Summary

Protocolo de ecografía nerviosa para detectar neuropatías disinmunes

Published: October 07, 2021
doi:

Summary

En este artículo se presenta un protocolo de ecografía nerviosa en polineuropatías para ayudar al diagnóstico de neuropatías inflamatorias.

Abstract

La ecografía nerviosa se utiliza cada vez más en el diagnóstico diferencial de la polineuropatía como herramienta complementaria a los estudios de conducción nerviosa. Se han descrito alteraciones morfológicas de los nervios periféricos, como el aumento del área de sección transversal (CSA), en diversas polineuropatías inmunomediadas. Los cambios morfológicos más prominentes en la ecografía nerviosa se han descrito para la enfermedad del espectro de la polineuropatía desmielinizante inflamatoria crónica (CIDP). La CIDP puede distinguirse de las polineuropatías hereditarias y otras polineuropatías mediante la medición de la extensión y el patrón de las inflamaciones nerviosas (aumento de la ASC). Los hallazgos típicos en las neuropatías inflamatorias desmielinizantes son inflamaciones nerviosas multifocales con estructura fascicular no homogénea, mientras que el aumento de la ASC en las neuropatías hereditarias desmielinizantes se produce de forma más generalizada y homogénea. En otras neuropatías axonales no inflamatorias, los nervios pueden aparecer con aumentos normales o leves de CSA, especialmente en los sitios de atrapamiento típicos. En este artículo se presentan los requisitos técnicos para la ecografía nerviosa, un procedimiento de exploración que utiliza un protocolo de exploración estandarizado, los valores de referencia actuales para la ASC y los hallazgos patológicos ecográficos típicos en pacientes con neuropatías inflamatorias.

Introduction

Además del examen clínico, la evaluación de cualquier polineuropatía de fibras grandes incluye un examen electrofisiológico para caracterizar la afectación del sistema motor o sensorial y diferenciar el daño axonal del desmielinizante1. En la polineuropatía axonal, la neuropatía tóxica y diabética son las principales causas, mientras que en las polineuropatías desmielinizantes se deben considerar neuropatías hereditarias o inflamatorias como la PIC 2,3,4. Los criterios diagnósticos más utilizados para la PIC son los criterios de la Federación Europea de Sociedades Neurológicas/Sociedad de Nervios Periféricos (EFNS/PNS), establecidos en 2005 y revisados en 2010 y 20215. Estos definen criterios clínicos y electrofisiológicos para diagnosticar la PIC y describen criterios adicionales como la biopsia del nervio para detectar la desmielinización o la inflamación. Sin embargo, en algunos casos, a pesar de un diagnóstico exhaustivo, la causa de la neuropatía sigue siendo ambigua. En estos casos, la ecografía nerviosa ofrece un método complementario para examinar los nervios no funcionalmente sino morfológicamente6. Varios estudios demostraron el uso de la ecografía nerviosa como una herramienta adicional en el diagnóstico de la PDIC, por lo que los criterios revisados de la EFNS/SNP de 2021 implementaron la ecografía nerviosa en la guía5. La ventaja de la ecografía nerviosa en comparación con otros métodos de imagen, como la neurografía por resonancia magnética (RMN), es que puede ser utilizada directamente por los neurólogos tratantes como herramienta de cabecera; Es relativamente rentable. Se puede utilizar repetidamente, ya que no es invasivo y no es doloroso.

Las características típicas de la CIDP observadas en la ecografía nerviosa son el aumento del área transversal (CSA)7,8, que también se encuentra en las polineuropatías hereditarias. En la PDIC, afecta a segmentos nerviosos individuales de forma heterogénea 7,9.

Se han publicado diversos protocolos de exploración 10,11,12,13,14,15 que tratan de clarificar los valores normales de ASC y determinar las posiciones anatómicas adecuadas del examen ecográfico. Algunas de estas posiciones son similares en la mayoría de los protocolos de examen. Sin embargo, no existe un protocolo ampliamente aceptado para estandarizar el proceso de examen y simplificar la interpretación de las mediciones.

En este artículo se muestra el examen ecográfico del nervio mediante un protocolo estandarizado para polineuropatías, se presentan varios valores de referencia para el CSA y se muestran los hallazgos patológicos típicos en pacientes con neuropatías inflamatorias.

