Summary

ゼブラフィッシュ幼虫の脊髄運動ニューロンにおけるTDP-43の光遺伝学的相転移

Published: February 25, 2022
doi:

Summary

我々は、ゼブラフィッシュをモデルとして用いた脊髄運動ニューロンにおける光によるTARDNA結合タンパク質43(TDP-43)の相転移を誘導するプロトコルを記述する。

Abstract

異常なタンパク質凝集と選択的神経の脆弱性は、神経変性疾患の2つの主要な特徴である。これらの特徴間の因果関係は、この実験的アプローチはこれまで限られているが、脆弱な細胞型における疾患関連タンパク質の相転移を制御することによって問い合われる可能性がある。ここでは、筋萎縮性側索硬化症(ALS)で変性運動ニューロンで発生するTDP-43の細胞質凝集をモデル化するためのゼブラフィッシュ幼虫の脊椎運動ニューロンにおけるRNA/DNA結合タンパク質TDP-43の相転移を誘導するプロトコルについて説明する。ゼブラフィッシュの脊椎運動ニューロンに光遺伝学的TDP-43変異体を選択的に送達する細菌人工染色体(BAC)ベースの遺伝的方法について述べた。ゼブラフィッシュ幼虫の高い半透明性は、拘束されていない魚に対して発光ダイオード(LED)を使用した単純な外部照明によって脊髄運動ニューロンにおける光遺伝学的TDP-43の相転移を可能にする。また、光遺伝学的TDP-43の光照明への応答を特徴付ける、自由に利用できるフィジー/ImageJソフトウェアを用いて、ゼブラフィッシュ脊椎運動ニューロンのライブイメージングと画像解析の基本的なワークフローを提示する。このプロトコルは、ALSに脆弱な細胞環境におけるTDP-43相転移および凝集形成の特徴付けを可能にし、細胞および行動の結果の調査を容易にするべきである。

Introduction

リボヌクレオプロテイン(RNP)顆粒は、均質な流体が2つの異なる液体相に分解する現象である液液相分離(LLPS)を介して膜のないパーティションを組み立てることによって、核および細胞質における無数の細胞活動を制御する。RNP顆粒成分として通常機能するRNA結合タンパク質の調節不変LLPSは、異常な相転移を促進し、タンパク質凝集をもたらす。このプロセスは、神経発達および神経変性疾患に関与している3,4,5.RNA結合タンパク質の異常なLLPSと疾患の病態との因果関係の正確な評価は、LLPSが効果的な治療標的として利用できるかどうかを決定する上で極めて重要である。RNA結合タンパク質のLLPSは、インビトロや単細胞モデルでは比較的容易に研究できますが、多細胞生物、特に脊椎動物では困難です。組織環境内の個々の細胞におけるこのようなLLPSを分析するための重要な要件は、疾患に脆弱な細胞タイプの目的でLLPSのイメージングおよび操作のためのプローブを安定的に発現させることである。

筋萎縮性側索硬化症(ALS)は、脳と脊髄の運動ニューロンが変性のために選択的かつ徐々に失われる、最終的に致命的な神経疾患である。現在までに、25以上の遺伝子の突然変異は、ALS症例全体の5%-10%を占めるALSの遺伝性(または家族性)形態と関連しており、これらのALSを引き起こす遺伝子の一部はhnRNPA1、TDP-43、FUS6,7などのRNPからなるRNA結合タンパク質をコードするさらに、ALSの散発的な形態は、ALS症例全体の90%〜95%を占め、退化運動ニューロンに沈着したTDP-43の細胞質凝集によって特徴付けられる。これらのALS関連RNA結合タンパク質の主な特徴は、本質的に障害領域(IDR)または低複雑性ドメインであり、秩序ある三次元構造を欠き、LLPS7,8を駆動する多くの異なるタンパク質との弱いタンパク質タンパク質相互作用を媒介する。ALSを引き起こす突然変異がIDRでしばしば起こるという事実は、これらのALS関連タンパク質の異常なLLPSおよび相転移がALS病因の根源であるかもしれないという考えにつながっています。

