Summary

Klargjøring av høytemperatur prøvegitter for Cryo-EM

Published: July 26, 2021
doi:

Summary

Dette papiret gir en detaljert protokoll for å forberede prøvegitter ved temperaturer så høye som 70 ° C, før dypping for kryo-EM-eksperimenter.

Abstract

Prøvegitterene for kryo-elektronmikroskopi (cryo-EM) eksperimenter fremstilles vanligvis ved en temperatur som er optimal for lagring av biologiske prøver, hovedsakelig ved 4 ° C og noen ganger ved romtemperatur. Nylig oppdaget vi at proteinstrukturen løst ved lav temperatur kanskje ikke er funksjonelt relevant, spesielt for proteiner fra termofil archaea. En prosedyre ble utviklet for å forberede proteinprøver ved høyere temperaturer (opptil 70 ° C) for kryo-EM-analyse. Vi viste at strukturene fra prøver fremstilt ved høyere temperaturer er funksjonelt relevante og temperaturavhengige. Her beskriver vi en detaljert protokoll for fremstilling av prøvegitter ved høy temperatur, med 55 °C som eksempel. Forsøket benyttet et vitrifikasjonsapparat modifisert ved hjelp av et ekstra sentrifugerør, og prøver ble inkubert ved 55 °C. De detaljerte prosedyrene ble finjustert for å minimere dampkondens og oppnå et tynt lag med is på rutenettet. Eksempler på vellykkede og mislykkede eksperimenter er gitt.

Introduction

Kryo-EM-teknologien for å løse strukturene til proteinkomplekser har fortsatt å forbedre seg, spesielt i retning av å oppnå høyoppløselige strukturer 1,2. I mellomtiden har landskapet av applikasjonen også blitt utvidet ved å variere prøveforholdene som pH eller ligander før vitrifiseringsprosessen3, som innebærer fremstilling av prøvegitter etterfulgt av stupfrysing 4,5. En annen viktig betingelse er temperaturen. Selv om kryo-EM-eksperimenter, som røntgenkrystallografi, utføres ved lave temperaturer, reflekterer strukturen løst av cryo-EM strukturen ved løsningstilstanden før vitrifisering. Inntil nylig bruker flertallet av kryo-EM-studier (Single Particle Analysis) prøver som holdes på is (dvs. ved 4 ° C) før vitrifisering6, selv om en rekke studier bruker prøver ved rundt romtemperatur 7,8,9,10 eller så høyt som 42 ° C 11. I en fersk rapport utførte vi temperaturavhengige studier av enzymet ketolsyrereduktoisomerase (KARI) fra den termofile archaeon Sulfolobus solfataricus (Sso) ved seks forskjellige temperaturer fra 4 ° C til 70 ° C12. Våre studier tyder på at det er viktig å forberede prøvegitter ved funksjonelt relevante temperaturer, og at cryo-EM er den eneste strukturelle metoden som er praktisk gjennomførbar for å løse strukturen til det samme proteinkomplekset ved flere temperaturer.

Den største vanskeligheten for vitrifisering ved høye temperaturer er å minimere dampkondens og oppnå tynn is. Her rapporterer vi den detaljerte protokollen som ble brukt til å forberede prøvenett ved høye temperaturer i vår tidligere studie av Sso-KARI 12. Vi antar at leserne eller seerne allerede har erfaring med de generelle prøvepreparerings- og databehandlingsprosedyrene for kryo-EM-eksperimenter og legger vekt på aspektene som er relevante for høy temperatur.

Protocol

MERK: Denne protokollen tar sikte på å bruke et modifisert kommersielt vitrifikasjonsapparat for å forberede kryo-elektronmikroskopi (cryo-EM) prøvene ved bestemte temperaturer, spesielt høyere enn 37 ° C. Det samlede eksperimentelle oppsettet er vist i figur 1. Protokollen bruker 55 °C som eksempel. For de spesifikke forholdene ved andre temperaturer, se tilleggstabell 2 i referanse12. 1. Klargjøring av vitrifikasjonsapparatet <…

Representative Results

Oversikten over lav forstørrelse er vist i figur 5A,B. Panel A er et eksempel på et vellykket rutenett. Det er en isgradient fra øverst til venstre (tykkere) til nederst til høyre (tynnere eller tom). Et slikt rutenett gjør det lettere å finne en passende tykkelse på islaget i midtområdet som er egnet for datainnsamling, for eksempel de blå og grønne boksene. Rutenettet B er for tørt. Rutene i rutenettet har lys kontrast, noe som betyr at islaget er for tynt eller…