Requisitos técnicos para la ecografía nerviosa
La ecografía neuromuscular se realiza en modo B (modo Brillo, imagen bidimensional con niveles de gris) utilizando la imagen compuesta del dispositivo ecográfico correspondiente 6,16. La adquisición de imágenes compuestas permite el control electrónico de los elementos piezoeléctricos de la sonda sónica (transductor) para iluminar la estructura del objetivo desde diferentes ángulos17. Las ondas ultrasónicas se reflejan en varias direcciones debido a la estructura histológica de los nervios periféricos. Como resultado de que el sonido proviene de diferentes ángulos, una parte más significativa de los reflejos que de otro modo se perderían regresa a la sonda de sonido (receptor) y puede generar imágenes. Para la ecografía neuromuscular, se utiliza una sonda de ultrasonido de alta resolución con transductor de matriz lineal de 18 MHz, para los nervios más profundos, se utiliza una sonda de matriz lineal adicional de 12 MHz (p. ej., para mostrar el nervio tibial y el peroné en la fosa poplítea) 6,16. Los transductores con frecuencias más bajas dan como resultado una resolución espacial y lateral reducida, por lo que la diferenciación de los límites nerviosos de las estructuras circundantes es menos precisa. Los ajustes óptimos se pueden mantener constantes utilizando un ajuste preestablecido para imágenes neuromusculares proporcionado por el fabricante. Durante el examen, la profundidad de la imagen y la posición de enfoque deben ajustarse a la estructura a examinar y adaptarse constantemente a la posición del nervio. La ganancia de la imagen B y la ganancia dependiente de la profundidad se pueden ajustar para optimizar la imagen con un brillo uniforme. Los vasos sanguíneos suelen estar cerca de las estructuras neuronales y, a menudo, se utilizan como puntos de referencia para realizar las mediciones en la misma posición. Para representar su interacción anatómica y distinguir entre nervios y vasos, también es necesario mostrar la velocidad y dirección del flujo mediante Doppler pulsado y ecografía dúplex codificada por colores16,18. La frecuencia de repetición del pulso debe adaptarse a las bajas velocidades de flujo esperadas en los vasos sanguíneos de las extremidades, o se debe seleccionar el Doppler de potencia para la codificación por colores16.

Los nervios reflejan las ondas ultrasónicas de manera diferente desde diferentes ángulos de incidencia, por lo que la imagen ecográfica varía en ecogenicidad (anisotropía)16,19. La mejor imagen se logra desde un ángulo ortógrado, ya que las ondas ultrasónicas son reflejadas con mayor fuerza por los nervios en este ángulo. Por lo tanto, para evitar la anisotropía artificial o la deformidad nerviosa, la sonda debe mantenerse en una posición neutra durante el examen sin aplicar presión adicional perpendicular a los nervios (Figura 1). El área de la sección transversal (CSA) se mide dentro del epineuro delgado e hiperecogénico (Figura 2) para evitar alteraciones del tejido epinerval en la medición19. Más detalles sobre la ecografía técnica se pueden encontrar en las Referencias 6,16,17,18,19,20,21.

Protocol

Todos los exámenes para este trabajo se realizaron de acuerdo con las directrices institucionales de la Universidad del Ruhr de Bochum, Alemania. 1. Preparaciones experimentales Preparación del pacienteComprobar los criterios de inclusión de pacientes: examinar pacientes adultos diagnosticados de polineuropatía, sospechosos de origen inflamatorio. Verifique los criterios de exclusión de pacientes: no examine a pacientes con heridas abiertas o infecciones en la…

Representative Results

Cada laboratorio de ecografía debe establecer sus valores de referencia de ACS mediante la recopilación de datos de la población local sana, ya que las máquinas de ecografía específicas y las variables dependientes del examinador o de la población pueden dar lugar a resultados ligeramente diferentes en cada laboratorio. Sin embargo, para indicar qué valores de ACS pueden considerarse normales, en la Tabla 1 se resumen los datos de dos de los principales grupos alemanes de ecografía nerviosa y un…

Discussion

La ecografía nerviosa es una herramienta diagnóstica adicional útil en las polineuropatías. Puede proporcionar información sobre las posibles causas de la polineuropatía en función de la extensión y el patrón del agrandamiento del nervio. Además, se describió que las alteraciones de la ASC en el curso longitudinal de la enfermedad de los pacientes con PIC se correlacionan con el curso clínico de la enfermedad y la respuesta al tratamiento33,34,35,36<s…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos el apoyo de la Universidad del Ruhr de Bochum a nuestra investigación sobre ultrasonidos neuromusculares.

Materials

Affiniti 70 Philips GmbH n/a with preset for neuromuscular ultrasound
L18-5 linear array transducer Philips GmbH n/a
Ultrasound gel C + V Pharma Depot GmbH n/a

