Summary

मानव नाक उपकला Organoids की संस्कृति और इमेजिंग

Published: December 17, 2021
doi:

Summary

मानव नाक उपकला कोशिकाओं से एक इन विट्रो ऑर्गेनोइड मॉडल का वर्णन करने के लिए यहां एक विस्तृत प्रोटोकॉल प्रस्तुत किया गया है। प्रोटोकॉल में मानक प्रयोगशाला उपकरणों की आवश्यकता वाले माप के लिए विकल्प हैं, जिसमें विशेष उपकरण और सॉफ्टवेयर के लिए अतिरिक्त संभावनाएं हैं।

Abstract

सिस्टिक फाइब्रोसिस (सीएफ) रोगियों के लिए व्यक्तिगत चिकित्सा को बेसलाइन सिस्टिक फाइब्रोसिस ट्रांसमेम्ब्रेन चालकता नियामक (सीएफटीआर) गतिविधि और छोटे अणु यौगिकों से बहाली को समझने के लिए इन विट्रो रोग मॉडल के साथ प्राप्त किया जा सकता है। हमारे समूह ने हाल ही में प्राथमिक मानव नाक उपकला कोशिकाओं (एचएनई) से सीधे व्युत्पन्न एक अच्छी तरह से विभेदित ऑर्गेनोइड मॉडल स्थापित करने पर ध्यान केंद्रित किया है। अनुभागित ऑर्गेनोइड्स, पूरे-माउंट इम्युनोफ्लोरोसेंट स्टेनिंग, और इमेजिंग (कॉन्फोकल माइक्रोस्कोपी, इम्यूनोफ्लोरोसेंट माइक्रोस्कोपी और उज्ज्वल क्षेत्र का उपयोग करके) के हिस्टोलॉजी ऑर्गेनोइड्स को चिह्नित करने और कार्यात्मक assays की तैयारी में उपकला भेदभाव की पुष्टि करने के लिए आवश्यक हैं। इसके अलावा, एचएनई ऑर्गेनोइड्स अलग-अलग आकारों के लुमेन का उत्पादन करते हैं जो सीएफटीआर गतिविधि के साथ सहसंबंधित होते हैं, सीएफ और गैर-सीएफ ऑर्गेनोइड्स के बीच अंतर करते हैं। इस पांडुलिपि में, एचएनई ऑर्गेनोइड्स को संवर्धित करने के लिए पद्धति का विस्तार से वर्णन किया गया है, जिसमें इमेजिंग तौर-तरीकों का उपयोग करके भेदभाव के आकलन पर ध्यान केंद्रित किया गया है, जिसमें बेसलाइन लुमेन क्षेत्र का माप शामिल है (ऑर्गेनोइड्स में सीएफटीआर गतिविधि माप की एक विधि जो माइक्रोस्कोप के साथ किसी भी प्रयोगशाला को नियोजित कर सकती है) के साथ-साथ एक कार्यात्मक परख के लिए विकसित स्वचालित दृष्टिकोण (जिसके लिए अधिक विशिष्ट उपकरणों की आवश्यकता होती है)।