近年、光光によるタンパク質相互作用の調節を可能にするクリプトクロム2ベースの光遺伝学的手法である光滴法が、IDRs11を用いたタンパク質の相転移を誘導するために開発された。この技術がTDP-43に正常に拡張されたので、TDP-43の病理学的相転移の基礎となるメカニズムとそれに関連する細胞毒性12131415を明らかにし始めた。このプロトコルでは、ALSに脆弱な細胞型、すなわち、運動ニューロン仕様用ホメオドメインタンパク質をコードするmnr2b/mnx2b遺伝子のBACを用いてゼブラフィッシュの脊髄運動ニューロンに光遺伝学的TDP-43を送達する遺伝的方法の概要を示す16,17。ゼブラフィッシュ幼虫の高い半透明性は、脊髄運動ニューロンにおけるその相転移を引き起こす光遺伝学的TDP-43の単純で非侵襲的な光刺激を可能にする。また、光刺激に対する光遺伝学的TDP-43の応答を特徴付けるために、自由に入手可能なフィジー/ImageJソフトウェアを用いたゼブラフィッシュ脊髄運動ニューロンのライブイメージングと画像解析の基本的なワークフローも提示する。これらの方法は、ALSに脆弱な細胞環境におけるTDP-43相転移の調査を可能にし、細胞および行動レベルでの病理学的結果を探求するのに役立つべきである。

Protocol

すべての魚の作業は、国立衛生研究所動物福祉局(NIH)の動物福祉局(保証番号A5561-01)を申請している国立遺伝学研究所(日本)の施設動物の世話・使用委員会(承認識別番号24-2)の実験動物のケアと使用に関するガイドに従って行われました。 米国)。 1. mnr2b プロモーターからの光遺伝学的TDP-43遺伝子発現に関するバチの構築 BAC製剤 ゼブラフィ…

Representative Results

ゼブラフィッシュ幼虫のmnr2b+脊髄運動ニューロンにおける光遺伝学的および非光遺伝学的TDP-43タンパク質の生画像化 ゼブラフィッシュの脊髄運動ニューロンにおけるTDP-43相転移を誘導するために、N-およびC末語でmRFP1およびCRY2olig22でタグ付けされたヒトTDP-43hをそれぞれ、opTDP-43h14と呼び出した(図1A)。<sup…

Discussion

ゼブラフィッシュのopTDP-43hおよびEGFP-TDP-43zの mnr2b-BAC媒介発現は、脊髄運動ニューロンにおけるTDP-43相転移の生画像化のためのユニークな機会を提供する。ゼブラフィッシュ幼虫の体組織の光学的透明性は、opTDP-43hの単純で非侵襲的な光遺伝学的刺激を可能にする。時間の経過に伴う単一の脊髄運動ニューロン間の比較は、opTDP-43hの光依存性オリゴマー化がALS病理を連想させる細胞質ク…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作品は、セリクヤファンド(KA)、カケンヒグラント番号JP19K06933(KA)、JP20H05345(KA)によって支援されました。

Materials

Confocal microscope Olympus FV1200
Epifluorescence microscope ZEISS Axioimager Z1
Fluorescence stereomicroscope Leica MZ16FA
Glass base dish IWAKI 3910-035
Incubator MEE CN-25C
LED panel Nanoleaf Limited Nanoleaf AURORA smarter kit
Mupid-2plus TAKARA AD110
NucleoBond BAC100 MACHEREY-NAGEL 740579
NuSieve GTG Agarose LONZA 50181
Objective lens Olympus XLUMPlanFL N 20×/1.00
Objective lens ZEISS Plan-Neofluar 5x/0.15
Optical power meter HIOKI 3664
Optical sensor HIOKI 9742-10
Phenol red solution 0.5% Merck P0290-100ML
PrimeSTAR GXL DNA Polymerase TAKARA R050A
QIAquick Gel Extraction Kit Qiagen 28704
Six-well dish FALCON 353046
Spectrometer probe BLUE-Wave StellerNet Inc. VIS-50
Syringe needle TERUMO NN-2725R
TaKaRa Ex Taq TAKARA RR001A
Tricane Sigma-Aldrich A5040
Zebrafish BAC clone CH211-172N16 BACPAC Genomics CH211-172N16