Riferimenti

  1. Lehmann, H. C., Wunderlich, G., Fink, G. R., Sommer, C. Diagnosis of peripheral neuropathy. Neurological Research and Practice. 2 (1), 20 (2020).
  2. Sommer, C., et al. Polyneuropathies- etiology, diagnosis, and treatment options. Deutsches Arzteblatt International. 115 (6), 83-90 (2018).
  3. Shahrizaila, N., Lehmann, H. C., Kuwabara, S. Guillain-Barré syndrome. The Lancet. 397 (10280), 1214-1228 (2021).
  4. Lehmann, H. C., Burke, D., Kuwabara, S. Chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy: update on diagnosis, immunopathogenesis and treatment. Journal of Neurology, Neurosurgery, and Psychiatry. 90 (9), 981-987 (2019).
  5. den Bergh, P. Y. K. V., et al. European Academy of Neurology/Peripheral Nerve Society guideline on diagnosis and treatment of chronic inflammatory demyelinating polyradiculoneuropathy: Report of a joint Task Force – Second revision. Journal of the Peripheral Nervous System. , 1-27 (2021).
  6. Kramer, M., et al. Nerve ultrasound as helpful tool in polyneuropathies. Diagnostics. 11 (2), 211 (2021).
  7. Grimm, A., et al. A look inside the nerve – Morphology of nerve fascicles in healthy controls and patients with polyneuropathy. Clinical Neurophysiology. 128 (12), 2521-2526 (2017).
  8. Padua, L., et al. Heterogeneity of root and nerve ultrasound pattern in CIDP patients. Clinical Neurophysiology. 125 (1), 160-165 (2014).
  9. Winter, N., et al. Nerve ultrasonography as an additive tool to clinical examination and electrodiagnostics in sporadic mononeuritis – Imaging is the key. Ultraschall in der Medizin – European Journal of Ultrasound. 40 (4), 465-472 (2019).
  10. Kerasnoudis, A., Pitarokoili, K., Gold, R., Yoon, M. -. S. Bochum ultrasound score allows distinction of chronic inflammatory from multifocal acquired demyelinating polyneuropathies. Journal of the Neurological Sciences. 348 (1-2), 211-215 (2015).
  11. Grimm, A., Rattay, T. W., Winter, N., Axer, H. Peripheral nerve ultrasound scoring systems: benchmarking and comparative analysis. Journal of Neurology. 264 (2), 1-11 (2016).
  12. Telleman, J. A., Grimm, A., Goedee, S., Visser, L. H., Zaidman, C. M. Nerve ultrasound in polyneuropathies. Muscle & Nerve. 57 (5), 716-728 (2017).
  13. Fisse, A. L., Katsanos, A. H., Gold, R., Pitarokoili, K., Krogias, C. Cross-sectional area reference values for peripheral nerve ultrasound in adults: a systematic review and meta-analysis-Part I: Upper extremity nerves. European Journal of Neurology. 28 (5), 1684-1691 (2021).
  14. Fisse, A. L., Katsanos, A. H., Gold, R., Krogias, C., Pitarokoili, K. Cross-sectional area reference values for peripheral nerve ultrasound in adults: A systematic review and meta-analysis-Part II: Lower extremity nerves. European Journal of Neurology. 28 (7), 2313-2318 (2021).
  15. Fisse, A. L., Katsanos, A. H., Gold, R., Pitarokoili, K., Krogias, C. Cross-sectional area reference values for peripheral nerve ultrasound in adults: A systematic review and meta-analysis-Part III: Cervical nerve roots and vagal nerve. European Journal of Neurology. 28 (7), 2319-2326 (2021).
  16. Carroll, A. S., Simon, N. G. Current and future applications of ultrasound imaging in peripheral nerve disorders. World Journal of Radiology. 12 (6), 101-129 (2020).
  17. Entrekin, R. R., et al. Real-time spatial compound imaging: Application to breast, vascular, and musculoskeletal ultrasound. Seminars in Ultrasound, CT and MRI. 22 (1), 50-64 (2001).
  18. Walker, F. O., et al. Indications for neuromuscular ultrasound: Expert opinion and review of the literature. Clinical Neurophysiology. , 1-67 (2018).
  19. Dengler, R., et al. AANEM – IFCN glossary of terms in neuromuscular electrodiagnostic medicine and ultrasound. Muscle & Nerve. 62 (1), 10-12 (2020).
  20. Mah, J. K., van Alfen, N. Neuromuscular ultrasound: Clinical applications and diagnostic values. Canadian Journal of Neurological Sciences / Journal Canadien des Sciences Neurologiques. 45 (6), 605-619 (2018).
  21. Tawfik, E. A., et al. Guidelines for neuromuscular ultrasound training. Muscle & Nerve. 60 (4), 361-366 (2019).
  22. Kerasnoudis, A., Pitarokoili, K., Behrendt, V., Gold, R., Yoon, M. -. S. Cross sectional area reference values for sonography of peripheral nerves and brachial plexus. Clinical Neurophysiology. 124 (9), 1881-1888 (2013).