Introduction

तकनीक का परिचय
पूर्व विवो संस्कृति आधारित assays सटीक दवा और रोग pathophysiology के अध्ययन के लिए एक तेजी से इस्तेमाल उपकरण हैं। प्राथमिक मानव नाक उपकला (एचएनई) सेल संस्कृति का उपयोग सिस्टिक फाइब्रोसिस 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13 के कई अध्ययनों में किया गया है , एक ऑटोसोमल रिसेसिव रोग जो कई अंगों में उपकला कोशिका समारोह को प्रभावित करता है। एचएनई संस्कृति वायुमार्ग एपिथेलिया का एक नवीकरणीय स्रोत प्रदान करती है जिसे संभावित रूप से प्राप्त किया जा सकता है और सिस्टिक फाइब्रोसिस ट्रांसमेम्ब्रेन चालकता नियामक (सीएफटीआर) गतिविधि का परीक्षण करने के लिए इलेक्ट्रोफिजियोलॉजिकल और जैव रासायनिक गुणों को पुन: प्राप्त किया जा सकता है। एचएनई कोशिकाओं को न्यूनतम साइडइफेक्ट्स 14 के साथ नमूना लिया जा सकता है, जो सामान्य वायरल श्वसन स्वैब के समान है। एचएनई ब्रश बायोप्सी से व्युत्पन्न सिस्टिक फाइब्रोसिस अध्ययन के लिए एक मॉडल का वर्णन करने वाले शोध कार्य को हाल ही में11,13 प्रकाशित किया गया है। जबकि प्राथमिक एचएनई 2,3 और आंतों के ऊतक 15,16,17,18,19 का उपयोग करने वाले अन्य मॉडलों के समान, इस मॉडल के भेदभाव और इमेजिंग के विस्तृत लक्षण वर्णन को सीएफ अनुसंधान में उपयोग के लिए और अन्य वायुमार्ग रोगों के अध्ययन में सहायता के लिए यहां वर्णित किया गया है . ऑर्गेनोइड मॉडल अमर सेल लाइनों की तरह असीमित नहीं है, लेकिन सशर्त रीप्रोग्रामिंग (विकिरणित और निष्क्रिय फीडर फाइब्रोब्लास्ट्स और रो-किनेज इनहिबिटर का उपयोग करके) को अधिक स्टेम सेल जैसी स्थिति 20,21,22,23 तक विस्तारित किया जा सकता है इस विधि का उपयोग करके एचएनई ब्रश बायोप्सी का प्रसंस्करण उच्च थ्रूपुट पर कई अनुप्रयोगों में उपयोग के लिए बड़ी संख्या में उपकला कोशिकाओं को उत्पन्न करता है, जबकि अभी भी पूरी तरह से अंतर करने की क्षमता को बनाए रखता है। जबकि इस प्रोटोकॉल को फीडर कोशिकाओं का उपयोग करके विकसित किया गया था, फीडर सेल तकनीक14,24 से बचने के इच्छुक जांचकर्ताओं द्वारा अन्य तरीकों का उपयोग किया जा सकता है

फुफ्फुसीय जीव विज्ञान के लिए तकनीक का महत्व
एक महत्वपूर्ण अध्ययन यह समझने के लिए समर्पित किया गया है कि उपकला कोशिकाओं की कोशिका झिल्ली में नियमित, कार्यशील सीएफटीआर की अनुपस्थिति के परिणामस्वरूप फेफड़ों, अग्न्याशय, यकृत, आंत या अन्य ऊतकों में शिथिलता कैसे होती है। बेकार उपकला आयन परिवहन, विशेष रूप से क्लोराइड और बाइकार्बोनेट के परिणामस्वरूप, उपकला अस्तर तरल पदार्थों की मात्रा में कमी और श्लेष्मा स्राव में परिवर्तन होता है, जिससे श्लेष्मा स्टैसिस और रुकावट होती है। अन्य वायुमार्ग रोगों में, जैसे कि प्राथमिक सिलियरी डिस्किनेसिया, परिवर्तित सिलिअरी गति म्यूकोसिलियरी निकासी को बाधित करती है और श्लेष्म स्टैसिस और रुकावट25 की ओर ले जाती है। इसलिए, वर्तमान एचएनई ऑर्गेनोइड मॉडल को विभिन्न अनुप्रयोगों के लिए विकसित किया गया है, जो अन्वेषक के प्रयोगात्मक डिजाइन और संसाधनों पर निर्भर करता है। इसमें लाइव-सेल दाग का उपयोग करके लाइव-सेल इमेजिंग शामिल है; आकृति विज्ञान को चिह्नित करने के लिए निर्धारण और विभाजन; इंट्राल्यूमिनल संरचनाओं को बाधित करने से बचने के लिए एंटीबॉडी और पूरे-माउंट कॉन्फोकल इमेजिंग के साथ इम्यूनोफ्लोरेसेंस धुंधला; और चमकीले क्षेत्र इमेजिंग और माइक्रो ऑप्टिकल सुसंगतता टोमोग्राफी सिलियरी बीट आवृत्ति और mucociliary परिवहन के मात्रात्मक मापके लिए 13. अन्य जांचकर्ताओं के विस्तार की सुविधा के लिए, व्यावसायिक रूप से उपलब्ध अभिकर्मकों और आपूर्ति का उपयोग खेती के लिए किया गया था। एक कार्यात्मक परख विकसित किया गया था कि आम माइक्रोस्कोप तकनीकों और अधिक विशेष उपकरणों का इस्तेमाल किया. कुल मिलाकर, जबकि वर्तमान मॉडल को बेसलाइन पर या चिकित्सीय के जवाब में सीएफटीआर गतिविधि का आकलन करने के लिए डिज़ाइन किया गया था, इस प्रोटोकॉल में वर्णित तकनीकों को उपकला सेल फ़ंक्शन, विशेष रूप से उपकला सेल द्रव परिवहन से जुड़ी अन्य बीमारियों पर लागू किया जा सकता है।

