Summary

Forberedelse af højtemperaturprøvegitre til Cryo-EM

Published: July 26, 2021
doi:

Summary

Dette papir giver en detaljeret protokol til forberedelse af prøvegitter ved temperaturer så høje som 70 ° C, inden nedfrysning til cryo-EM-eksperimenter.

Abstract

Prøvegitterene til kryo-elektronmikroskopi (cryo-EM) eksperimenter fremstilles normalt ved en temperatur, der er optimal til opbevaring af biologiske prøver, for det meste ved 4 °C og lejlighedsvis ved stuetemperatur. For nylig opdagede vi, at proteinstrukturen løst ved lav temperatur muligvis ikke er funktionelt relevant, især for proteiner fra termofile arkæer. Der blev udviklet en procedure til fremstilling af proteinprøver ved højere temperaturer (op til 70 °C) til cryo-EM-analyse. Vi viste, at strukturerne fra prøver fremstillet ved højere temperaturer er funktionelt relevante og temperaturafhængige. Her beskriver vi en detaljeret protokol til forberedelse af prøvegitre ved høj temperatur ved hjælp af 55 °C som eksempel. Forsøget gjorde brug af et forglasningsapparat modificeret ved hjælp af et yderligere centrifugerør, og prøverne blev inkuberet ved 55 °C. De detaljerede procedurer blev finjusteret for at minimere dampkondensation og opnå et tyndt lag is på gitteret. Eksempler på vellykkede og mislykkede eksperimenter gives.

Introduction

Kryo-EM-teknologien til løsning af strukturerne i proteinkomplekser er fortsat med at blive forbedret, især i retning af at opnå strukturer med høj opløsning 1,2. I mellemtiden er landskabet for dets anvendelse også blevet udvidet ved at variere prøvebetingelserne såsom pH eller ligander forud for forglasningsprocessen3, hvilket indebærer forberedelse af prøvegitter efterfulgt af springfrysning 4,5. En anden vigtig betingelse er temperaturen. Selvom cryo-EM-eksperimenter, som røntgenkrystallografi, udføres ved lave temperaturer, afspejler strukturen løst af cryo-EM strukturen ved opløsningstilstanden før vitrifikation. Indtil for nylig bruger størstedelen af enkeltpartikelanalyse (SPA) cryo-EM-undersøgelser prøver, der opbevares på is (dvs. ved 4 ° C) før vitrifikation6, selvom en række undersøgelser bruger prøver ved omkring stuetemperatur 7,8,9,10 eller så højt som 42 ° C 11. I en nylig rapport udførte vi temperaturafhængige undersøgelser af enzymet ketolsyrereduktoisomerase (KARI) fra den termofile arkæon Sulfolobus solfataricus (Sso) ved seks forskellige temperaturer fra 4 °C til 70 °C12. Vores undersøgelser tyder på, at det er vigtigt at forberede prøvegitter ved funktionelt relevante temperaturer, og at cryo-EM er den eneste strukturelle metode, der er praktisk mulig til at løse strukturen af det samme proteinkompleks ved flere temperaturer.

Den største vanskelighed ved forglasning ved høje temperaturer er at minimere dampkondensation og opnå tynd is. Her rapporterer vi den detaljerede protokol, der blev brugt til fremstilling af prøvegitter ved høje temperaturer i vores tidligere undersøgelse af Sso-KARI 12. Vi antager, at læserne eller seerne allerede har erfaring med den samlede prøveforberedelse og databehandlingsprocedurer for cryo-EM-eksperimenter og understreger de aspekter, der er relevante for høj temperatur.

Protocol

BEMÆRK: Denne protokol sigter mod at anvende et modificeret kommercielt vitrifikationsapparat til at forberede kryo-elektronmikroskopi (cryo-EM) prøver ved specifikke temperaturer, især højere end 37 ° C. Den samlede forsøgsopstilling er vist i figur 1. Protokollen bruger 55 °C som eksempel. For de særlige forhold ved andre temperaturer henvises til supplerende tabel 2 i reference12. 1. Fremstilling af forglasningsapparatet <…

Representative Results

Oversigten over lav forstørrelse er vist i figur 5A,B. Panel A er et eksempel på et vellykket gitter. Der er en isgradient fra øverst til venstre (tykkere) til nederst til højre (tyndere eller tom). Et sådant gitter gør det lettere at finde en passende tykkelse af islaget i det midterste område, der er egnet til dataindsamling, såsom de blå og grønne kasser. Gitteret B er for tørt. Firkanterne i gitteret har lys kontrast, hvilket betyder, at islaget er for tyndt, …