Discussion

I trinn 1 i protokollen må du kontrollere at sentrifugerøret er installert godt og ikke faller når eksperimentet pågår. På grunn av akkumulering av et stort antall vanndråper i kammeret, noe som kan endre adsorpsjonskapasiteten til filterpapiret, anbefales det at den totale tiden for forsøket ikke overstiger 30 minutter etter at vitrifikasjonsapparatkammeret nådde likevektstemperaturen. Hvis driftstiden overstiger 30 minutter, må operatøren bytte filterpapir og vente på at hytta balanserer temperatur og fukti…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Dr. Hervé Remigy fra Thermo Fisher Scientific for nyttige råd. Kryo-EM-eksperimentene ble utført ved Academia Sinica Cryo-EM Facility (ASCEM). ASCEM er støttet av Academia Sinica (Grant nr. AS-CFII-108-110) og Taiwan Protein Project (Grant nr. AS-KPQ-109-TPP2). Forfatterne takker også Hui-Ju Huang for hjelpen med prøveprepareringen.

Materials

Falcon tube Falcon 352070 size: 50 mL
Filter paper Ted Pella 47000-100 Ø55/20mm, Grade 595
HI1210 Leica water bath
K100X Electron Microscopy Sciences glow discharge
Quantifoil, 1.2/1.3 200Mesh Cu grid Ted Pella 658-200-CU-100
Titan Krios G3 Thermo Fisher Scientific 1063996 low dose imaging
Vitrobot Mark IV Thermo Fisher Scientific 1086439
Vitrobot Tweezer Ted Pella 47000-500

Riferimenti

  1. Yip, K. M., Fischer, N., Paknia, E., Chari, A., Stark, H. Atomic-resolution protein structure determination by cryo-EM. Nature. 587, 157-161 (2020).
  2. Nakane, T., et al. Single-particle cryo-EM at atomic resolution. Nature. 587, 152-156 (2020).
  3. Chen, C. Y., et al. Use of Cryo-EM to uncover structural bases of pH effect and cofactor bi-specificity of ketol-acid reductoisomerase. Journal of the American Chemical Society. 141, 6136-6140 (2019).
  4. Cabra, V., Samsó, M. Do’s and don’ts of cryo-electron microscopy: A primer on sample preparation and high quality data collection for macromolecular 3D reconstruction. Journal of Visualized Experiments. (95), e52311 (2015).
  5. Klebl, D. P., et al. Need for speed: Examining protein behavior during CryoEM grid preparation at different timescales. Structure. 28 (11), 1238-1248 (2020).
  6. Passmore, L. A., Russo, C. Specimen preparation for high resolution cryo-EM. J. Methods in Enzymology. 579, 51-86 (2016).
  7. Laughlin, T. G., Bayne, A. N., Trempe, J. -. F., Savage, D. F., Davies, K. M. Structure of the complex I-like molecule NDH of oxygenic photosynthesis. Nature. 566, 411-414 (2019).
  8. Gao, Y., et al. Structures and operating principles of the replisome. Science. 363, (2019).
  9. Zhao, Y., Chen, S., Swensen, A. C., Qian, W. -. J., Gouaux, E. Architecture and subunit arrangement of native AMPA receptors elucidated by cryo-EM. Science. 364, 355-362 (2019).
  10. Chen, B., et al. Structural dynamics of ribosome subunit association studied by mixing-spraying time-resolved cryogenic electron microscopy. Structure. 23, 1097-1105 (2015).
  11. Singh, A. K., et al. Structural basis of temperature sensation by the TRP channel TRPV3. Nature Structure and Molecular Biology. 26, 994-998 (2019).
  12. Chen, C. Y., Chang, Y. C., Lin, B. L., Huang, C. H., Tsai, M. D. Temperature-resolved cryo-EM uncovers structural bases of temperature-dependent enzyme functions. Journal of the American Chemical Society. 141, 19983-19987 (2019).
check_url/it/62772?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Chang, Y., Chen, C., Tsai, M. Preparation of High-Temperature Sample Grids for Cryo-EM. J. Vis. Exp. (173), e62772, doi:10.3791/62772 (2021).

View Video