अन्य तरीकों की तुलना
हाल ही में इस ऑर्गेनोइड मॉडल की उपयोगिता को उनकी नैदानिक प्रतिक्रिया11 के साथ रोगियों के ऑर्गेनोइड्स के इन विट्रो सीएफटीआर मॉड्यूलेटर प्रतिक्रियाओं को सहसंबद्ध करके विकसित किया गया था। विशेष रूप से, यह भी प्रदर्शित किया गया है कि वर्तमान मॉडल ने शॉर्ट-सर्किट वर्तमान प्रतिक्रियाओं को समानांतर किया, सीएफटीआर फ़ंक्शन का आकलन करने के लिए वर्तमान स्वर्ण मानक, एक ही रोगियों में। शॉर्ट-सर्किट वर्तमान सूजन परख से अलग है क्योंकि पूर्व उपायों CFTR आयन परिवहन26 के माध्यम से समारोह. इसके विपरीत, यह परख तरल पदार्थ परिवहन के साथ एक और अधिक डाउनस्ट्रीम प्रभाव को मापता है, CFTR 27,28,29,30,31,32 के समग्र कार्य के बारे में अतिरिक्त जानकारी प्रदान करता है। शॉर्ट-सर्किट वर्तमान माप सीएफटीआर क्लोराइड चैनल गतिविधि 1,33 को निर्धारित करने के लिए एक सामान्य और विश्वसनीय विधि बनी हुई है। इन electrophysiological assays विशेष, महंगा उपकरण की आवश्यकता है, organoid परख की तुलना में प्रत्येक प्रयोगात्मक प्रतिकृति के लिए कई बार अधिक कोशिकाओं की आवश्यकता है, आसानी से स्वचालित नहीं किया जा सकता है, और उच्च थ्रूपुट अनुप्रयोगों के लिए स्केलिंग करने के लिए अनुकूल नहीं हैं। आंतों के एपिथेलिया से व्युत्पन्न एक अन्य ऑर्गेनोइड मॉडल के अतिरिक्त लाभ 15,16,17,18 हैं, जैसे कि अधिक उत्कृष्ट प्रतिकृति क्षमता, लेकिन न तो वायुमार्ग के ऊतकों से व्युत्पन्न है और न ही सार्वभौमिक रूप से उपलब्ध है। एचएनई ब्रशिंग को बेहोश करने की क्रिया की आवश्यकता के बिना और न्यूनतम जोखिम पर सस्ती साइटोलॉजी ब्रश के साथ प्राप्त किया जाता है। ब्रशिंग प्राप्त करने के लिए एक चिकित्सक की आवश्यकता नहीं होती है और प्रशिक्षित अनुसंधान समन्वयकों और अन्य शोध कर्मचारियों द्वारा किया जा सकताहै। एचएनई ऑर्गेनोइड मॉडल को प्राथमिक सेल संस्कृति क्षमताओं के साथ किसी भी प्रयोगशाला द्वारा सुसंस्कृत किया जा सकता है, और कुछ अनुप्रयोगों को मानक माइक्रोस्कोपी तकनीकों के साथ किया जा सकता है। कुल मिलाकर, ये फायदे वायुमार्ग उपकला समारोह का आकलन करने के लिए प्रौद्योगिकी तक अतिरिक्त पहुंच प्रदान करते हैं जो अन्यथा कुछ प्रयोगशालाओं के लिए अनुपलब्ध हो सकते हैं। इसके अलावा, एचएनई ऑर्गेनोइड्स का उपयोग अन्य रोग राज्यों का अध्ययन करने के लिए किया जा सकता है जो वायुमार्ग को प्रभावित करते हैं, जैसे कि प्राथमिक सिलिअरी डिस्किनेसिया25 या वायरल संक्रमण, जो आंतों के ऑर्गेनोइड्स नहीं कर सकते हैं।

