Ohmeda TEC3
Laptop Lenovo T410
Laser doppler monitor Adinstruments ML191
Laser doppler probe Oxford Optronics MSF100XP Connects to laser doppler monitor
Needle holder, 13 cm F.S.T 12001-13 For anesthesia
Precision syringe, 0.025 mL Hamilton 547407
Stereotaxic frame Kopf Instruments M900
Surgical microscope Carl Zeiss F170
Suture needle Allgaier 1245 For anesthesia
Temperaure controller CWE,INC. TC-1000
Transducer x 2 Adinstruments MLT0699 Connects to BP and ICP monitor
Ventilator Ugo Basile 7025
Veterinary clipper Aesculap GT421
3-pronged Blair retractor, 13.5 cm Agnthos 17022–13
Blunt Alm retractor F.S.T 17008-07
Curved forceps, 12 cm x 2 F.S.T 11001-12
Needle holder, 13 cm F.S.T 12001-13
Straight Dumont forceps, 11 cm F.S.T 11252-00
Straight Halsted-Mosquito hemostat x 2 F.S.T 13008-12
Straight Iris scissor, 9 cm F.S.T 14090-09
Straight Vannas scissor, 10.5 cm F.S.T 15018-10
Absorpable swabs Kettenbach 31603
Black silk thread, 4-0, 5 x 15 cm Vömel 14757
Bone wax Aesculap 1029754
Carbomer eye gel 2 mg/g Paranova
Cotton swab Heinz Herenz WA-1
Cotton tipped applicator x 4 Selefa 120788
Hypodermic needle, 23 G x2 KD Medical 900284 Connects to stopcock. Remove distal end
Hypodermic needle, 23 G x3 KD Medical 900284 Remove distal end. 2 connects to stopcock, 1 to syringe
ICP probe: Homemade Made of the following:
Polythene tubing, 20 mm Smiths medical 800/100/200 Inner diameter (ID): 0.58 mm, Outer diameter (OD): 0.96 mm.
Silicone tubing, 10 mm Fisher 15202710 ID: 0.76 mm, OD: 2.4 mm.
Silicone tubing, 2 mm Fisher 11716513 ID: 1.0 mm, OD: 3.0 mm.
Micro hematocrit tubes Brand 7493 11
OP-towel, 45 cm x75 cm Mölnlycke 800430
PinPort adapter, 22 G Instech PNP3F22
PinPort injector Instech PNP3M
Polythene tubing, 2 x 20 cm Smiths medical 800/100/200 Connects to syringe. ID: 0.58 mm, OD: 0.96 mm.
Rubberband Unknown
Scalpel, 10 blade Kiato 23110
Spinalneedle, 25 G x 3.5'' Braun 5405905-01
Stopcock system, Discofix x 2 Braun 16494C Connects to transducer
Suture, 4-0, monofil, non-resorbable x 3 Ethicon EH7145H
Syringe, 1 mL BD Plastipak 1710023
Syringe, luer-lock, 10 mL x 4 BD Plastipak 305959 Connects to transducer
Tissue adhesive glue 3M 1469SB
0.5% Chlorhexidine spirit Faaborg Pharma 210918
Carprofen 50 mg/mL ScanVet 43715 Diluted 1:10
Isoflurane Baxter
Isotonic saline Amgros 16404
Lidocaine-Adrenaline 10 mg/5 µg/mL Amgros 16318

