Summary

마우스 심근 세포를 일관되게 분리하는 간단하고 효과적인 방법

Published: November 11, 2022
doi:

Summary

세포 및 분자 기능 실험을 위한 심장학의 황금 표준은 심근 세포입니다. 이 기사에서는 마우스 심근 세포를 분리하기 위한 비 Langendorff 기술에 대한 적응에 대해 설명합니다.

Abstract

고품질 심근 세포를 생성하는 재현 가능하면서도 기술적으로 간단한 방법의 필요성은 심장 생물학 연구에 필수적입니다. 심근 세포에 대한 세포 및 분자 기능 실험(예: 수축, 전기생리학, 칼슘 순환 등)은 질병의 메커니즘을 확립하기 위한 황금 표준입니다. 마우스는 기능 실험을 위해 선택되는 종이며 설명된 기술은 특히 마우스 심근 세포의 분리를 위한 것입니다. Langendorff 장치가 필요한 이전 방법은 대동맥 캐뉼라 삽입을 위해 높은 수준의 훈련과 정밀도가 필요하며 종종 허혈을 초래합니다. 이 분야는 단순하고 재현 가능하며 생리학적 데이터 수집 및 배양을 위한 생존 가능한 근세포를 생성하는 Langendorff-free 분리 방법으로 이동하고 있습니다. 이러한 방법은 대동맥 캐뉼라 삽입에 비해 허혈 시간을 크게 줄이고 안정적으로 얻은 심근 세포를 생성합니다. Langendorff-free 분석법에 대한 당사의 적응에는 얼음처럼 차가운 투명 용액을 사용한 초기 관류, 관류 중 안정적인 바늘을 보장하는 안정화 플랫폼 사용, 기능 측정 및 배양에 사용하기 위해 안정적으로 얻은 심근 세포를 보장하기 위한 추가 분해 단계가 포함됩니다. 이 방법은 간단하고 빠르게 수행할 수 있으며 기술이 거의 필요하지 않습니다.

Introduction

수십 년 동안 심장 생물학 문헌에서 필수적인 아이디어는 분자 작용 메커니즘입니다. 신뢰할 수 있는 연구를 발표하기 위해서는 행동 메커니즘을 확립해야 합니다. 분자 메커니즘을 결정하기 위한 잘 확립된 전략은 신뢰할 수 있는 데이터를 얻기 위해 고품질 심근 세포가 필요한 분리된 심근 세포 연구입니다. 작용 기전을 결정하기 위해 심근 세포에서 수행되는 세포 및 분자 실험은 수축1, 전기 생리학2, 칼슘 (Ca2+) 사이클링3, 근섬유 Ca2+ 민감도4, 세포 골격5, 대사6, 호르몬 효과7, 신호 분자8, 약물 연구9를 조사하기 위한 황금 표준이다 등. 마우스는 유전자 조작의 용이성, 작은 크기, 상대적으로 짧은 수명, 저렴한 비용 등으로 인해 대부분의 심장 생물학 실험에서 선택되는 종이 되었습니다10. 그러나 고품질 마우스 심근 세포의 안정적인 분리는 현재 기술로는 간단하지 않습니다.

실험실은 거의 70년 동안 심근 세포를 분리해 왔습니다11. 심근 세포를 분리하는 거의 모든 기술은 다양한 효소 (콜라겐 분해 효소, 프로테아제, 트립신 등)를 통한 심장 소화에 의존합니다. 초기(1950년대-1960년대)에는 심장을 제거하고 훨씬 더 작은 조각으로 자르고 콜라게나제/프로테아제/트립신12와 함께 용액에서 배양하는 청크 방법이 사용되었습니다. 1970년대에 실험실은 관상동맥 관류 기반 격리 기술(Langendorff 장치를 통한 효소로 역행 관류)을 사용하여 심근 세포를 분리하는 개선된 “Langendorff” 방법(13)을 구현했습니다. 이 기술은 ~50년 후인 오늘날에도 현장에서 근세포 분리의 지배적인 방법으로 남아 있습니다14,15,16. 최근 연구는 저산소증 시간과 허혈성 손상을 제한하기 위해 생체 내에서 심장을 캐뉼라화하는 것으로 전환되어 우수한 심근 세포 분리(더 나은 수율 및 더 높은 품질)를 초래했습니다17. 최근에, 이것은 생체 내에서, 랑겐도르프가 없는 심장 관류 18,19,20,21,22를 수행하는 것으로 발전하였다. 우리는 Ackers-Johnson et al.18 기술을 기반으로 Langendorff-free 심근 세포 분리 기술을 발전시켰고 이전의 많은 분리 기술에서 다양한 구성 요소를 채택했습니다. 이러한 주요 적응에는 얼음처럼 차가운 제거 완충액을 주입하고 바늘을 안정화하기 위한 지지 플랫폼을 통합하여 심장 조작을 줄이는 것이 포함됩니다. 또한 이 기술에서 상세히 기술된 것은 주입된 완충액(37°C)의 온도 제어이며, 이는 이전에 발표된 바와 같이 더 적은 EDTA 관류로 인해 생체 내 주입과 소화 사이의 시간을 감소시켰다18. 심장의 조작을 줄이고 천자 부위 크기를 최소화함으로써 관상 동맥의 철저하고 지속적인 관류가 이루어집니다. 우리는 또한 2차 청크 분해법으로 기술을 정제하고, 주입된 투명 완충액 중의 EDTA의 양을 측정하고, pH를 변화시켰다. 설명된 기술은 Langendorff 장치를 사용하는 것에 비해 더 안정적이고 효율적이며 광범위한 교육/실습이 필요하지 않습니다(표 1).