Protocol

एचएनई नमूने अलबामा अस्पताल के बच्चों के बच्चों में एकत्र किए गए थे। यहां वर्णित सभी प्रक्रियाओं और तरीकों को बर्मिंघम में अलबामा के आईआरबी विश्वविद्यालय (यूएबी आईआरबी # 151030001) द्वारा अनुमोदित किया गया ह…

Representative Results

एचएनई विस्तार एक संपन्न ऑर्गेनोइड संस्कृति के लिए आवश्यक है। एक सफल नमूना संग्रह से एचएनई को 10 दिनों के आसपास 70% से अधिक संगम तक विस्तारित करना चाहिए। सफल और असफल नमूनों का एक उदाहरण क्रमशः चित्?…

Discussion

यह पांडुलिपि एचएनई ब्रश बायोप्सी से व्युत्पन्न वायुमार्ग उपकला ऑर्गेनोइड्स के व्यापक लाइव और फिक्स्ड इमेजिंग के लिए विस्तृत तरीके प्रदान करती है। यह कार्यात्मक assays का वर्णन करता है जो किसी व्यक्ति म?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम कृतज्ञतापूर्वक उन सभी प्रतिभागियों के योगदान को स्वीकार करते हैं जिन्होंने इस प्रोटोकॉल को विकसित करने के लिए एचएनई ब्रश बायोप्सी दान की थी। हम अध्ययन स्वयंसेवक भर्ती और नमूना संग्रह के समन्वय के लिए Latona Kersh और बच्चों की अनुसंधान इकाई के कर्मचारियों को धन्यवाद देते हैं। हम लिली डेंग, जॉनथन बेली और स्टीफन मैके, हमारी प्रयोगशाला में पूर्व प्रशिक्षुओं को तकनीकी सहायता के लिए धन्यवाद देते हैं। हम झोंग लियू और रुई झाओ को उनकी तकनीकी मदद के लिए धन्यवाद देते हैं। यूएबी में सीएफ रिसर्च सेंटर के निदेशक स्टीवन एम रोवे नेतृत्व और संसाधन प्रदान करते हैं, जिसके बिना यह काम संभव नहीं होगा। हम भी साधन प्रशिक्षण के साथ सहायता के लिए Biotek में सारा Guadiana धन्यवाद करना चाहते हैं, रॉबर्ट Grabski UAB उच्च संकल्प इमेजिंग सुविधा में confocal माइक्रोस्कोपी सहायता के लिए, और UAB Histology कोर में हिस्टोलॉजिकल सहायता के लिए Dezhi वांग. इस काम को राष्ट्रीय स्वास्थ्य संस्थान (एनआईएच) द्वारा समर्थित किया गया था। अनुदान K23HL143167 (जेएसजी के लिए), सिस्टिक फाइब्रोसिस फाउंडेशन (CFF) अनुदान GUIMBE18A0-Q (जेएसजी के लिए), ग्रेगरी फ्लेमिंग जेम्स सिस्टिक फाइब्रोसिस केंद्र [NIH अनुदान R35HL135816 और DK072482 और बर्मिंघम (UAB) अनुसंधान और विकास कार्यक्रम (Rowe19RO)] में अलबामा के CFF विश्वविद्यालय, और नैदानिक और ट्रांसलेशनल विज्ञान के लिए UAB केंद्र (NIH19RO)