Riferimenti

  1. van Gijn, J., Kerr, R. S., Rinkel, G. J. Subarachnoid haemorrhage. Lancet. 369 (9558), 306-318 (2007).
  2. de Rooij, N. K., Linn, F. H. H., vander Plas, J. A., Algra, A., Rinkel, G. J. E. Incidence of subarachnoid haemorrhage: a systematic review with emphasis on region, age, gender and time trends. Journal of Neurology, Neurosurgery, and Psychiatry. 78 (12), 1365-1372 (2007).
  3. Feigin, V. L., Lawes, C. M., Bennett, D. A., Barker-Collo, S. L., Parag, V. Worldwide stroke incidence and early case fatality reported in 56 population-based studies: a systematic review. The Lancet, Neurology. 8 (4), 355-369 (2009).
  4. Maher, M., Schweizer, T. A., Macdonald, R. L. Treatment of spontaneous subarachnoid hemorrhage: guidelines and gaps. Stroke. 51 (4), 1326-1332 (2020).
  5. Pickard, J. D., et al. Effect of oral nimodipine on cerebral infarction and outcome after subarachnoid haemorrhage: British aneurysm nimodipine trial. British Medical Journal (Clinical Research ed.). 298 (6674), 636-642 (1989).
  6. Daou, B. J., Koduri, S., Thompson, B. G., Chaudhary, N., Pandey, A. S. Clinical and experimental aspects of aneurysmal subarachnoid hemorrhage. CNS Neuroscience and Therapeutics. 25 (10), 1096-1112 (2019).
  7. Fujii, M., et al. Early brain injury, an evolving frontier in subarachnoid hemorrhage research. Translational Stroke Research. 4 (4), 432-446 (2013).
  8. Roos, Y. B., et al. Complications and outcome in patients with aneurysmal subarachnoid haemorrhage: A prospective hospital based cohort study in the Netherlands. Journal of Neurology, Neurosurgery, and Psychiatry. 68 (3), 337-341 (2000).
  9. Vergouwen, M. D. I., et al. Definition of delayed cerebral ischemia after aneurysmal subarachnoid hemorrhage as an outcome event in clinical trials and observational studies: proposal of a multidisciplinary research group. Stroke. 41 (10), 2391-2395 (2010).
  10. Brown, R. J., Kumar, A., Dhar, R., Sampson, T. R., Diringer, M. N. The relationship between delayed infarcts and angiographic vasospasm after aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Neurosurgery. 72 (5), 702-707 (2013).
  11. Dhar, R., et al. Relationship between angiographic vasospasm and regional hypoperfusion in aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Stroke. 43 (7), 1788-1794 (2012).
  12. Macdonald, R. L. Delayed neurological deterioration after subarachnoid haemorrhage. Nature Reviews. Neurology. 10 (1), 44-58 (2014).
  13. Marbacher, S., et al. Systematic review of in vivo animal models of subarachnoid hemorrhage: species, standard parameters, and outcomes. Translational Stroke Research. 10 (3), 250-258 (2019).
  14. Prunell, G. F., Mathiesen, T., Svendgaard, N. -. A. A new experimental model in rats for study of the pathophysiology of subarachnoid hemorrhage. Neuroreport. 13 (18), 2553-2556 (2002).
  15. Prunell, G. F., Mathiesen, T., Diemer, N. H., Svendgaard, N. A. Experimental subarachnoid hemorrhage: subarachnoid blood volume, mortality rate, neuronal death, cerebral blood flow, and perfusion pressure in three different rat models. Neurosurgery. 52 (1), 165-176 (2003).
  16. Prunell, G. F., et al. Experimental Subarachnoid Hemorrhage: Cerebral blood flow and brain metabolism during the acute phase in three different models in the rat. Neurosurgery. 54 (2), 426-437 (2004).
  17. Velthuis, B. K., et al. Subarachnoid hemorrhage: Aneurysm detection and preoperative evaluation with CT angiography. Radiology. 208 (2), 423-430 (1998).
  18. Leclerc, J. L., et al. A comparison of pathophysiology in humans and rodent models of subarachnoid hemorrhage. Frontiers in Molecular Neuroscience. 11, 71 (2018).
  19. Prunell, G. F., Svendgaard, N. A., Alkass, K., Mathiesen, T. Inflammation in the brain after experimental subarachnoid hemorrhage. Neurosurgery. 56 (5), 1082-1091 (2005).
  20. Prunell, G. F., Svendgaard, N. A., Alkass, K., Mathiesen, T. Delayed cell death related to acute cerebral blood flow changes following subarachnoid hemorrhage in the rat brain. Journal of Neurosurgery. 102 (6), 1046-1054 (2005).
  21. Spray, S., Haanes, K. A., Edvinsson, L., Johansson, S. E. Subacute phase of subarachnoid haemorrhage in female rats: increased intracranial pressure, vascular changes and impaired sensorimotor function. Microvascular Research. 135, 104127 (2020).
  22. Ansar, S., Vikman, P., Nielsen, M., Edvinsson, L. Cerebrovascular ETB, 5-HT1B, and AT1 receptor upregulation correlates with reduction in regional CBF after subarachnoid hemorrhage. American Journal of Physiology – Heart and Circulatory Physiology. 293 (6), 3750-3758 (2007).
  23. Hansen-Schwartz, J., et al. Subarachnoid hemorrhage enhances endothelin receptor expression and function in rat cerebral arteries. Neurosurgery. 52 (5), 1188-1194 (2003).
  24. Hayman, E. G., Wessell, A., Gerzanich, V., Sheth, K. N., Simard, J. M. Mechanisms of global cerebral edema formation in aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Neurocritical Care. 26 (2), 301-310 (2017).
  25. Miyata, H., et al. Vasa vasorum formation is associated with rupture of intracranial aneurysms. Journal of Neurosurgery. , 1-11 (2019).
  26. Tada, Y., et al. Roles of hypertension in the rupture of intracranial aneurysms. Stroke. 45 (2), 579-586 (2014).
  27. Nuki, Y., et al. Elastase-induced intracranial aneurysms in hypertensive mice. Hypertension. 54 (6), 1337-1344 (1979).
  28. Marbacher, S., Wanderer, S., Strange, F., Grüter, B. E., Fandino, J. Saccular aneurysm models featuring growth and rupture: A systematic review. Brain Sciences. 10 (2), 101 (2020).
  29. Altay, O., et al. Isoflurane on brain inflammation. Neurobiology of Disease. 62, 365-371 (2014).
  30. Hockel, K., Trabold, R., Schöller, K., Török, E., Plesnila, N. Impact of anesthesia on pathophysiology and mortality following subarachnoid hemorrhage in rats. Experimental and Translational Stroke Medicine. 4 (1), 5 (2012).
  31. Kamp, M. A., et al. A Systematic and meta-analysis of mortality in experimental mouse models analyzing delayed cerebral ischemia after subarachnoid hemorrhage. Translational Stroke Research. 8 (3), 206-219 (2017).
  32. Povlsen, G. K., Johansson, S. E., Larsen, C. C., Samraj, A. K., Edvinsson, L. Early events triggering delayed vasoconstrictor receptor upregulation and cerebral ischemia after subarachnoid hemorrhage. BMC Neuroscience. 14, 34 (2013).
check_url/it/62567?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Bömers, J. P., Johansson, S. E., Edvinsson, L., Mathiesen, T. I., Haanes, K. A. Pre-Chiasmatic, Single Injection of Autologous Blood to Induce Experimental Subarachnoid Hemorrhage in a Rat Model. J. Vis. Exp. (172), e62567, doi:10.3791/62567 (2021).

View Video