Protocol

이 연구에서 수행된 모든 절차는 NIH 지침에 따라 오하이오 주립 대학의 기관 동물 관리 및 사용 위원회의 승인을 받았습니다. 1. 용액 준비 참고: 버퍼 농도는 표 2 를 참조하십시오. 사전 격리(근세포 분리 최대 2주 전)관류 완충액 염기: 1L의 초순수 18.2MΩ·cm H 2O에 1L의 관류 완충액 염기(NaCl, KCl, NaH 2PO4, HEPES, ?…

Representative Results

격리의 성공 여부를 결정할 때 검토해야 할 몇 가지 요소가 있습니다. 첫째, 심근 세포는 그림 1에서 분리된 세포와 같이 막 기피가 없는 막대 모양이어야 합니다. 전형적인 분리는 근세포의 ~80%가 막대 모양이 됩니다. 분리 결과 막대 모양의 세포가 50% 미만이면 실패한 분리로 간주되며 심근 세포는 사용되지 않습니다. 마지막으로 심근 세포는 정지 상태여야 합니다. 자발적?…

Discussion

Langendorff-free 심근세포 분리 기술의 주요 장점은 Langendorff 장치에 캐뉼러를 삽입할 필요가 없어 저산소증과 허혈 시간을 제한한다는 것입니다. 심장을 제거, 세척 및 매달아 종종 근세포에 허혈성 손상을 초래하는 고전적인 Langendorff 기법 대신 당사의 방법에는 얼음처럼 차가운 세척 용액을 통한 생체 내 혈액 세척이 포함됩니다. 얼음처럼 차가운 투명 완충액에는 에틸렌디아민테트라…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작업은 국립 보건원 보조금 R01 HL114940 (Biesiadecki), R01 AG060542 (Ziolo) 및 T32 HL134616 (Sturgill and Salyer)의 지원을 받았습니다.

Materials

10 cc Bd Luer-Lok Syringe Fisher Sci 14-827-52
10 mL Pyrex Low-Form Beaker Cole-Palmer UX-34502-01
100 mL polypropylene cap glass media storage bottle DWK Life Sciences UX-34523-00
14 mL Round-Bottom Polypropylene Test Tubes With Cap Fisher Sci 14-959-11B
2,3-Butanedione Monoxime Sigma B0753 >98%
3 cc BD Luer-Lok Syringe Fisher Sci 14-823-435
35 mm glass bottom dishes MatTek Corporation P35G-1.0-20-C
50 mL BD Syringe without Needle Fisher Sci 13-689-8
50 mL Conical Centrifuge Tubes Cole-Palmer EW-22999-84
95% O2 5% CO2
AIMS Space Gel Heating Pad Fisher Sci 14-370-223
BD PrecisionGlide 27 G X 1/2" Hypodermic Needles Becton Dickinson 305109
Bovine Serum Albumin Sigma A3803 Heat shock fraction, lyophilized powder, essentially fatty acid free, >98%
Calcium Chloride dihydrate Sigma C7902 >99%
D-(+)-Glucose Sigma G7021 Suitable for cell culture, >99.5%
DMEM Fisher Sci 11965092
EDTA Fisher Sci AAA1071336
Falcon 100 mm TC-treated Cell Culture Dish Corning 353003
FBS R&D Systems (Bio-techne) S11195
Fisherbrand Isotemp Heated Immersion Circulators Fisher Sci 13-874-432
Hartman Mosquito Hemostatic Forceps World Precision Instruments 15921
Hausser Scientific Hy-Lite Counting Chamber Set Fisher Sci 02-671-11
HEPES Sigma H4034 >99.5%
Labeling Tape Fisher Sci 15-901-10R
Legato 100 Syringe Pump kdScientific 788100
L-glutathione Fisher Sci ICN19467980
Liberase TH Research Grade Sigma 5401135001 High thermolysin concentration
M199 Fisher Sci MT10060CV
Magnesium Chloride Invitrogen AM9530G
Mouse Laminin Corning 354232
Pen/Strep Fisher Sci
Potassium Chloride Sigma P5405 >99%
Precision Digital Reciprocating Water Bath ThermoFisher Scientific TSCIR19
Sodium Bicarbonate Sigma S5761 Suitable for cell culture
Sodium Chloride Sigma S5886 >99%
Sodium phosphate monobasic Sigma S5011 >99%
Sterile Cell Strainer 70 µm Fisher Sci 22-363-548
Student Fine Scissors Fine Science Tools 91460-11
VWR Absorbent Underpads Fisher Sci NC9481815

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Sturgill, S. L., Salyer, L. G., Biesiadecki, B. J., Ziolo, M. T. A Simple and Effective Method to Consistently Isolate Mouse Cardiomyocytes. J. Vis. Exp. (189), e63056, doi:10.3791/63056 (2022).

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