Materials

Nasal brush Medical Packaging CYB1 CYB-1 Length: 8 inches, width approximately 7 mm
Large-Orifice Pipette Tips ThermoFisher Scientific 02-707-141 Large bore pipette tips
Accutase ThermoFisher Scientific A1110501 Cell detachment solution
0.05% trypsin -EDTA Gibco 25300-054
Trypsin inhibitor from soybean Sigma T6522 Working solution: 1mg/mL in 1XDPBS
Matrigel matrix Corning 356255 Extracellular matrix (EM)
µ-Slide Angiogenesis Ibidi 81506 15-well slide
24-Well Transwell Corning 7200154 Culture insert
Chambered Coverglass ThermoFisher Scientific 155409 8-well glass-bottom chamber slides
Cell-Tak Cell and Tissue Adhesive ThermoFisher Scientific 354240 Cell adhesive
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 50980487
Triton X-100 Alfa Aesar A16046
BSA ThermoFisher Scientific BP1600-100
NucBlue ThermoFisher Scientific R37605 DAPI
Eclipse Ts2-FL (Inverted Routine Microscope) Nikon Inverted epi-fluorescence microscope or bright-field microscope
Nikon A1R-HD25 Nikon Confocal microscope
NIS Elements- Basic Research Nikon manual imaging analysis software
Histogel ThermoFisher Scientific HG-4000-012
Disposable Base Molds ThermoFisher Scientific 41-740
Lionheart FX BioTek BTLFX Automated image system
Lionheart Cover BioTek BT1450009 Environmental Control Lid
Humidity Chamber BioTek BT1450006 Stage insert (environmental chamber)
Gas Controller for CO2 and O2 BioTek BT1210013 Gas controller
Microplate/Slide Stage Insert BioTek BT1450527 Slide holder
Gen5 Imaging Prime Software BioTek BTGEN5IPRIM Automated imaging analysis software
4x Phase Contrast Objective BioTek BT1320515
10x Phase Contrast Objective BioTek BT1320516
LED Cube BioTek BT1225007
Filter Cube (DAPI) BioTek BT1225100 DAPI
CFTRinh-172 Selleck Chemicals S7139
Forskolin Sigma F6886
IBMX Sigma I5879
Expansion Media
DMEM ThermoFisher Scientific 11965
F12 Nutrient mix ThermoFisher Scientific 11765
Fetal Bovine Serum ThermoFisher Scientific  16140-071
Penicillin/Streptomycin ThermoFisher Scientific  15-140-122
Cholera Toxin Sigma  C8052
Epidermal Growth Factor (EGF) ThermoFisher Scientific  PHG0314
Hydrocortisone (HC) Sigma  H0888
Insulin Sigma  I9278
Adenine Sigma  A2786
Y-27632 Stemgent  04-0012-02
Antibiotic Media
Ceftazidime Alfa Aesar  J66460-03
Tobramycin Alfa Aesar  J67340
Vancomycin Alfa Aesar  J67251
Amphotericin B Sigma  A2942
Differentiation Media
DMEM/F-12 (1:1) ThermoFisher Scientific  11330-32
Ultroser-G Pall  15950-017
Fetal Clone II Hyclone  SH30066.03
Bovine Brain Extract Lonza  CC-4098
Insulin Sigma  I-9278
Hydrocortisone Sigma  H-0888
Triiodothyronine Sigma  T-6397
Transferrin Sigma  T-0665
Ethanolamine Sigma  E-0135
Epinephrine Sigma E-4250
O-Phosphorylethanolamine Sigma P-0503
Retinoic Acid Sigma R-2625
Primary antibodies
Human CFTR antibody R&D Systems MAB1660 Dilution: 100x
ZO-1 antibody Thermo Fisher MA3-39100-A647 Dilution: 1000x
Anti-MUC5B antibody Sigma HPA008246 Dilution: 100x
Anti-acetylated tubulin Sigma T7451 Dilution: 100x
Anti-beta IV Tubulin antibody Abcam Ab11315 Dilution: 100x
Secondary antibodies
Donkey anti-Mouse IgG (H+L), Alexa Fluor 488 Invitrogen A21202 Dilution: 2000x
Donkey anti-Rabbit IgG (H+L), Alexa Fluor 594 Invitrogen A21207 Dilution: 2000x