Discussion

I trin 1 i protokollen skal du sørge for, at centrifugerøret er installeret godt og ikke falder, når eksperimentet er i gang. På grund af akkumuleringen af et stort antal vanddråber i kammeret, som kan ændre filterpapirets adsorptionskapacitet, anbefales det, at eksperimentets samlede tid ikke overstiger 30 minutter efter, at vitrifikationsapparatets kammer nåede ligevægtstemperaturen. Hvis driftstiden overstiger 30 minutter, skal operatøren udskifte filterpapiret og vente på, at kabinen balancerer temperatur o…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Dr. Hervé Remigy fra Thermo Fisher Scientific for nyttige råd. Kryo-EM-eksperimenterne blev udført på Academia Sinica Cryo-EM Facility (ASCEM). ASCEM er støttet af Academia Sinica (Grant No. AS-CFII-108-110) og Taiwan Protein Project (tilskudsnr. AS-KPQ-109-TPP2). Forfatterne takker også fru Hui-Ju Huang for hjælpen med prøveforberedelsen.

Materials

Falcon tube Falcon 352070 size: 50 mL
Filter paper Ted Pella 47000-100 Ø55/20mm, Grade 595
HI1210 Leica water bath
K100X Electron Microscopy Sciences glow discharge
Quantifoil, 1.2/1.3 200Mesh Cu grid Ted Pella 658-200-CU-100
Titan Krios G3 Thermo Fisher Scientific 1063996 low dose imaging
Vitrobot Mark IV Thermo Fisher Scientific 1086439
Vitrobot Tweezer Ted Pella 47000-500

Riferimenti

  1. Yip, K. M., Fischer, N., Paknia, E., Chari, A., Stark, H. Atomic-resolution protein structure determination by cryo-EM. Nature. 587, 157-161 (2020).
  2. Nakane, T., et al. Single-particle cryo-EM at atomic resolution. Nature. 587, 152-156 (2020).
  3. Chen, C. Y., et al. Use of Cryo-EM to uncover structural bases of pH effect and cofactor bi-specificity of ketol-acid reductoisomerase. Journal of the American Chemical Society. 141, 6136-6140 (2019).
  4. Cabra, V., Samsó, M. Do’s and don’ts of cryo-electron microscopy: A primer on sample preparation and high quality data collection for macromolecular 3D reconstruction. Journal of Visualized Experiments. (95), e52311 (2015).
  5. Klebl, D. P., et al. Need for speed: Examining protein behavior during CryoEM grid preparation at different timescales. Structure. 28 (11), 1238-1248 (2020).
  6. Passmore, L. A., Russo, C. Specimen preparation for high resolution cryo-EM. J. Methods in Enzymology. 579, 51-86 (2016).
  7. Laughlin, T. G., Bayne, A. N., Trempe, J. -. F., Savage, D. F., Davies, K. M. Structure of the complex I-like molecule NDH of oxygenic photosynthesis. Nature. 566, 411-414 (2019).
  8. Gao, Y., et al. Structures and operating principles of the replisome. Science. 363, (2019).
  9. Zhao, Y., Chen, S., Swensen, A. C., Qian, W. -. J., Gouaux, E. Architecture and subunit arrangement of native AMPA receptors elucidated by cryo-EM. Science. 364, 355-362 (2019).
  10. Chen, B., et al. Structural dynamics of ribosome subunit association studied by mixing-spraying time-resolved cryogenic electron microscopy. Structure. 23, 1097-1105 (2015).
  11. Singh, A. K., et al. Structural basis of temperature sensation by the TRP channel TRPV3. Nature Structure and Molecular Biology. 26, 994-998 (2019).
  12. Chen, C. Y., Chang, Y. C., Lin, B. L., Huang, C. H., Tsai, M. D. Temperature-resolved cryo-EM uncovers structural bases of temperature-dependent enzyme functions. Journal of the American Chemical Society. 141, 19983-19987 (2019).
check_url/it/62772?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Chang, Y., Chen, C., Tsai, M. Preparation of High-Temperature Sample Grids for Cryo-EM. J. Vis. Exp. (173), e62772, doi:10.3791/62772 (2021).

View Video