Detta dokument presenterar en partiell heterotopic osteomyocutaneous lock transplantation protokoll hos råttor och dess potentiella resultat i halvtid uppföljning.
Vascularized sammansatta allotransplantationer (VCA) representerar det mest avancerade återuppbyggnadsalternativet för patienter utan autologa kirurgiska möjligheter efter en komplex vävnad defekt. Ansikts- och handtransplantationer har förändrat vanställda patienters liv, vilket ger dem ett nytt estetiskt och funktionellt socialt organ. Trots lovande resultat är VCA fortfarande underpresterade på grund av liv-långa immunsuppression komorbiditeter och infektiös komplikationer. Råttan är en idealisk djurmodell för in vivo-studier som undersöker immunologiska vägar och graftavstötningsmekanismer. Råttor används också i stor utsträckning i nya kompositvävnad moderplantor bevarande tekniker, inklusive perfusion och cryopreservation studier. Modeller som används för VCA hos råttor måste vara reproducerbara, tillförlitliga och effektiva med låg postoperativ sjuklighet och dödlighet. Heterotopic lem transplantation förfaranden uppfyller dessa kriterier och är lättare att utföra än ortopic lem transplantationer. Att behärska mikrokirurgiska modeller för gnagare kräver gedigen erfarenhet av mikrokirurgi och djurvård. Herein rapporteras en tillförlitlig och reproducerbar modell av partiell heterotopic osteomyocutaneous lock transplantation hos råttor, postoperativa resultat och medel för att förebygga potentiella komplikationer.
Under de senaste två decennierna har VCA utvecklats som en revolutionerande behandling för patienter som lider av svår vanställdhet inklusive ansikte1,amputationer i övredelen 2, penis3, och andra komplexa vävnadsdefekter4,5. Konsekvenserna av långlivade immunsuppression hindrar dock fortfarande en bredare tillämpning av dessa komplexa rekonstruktiv operationer. Grundforskning är avgörande för att förbättra strategier mot avslag. Att öka VCA:s bevarandetid är också viktigt för att förbättra transplantationslogistiken och öka givarpoolen (eftersom VCA-givare måste uppfylla fler kriterier än solida organdonatorer, inklusive hudton, anatomisk storlek, kön). I detta sammanhang används råtta lem transplantationer i stor utsträckning i studier på immunavstötning av allografts6,7, ny tolerans induktion protokoll8, och bevarandestudier 9,10,11. Därför är dessa VCA-modeller ett nyckelelement att behärska för VCA translationell forskning.
Osteomyocutaneous klaffar har beskrivits i litteraturen som tillförlitliga modeller för att studera VCA hos råttor8,12,13,14. Även om ortopiska hel-lem transplantationer möjliggör långsiktig utvärdering av moderplantor funktion, det är ett tidskrävande förfarande som är associerat med högre postoperativa sjuklighet ochdödlighet 14. Däremot är heterotopiska lem transplantation modeller icke-funktionella, men möjliggör reproducerbara studier på VCA. Postoperativa resultat kan förutses tillförlitligt före starten av en råtta VCA transplantation studie. Denna studie rapporterar en partiell heterotopic osteomyocutaneous lock transplantation modell hos råtta som innehåller ofta möjliga resultat och komplikationer som kan uppstå intraoperativt och postoperatively under en uppföljningsperiod av tre veckor.
Ortopediska lemtransplantationsmodeller hos gnagare har beskrivits i litteraturen15,16,17; De kräver dock en nervreparation, muskelåtersättning och en perfekt osteosyntes av lårbenet, vilket kan vara ett mycket svårt steg. Dessa modeller är också förknippade med en högre sjuklighet och dödlighet hos gnagare14, särskilt i den kortsiktiga uppföljningen eftersom återhämtningen av en normal funk…
The authors have nothing to disclose.
Detta arbete stöddes av kontoret för biträdande försvarsministern för hälsofrågor genom det kongressstyrda medicinska forskningsprogrammet under utmärkelse nr. W81XWH-17-1-0680. Åsikter, tolkningar, slutsatser och rekommendationer är författarnas och stöds inte nödvändigtvis av försvarsdepartementet.
24 GA angiocatheter | BD Insyte Autoguard | 381412 | |
4-0 suture Black monofilament non absorbable suture | Ethicon | 1667 | Used to suture the E-collar to the back of the neck |
4-0 suture Coated Vicryl Plus Antibacterial | Ethicon | VCP496 | |
Adson Tissue Forceps, 11 cm, 1 x 2 Teeth with Tying Platform | ASSI | ASSI.ATK26426 | |
Bipolar cords | ASSI | 228000C | |
Black Polyamide Monofilament USP 10-0, 4 mm 3/8c | AROSurgical | T04A10N07-13 | Used to perform the microvascular anastomoses |
Buprenorphine HCl | Pharmaceutical, Inc | 42023-179-01 | |
Dilating Forceps | Fine science tools (FST) | 18131-12 | |
Dissecting Scissors 15 cm, Round Handle 8 mm diameter, Straight Slender Tapered Blade 7 mm, Lipshultz Pattern | ASSI | ASSI.SAS15RVL | |
Double Micro Clamps 5.5 x 1.5 mm | Fine science tools (FST) | 18040-22 | |
Elizabethan collar | Braintree Scientific | EC-R1 | |
Forceps 13.5 cm long, Flat Handle, 9 mm wide Straight Tips 0.1 mm diameter (x2) | ASSI | ASSI.JFL31 | |
Halsey Micro Needle Holder | Fine science tools (FST) | 12500-12 | |
Heparin Lock Flush Solution, USP, 100 units/mL | BD PosiFlush | 306424 | |
Isoflurane | Patterson Veterinary | 14043-704-06 | |
Jewelers Bipolar Forceps Non Stick 11 cm, straight pointed tip, 0.25 mm tip diameter | ASSI | ASSI.BPNS11223 | |
Lone Star Elastic Stays | CooperSurgical | 3314-8G | Used to retract the inguinal ligament for femoral vessels dissection |
Lone Star Self-Retaining Retractors | CooperSurgical | 3301G | |
Micro-Mosquito Hemostats | Fine science tools (FST) | 13010-12 | Used to retract the inguinal fat pad distally |
Needle Holder, 15 cm Round Handle, 8 mm diameter, Superfine Curved Jaw 0.2 mm tip diameter, without lock | ASSI | ASSI.B1582 | |
Nylon Suture Black Monolfilament 8-0, 6.5 mm 3/8c | Ethilon | 2808G | Used to ligate collateral branches on the femoral vessels |
Offset Bone Nippers | Fine science tools (FST) | 16101-10 | |
S&T Vascular Clamps 5.5 x 1.5 mm | Fine science tools (FST) | 00398-02 | |
Walton scissors | Fine science tools (FST) | 14077-09 |