Riferimenti

  1. Brewington, J. J., et al. Brushed nasal epithelial cells are a surrogate for bronchial epithelial CFTR studies. JCI Insight. 3 (13), (2018).
  2. Brewington, J. J., et al. Generation of human nasal epithelial cell spheroids for individualized cystic fibrosis transmembrane conductance regulator study. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (134), e57492 (2018).
  3. Brewington, J. J., et al. Detection of CFTR function and modulation in primary human nasal cell spheroids. Journal of Cystic Fibrosis. 17 (1), 26-33 (2017).
  4. Bridges, M. A., Walker, D. C., Davidson, A. G. Cystic fibrosis and control nasal epithelial cells harvested by a brushing procedure. In Vitro Cellular & Developmental Biology. 27 (9), 684-686 (1991).
  5. Bridges, M. A., Walker, D. C., Harris, R. A., Wilson, B. R., Davidson, A. G. Cultured human nasal epithelial multicellular spheroids: polar cyst-like model tissues. Biochemistry and Cell Biology. 69 (2-3), 102-108 (1991).
  6. Collie, G., Buchwald, M., Harper, P., Riordan, J. R. Culture of sweat gland epithelial cells from normal individuals and patients with cystic fibrosis. In Vitro Cellular & Developmental Biology. 21 (10), 597-602 (1985).
  7. Conger, B. T., et al. Comparison of cystic fibrosis transmembrane conductance regulator (CFTR) and ciliary beat frequency activation by the CFTR Modulators Genistein, VRT-532, and UCCF-152 in primary sinonasal epithelial cultures. JAMA Otolaryngology-Head & Neck Surgery. 139 (8), 822-827 (2013).
  8. de Courcey, F., et al. Development of primary human nasal epithelial cell cultures for the study of cystic fibrosis pathophysiology. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 303 (11), 1173-1179 (2012).
  9. Gruenert, D. C., Basbaum, C. B., Widdicombe, J. H. Long-term culture of normal and cystic fibrosis epithelial cells grown under serum-free conditions. In Vitro Cellular & Developmental Biology. 26 (4), 411-418 (1990).
  10. Mosler, K., et al. Feasibility of nasal epithelial brushing for the study of airway epithelial functions in CF infants. Journal of Cystic Fibrosis. 7 (1), 44-53 (2008).
  11. Anderson, J. D., Liu, Z., Odom, L. V., Kersh, L., Guimbellot, J. S. CFTR function and clinical response to modulators parallel nasal epithelial organoid swelling. The American Journal of Physiology – Lung Cellular and Molecular Physiology. 321 (1), 119-129 (2021).
  12. Guimbellot, J. S., et al. Nasospheroids permit measurements of CFTR-dependent fluid transport. JCI Insight. 2 (22), (2017).
  13. Liu, Z., et al. Human nasal epithelial organoids for therapeutic development in cystic fibrosis. Genes (Basel). 11 (6), (2020).
  14. Muller, L., Brighton, L. E., Carson, J. L., Fischer, W. A., Jaspers, I. Culturing of human nasal epithelial cells at the air liquid interface. Journal of Visualized Experiments: JoVE. , (2013).
  15. Dekkers, J. F., vander Ent, C. K., Beekman, J. M. Novel opportunities for CFTR-targeting drug development using organoids. Rare Diseases. 1, 27112 (2013).
  16. Dekkers, J. F., et al. A functional CFTR assay using primary cystic fibrosis intestinal organoids. Nature Medicine. 19 (7), 939-945 (2013).
  17. Okiyoneda, T., et al. Mechanism-based corrector combination restores DeltaF508-CFTR folding and function. Nature Chemical Biology. 9 (7), 444-454 (2013).
  18. Schwank, G., et al. Functional repair of CFTR by CRISPR/Cas9 in intestinal stem cell organoids of cystic fibrosis patients. Cell Stem Cell. 13 (6), 653-658 (2013).
  19. Geurts, M. H., et al. CRISPR-based adenine editors correct nonsense mutations in a cystic fibrosis organoid biobank. Cell Stem Cell. 26 (4), 503-510 (2020).
  20. Bove, P. F., et al. Breaking the in vitro alveolar type II cell proliferation barrier while retaining ion transport properties. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 50 (4), 767-776 (2014).