  23. Grimm, A., Axer, H., Heiling, B., Winter, N. Nerve ultrasound normal values – Readjustment of the ultrasound pattern sum score UPSS. Clinical Neurophysiology. 129 (7), 1403-1409 (2013).
  24. Padua, L., et al. Intra- and internerve cross-sectional area variability: New ultrasound measures. Muscle & Nerve. 45 (5), 730-733 (2012).
  25. Kühn, E., et al. Correlates of polyneuropathy in Parkinson’s disease. Annals of Clinical and Translational Neurology. 7 (10), 1898-1907 (2020).
  26. Pitarokoili, K., et al. Facing the diagnostic challenge: Nerve ultrasound in diabetic patients with neuropathic symptoms. Muscle & Nerve. 54 (1), 18-24 (2016).
  27. Pitarokoili, K., et al. High-resolution nerve ultrasound and electrophysiological findings in restless legs syndrome. Journal of Neuroimaging. 28 (5), 506-514 (2018).
  28. Fisse, A. L., et al. New approaches to critical illness polyneuromyopathy: High-resolution neuromuscular ultrasound characteristics and cytokine profiling. Neurocritical Care. 35 (1), 139-152 (2021).
  29. Grimm, A., Décard, B. F., Axer, H., Fuhr, P. The Ultrasound pattern sum score – UPSS. A new method to differentiate acute and subacute neuropathies using ultrasound of the peripheral nerves. Clinical Neurophysiology. 126 (11), 2216-2225 (2015).
  30. Kerasnoudis, A., Pitarokoili, K., Haghikia, A., Gold, R., Yoon, M. -. S. Nerve ultrasound protocol in differentiating chronic immune-mediated neuropathies. Muscle & Nerve. 54 (5), 864-871 (2016).
  31. Klauser, A. S., et al. Carpal tunnel syndrome assessment with US: Value of additional cross-sectional area measurements of the median nerve in patients versus healthy volunteers. Radiology. 250 (1), 171-177 (2009).
  32. Grimm, A., et al. Ultrasound pattern sum score, homogeneity score and regional nerve enlargement index for differentiation of demyelinating inflammatory and hereditary neuropathies. Clinical Neurophysiology. 127 (7), 2618-2624 (2016).
  33. Fisse, A. L., et al. Clinical, sonographic, and electrophysiologic longitudinal features of chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy. Journal of Neuroimaging. 29 (2), 223-232 (2018).
  34. Fionda, L., et al. Changes of clinical, neurophysiological and nerve ultrasound characteristics in CIDP over time: a 3-year follow-up. Journal of Neurology. 268 (8), 3011-3019 (2021).
  35. Härtig, F., et al. Nerve ultrasound predicts treatment response in chronic inflammatory demyelinating polyradiculoneuropathy-a prospective follow-up. Neurotherapeutics. 15 (2), 439-451 (2018).
  36. Décard, B. F., Pham, M., Grimm, A. Ultrasound and MRI of nerves for monitoring disease activity and treatment effects in chronic dysimmune neuropathies – Current concepts and future directions. Clinical Neurophysiology. 129 (1), 155-167 (2018).
  37. Alshami, A. M., Cairns, C. W., Wylie, B. K., Souvlis, T., Coppieters, M. W. Reliability and size of the measurement error when determining the cross-sectional area of the tibial nerve at the tarsal tunnel with ultrasonography. Ultrasound in Medicine & Biology. 35 (7), 1098-1102 (2009).
  38. Impink, B. G., Gagnon, D., Collinger, J. L., Boninger, M. L. Repeatability of ultrasonographic median nerve measures. Muscle & Nerve. 41 (6), 767-773 (2010).
  39. Garcia-Santibanez, R., Dietz, A. R., Bucelli, R. C., Zaidman, C. M. Nerve ultrasound reliability of upper limbs: Effects of examiner training. Muscle & Nerve. 57 (2), 189-192 (2018).
  40. Gamber, D., et al. High-resolution nerve ultrasound to assess nerve echogenicity, fascicular count, and cross-sectional area using semiautomated analysis. Journal of Neuroimaging. 30 (4), 493-502 (2020).
  41. Fisse, A. L., et al. Nerve echogenicity and intranerve CSA variability in high-resolution nerve ultrasound (HRUS) in chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy (CIDP). Journal of Neurology. 266 (2), 468-475 (2019).
  42. van Rosmalen, M. H. J., et al. Quantitative assessment of brachial plexus MRI for the diagnosis of chronic inflammatory neuropathies. Journal of Neurology. 268 (3), 978-988 (2021).
  43. Pitarokoili, K., Schlamann, M., Kerasnoudis, A., Gold, R., Yoon, M. S. Comparison of clinical, electrophysiological, sonographic and MRI features in CIDP. Journal of the Neurological Sciences. 357 (1-2), 198-203 (2015).

Play Video

Citazione di questo articolo
Fisse, A. L., Pitarokoili, K., Gold, R. Nerve Ultrasound Protocol to Detect Dysimmune Neuropathies. J. Vis. Exp. (176), e62900, doi:10.3791/62900 (2021).

View Video