Riferimenti

  1. Brangwynne, C. P. Phase transitions and size scaling of membrane-less organelles. Journal of Cell Biology. 203 (6), 875-881 (2013).
  2. Hyman, A. A., Weber, C. A., Julicher, F. Liquid-liquid phase separation in biology. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 30, 39-58 (2014).
  3. Lennox, A. L., et al. Pathogenic DDX3X mutations impair rna metabolism and neurogenesis during fetal cortical development. Neuron. 106 (3), 404-420 (2020).
  4. Nedelsky, N. B., Taylor, J. P. Bridging biophysics and neurology: aberrant phase transitions in neurodegenerative disease. Nature Reviews Neurology. 15 (5), 272-286 (2019).
  5. Ramaswami, M., Taylor, J. P., Parker, R. Altered ribostasis: RNA-protein granules in degenerative disorders. Cell. 154 (4), 727-736 (2013).
  6. Nguyen, H. P., Van Broeckhoven, C., vander Zee, J. ALS genes in the genomic era and their implications for FTD. Trends in Genetics. 34 (6), 404-423 (2018).
  7. Pakravan, D., Orlando, G., Bercier, V., Van Den Bosch, L. Role and therapeutic potential of liquid-liquid phase separation in amyotrophic lateral sclerosis. Journal of Molecular Cell Biology. 13 (1), 15-28 (2021).
  8. Santamaria, N., Alhothali, M., Alfonso, M. H., Breydo, L., Uversky, V. N. Intrinsic disorder in proteins involved in amyotrophic lateral sclerosis. Cellular and Molecular Life Sciences. 74 (7), 1297-1318 (2017).
  9. Lagier-Tourenne, C., Cleveland, D. W. Rethinking ALS: the FUS about TDP-43. Cell. 136 (6), 1001-1004 (2009).
  10. Asakawa, K., Handa, H., Kawakami, K. Multi-phaseted problems of TDP-43 in selective neuronal vulnerability in ALS. Cellular and Molecular Life Sciences. 78 (10), 4453-4465 (2021).
  11. Shin, Y., et al. Spatiotemporal control of intracellular phase transitions using light-activated optodroplets. Cell. 168 (1-2), 159-171 (2017).
  12. Zhang, P., et al. Chronic optogenetic induction of stress granules is cytotoxic and reveals the evolution of ALS-FTD pathology. Elife. 8, 39578 (2019).
  13. Mann, J. R., et al. RNA Binding Antagonizes Neurotoxic Phase Transitions of TDP-43. Neuron. 102 (2), 321-338 (2019).
  14. Asakawa, K., Handa, H., Kawakami, K. Optogenetic modulation of TDP-43 oligomerization accelerates ALS-related pathologies in the spinal motor neurons. Nature Communications. 11 (1), 1004 (2020).
  15. Otte, C. G., et al. Optogenetic TDP-43 nucleation induces persistent insoluble species and progressive motor dysfunction in vivo. Neurobiology of Disease. 146, 105078 (2020).
  16. Wendik, B., Maier, E., Meyer, D. Zebrafish mnx genes in endocrine and exocrine pancreas formation. Biologia dello sviluppo. 268 (2), 372-383 (2004).
  17. Seredick, S. D., Van Ryswyk, L., Hutchinson, S. A., Eisen, J. S. Zebrafish Mnx proteins specify one motoneuron subtype and suppress acquisition of interneuron characteristics. Neural Development. 7, 35 (2012).
  18. Warming, S., Costantino, N., Court, D. L., Jenkins, N. A., Copeland, N. G. Simple and highly efficient BAC recombineering using galK selection. Nucleic Acids Research. 33 (4), 36 (2005).
  19. Suster, M. L., Abe, G., Schouw, A., Kawakami, K. Transposon-mediated BAC transgenesis in zebrafish. Nature Protocols. 6 (12), 1998-2021 (2011).
  20. Asakawa, K., Abe, G., Kawakami, K. Cellular dissection of the spinal cord motor column by BAC transgenesis and gene trapping in zebrafish. Frontiers in Neural Circuits. 7, 100 (2013).
  21. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  22. Taslimi, A., et al. An optimized optogenetic clustering tool for probing protein interaction and function. Nature Communications. 5, 4925 (2014).
  23. Asakawa, K., Kawakami, K. Protocadherin-mediated cell repulsion controls the central topography and efferent projections of the abducens nucleus. Cell Reports. 24 (6), 1562-1572 (2018).
  24. Redchuk, T. A., et al. Optogenetic regulation of endogenous proteins. Nature Communications. 11 (1), 605 (2020).

Play Video

Citazione di questo articolo
Asakawa, K., Handa, H., Kawakami, K. Optogenetic Phase Transition of TDP-43 in Spinal Motor Neurons of Zebrafish Larvae. J. Vis. Exp. (180), e62932, doi:10.3791/62932 (2022).

View Video