  21. Chapman, S., Liu, X., Meyers, C., Schlegel, R., McBride, A. A. Human keratinocytes are efficiently immortalized by a Rho kinase inhibitor. Journal of Clinical Investigation. 120 (7), 2619-2626 (2010).
  22. Liu, X., et al. ROCK inhibitor and feeder cells induce the conditional reprogramming of epithelial cells. The American Journal of Pathology. 180 (2), 599-607 (2012).
  23. Palechor-Ceron, N., et al. Radiation induces diffusible feeder cell factor(s) that cooperate with ROCK inhibitor to conditionally reprogram and immortalize epithelial cells. The American Journal of Pathology. 183 (6), 1862-1870 (2013).
  24. Scudieri, P., et al. Ionocytes and CFTR chloride channel expression in normal and cystic fibrosis nasal and bronchial epithelial cells. Cells. 9 (9), (2020).
  25. Marthin, J. K., Stevens, E. M., Larsen, L. A., Christensen, S. T., Nielsen, K. G. Patient-specific three-dimensional explant spheroids derived from human nasal airway epithelium: a simple methodological approach for ex vivo studies of primary ciliary dyskinesia. Cilia. 6, 3 (2017).
  26. Blouquit, S., et al. Ion and fluid transport properties of small airways in cystic fibrosis. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 174 (3), 299-305 (2006).
  27. Birket, S. E., et al. Combination therapy with cystic fibrosis transmembrane conductance regulator modulators augment the airway functional microanatomy. The American Journal of Physiology – Lung Cellular and Molecular Physiology. 310 (10), 928-939 (2016).
  28. Birket, S. E., et al. A functional anatomic defect of the cystic fibrosis airway. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 190 (4), 421-432 (2014).
  29. Chu, K. K., et al. Particle-tracking microrheology using micro-optical coherence tomography. Biophysical Journal. 111 (5), 1053-1063 (2016).
  30. Chu, K. K., et al. et al. In vivo imaging of airway cilia and mucus clearance with micro-optical coherence tomography. Biomedical Optics Express. 7 (7), 2494-2505 (2016).
  31. Liu, L., et al. Method for quantitative study of airway functional microanatomy using micro-optical coherence tomography. PLoS One. 8 (1), 54473 (2013).
  32. Tuggle, K. L., et al. Characterization of defects in ion transport and tissue development in cystic fibrosis transmembrane conductance regulator (CFTR)-knockout rats. PLoS One. 9 (3), 91253 (2014).
  33. McCravy, M. S., et al. Personalised medicine for non-classic cystic fibrosis resulting from rare CFTR mutations. European Respiratory Journal. 56 (1), 2000062 (2020).
  34. Mutyam, V., et al. Therapeutic benefit observed with the CFTR potentiator, ivacaftor, in a CF patient homozygous for the W1282X CFTR nonsense mutation. Journal of Cystic Fibrosis. 16 (1), 24-29 (2017).
  35. Corning Inc. . CORNING CELL-TAK CELL AND TISSUE ADHESIVE. , (2013).
  36. Anderson, J. D., Liu, Z., Odom, L. V., Kersh, L., Guimbellot, J. S. CFTR function and clinical response to modulators parallel nasal epithelial organoid swelling. The American Journal of Physiology – Lung Cellular and Molecular Physiology. 321 (1), 119-129 (2021).
  37. Biotek Instruments, Incorporated. . Lionheart FX Live Cell Imager Operator’s Manual. , (2016).
  38. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nature Methods. 9 (7), 671-675 (2012).
  39. Simmonds, N. J. Is it cystic fibrosis? The challenges of diagnosing cystic fibrosis. Paediatric Respiratory Reviews. 31, 6-8 (2019).
  40. McGarry, M. E., et al. In vivo and in vitro ivacaftor response in cystic fibrosis patients with residual CFTR function: N-of-1 studies. Pediatric Pulmonology. 52 (4), 472-479 (2017).
  41. Garratt, L. W., et al. Determinants of culture success in an airway epithelium sampling program of young children with cystic fibrosis. Experimental Lung Research. 40 (9), 447-459 (2014).
check_url/it/63064?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Liu, Z., Anderson, J. D., Natt, J., Guimbellot, J. S. Culture and Imaging of Human Nasal Epithelial Organoids. J. Vis. Exp. (178), e63064, doi:10.3791/63064 (2021).

View Video