Summary

Kvantifisering av vaskulære parametere i hele fjellet netthinner av mus med ikke-proliferative og proliferative retinopatier

Published: March 12, 2022
doi:

Summary

Denne artikkelen beskriver en veletablert og reproduserbar lectin flekkanalyse for hele fjellet retinal preparater og protokollene som kreves for kvantitativ måling av vaskulære parametere ofte endret i proliferative og ikke-proliferative retinopatier.

Abstract

Retinopatier er en heterogen gruppe sykdommer som påvirker øyets nevrosensoriske vev. De er preget av nevrodegenerasjon, gliose og en progressiv endring i vaskulær funksjon og struktur. Selv om utbruddet av retinopatiene er preget av subtile forstyrrelser i visuell oppfatning, er modifikasjonene i vaskulær plexus de første tegnene som oppdages av klinikere. Fraværet eller tilstedeværelsen av neovascularization bestemmer om retinopatien er klassifisert som enten ikke-proliferativ (NPDR) eller proliferativ (PDR). I denne forstand prøvde flere dyremodeller å etterligne spesifikke vaskulære egenskaper i hvert trinn for å bestemme de underliggende mekanismene som er involvert i endotelendringer, nevronal død og andre hendelser som finner sted i netthinnen. I denne artikkelen vil vi gi en fullstendig beskrivelse av prosedyrene som kreves for måling av retinal vaskulære parametere hos voksne og tidlige fødselsmus på barseldag (P)17. Vi vil detaljere protokollene for å utføre retinal vaskulær farging med Isolectin GSA-IB4 i hele mounts for senere mikroskopisk visualisering. Viktige trinn for bildebehandling med Image J Fiji-programvare er også gitt, derfor vil leserne kunne måle kartetthet, diameter og tortuositet, vaskulær forgrening, samt avaskulære og neovascular områder. Disse verktøyene er svært nyttige for å evaluere og kvantifisere vaskulære endringer i både ikke-proliferative og proliferative retinopatier.

Introduction

Øynene er næret av to arterio-venøse system: choroidal vaskulatur, et eksternt vaskulært nettverk som irrigerer retinal pigmentert epitel og fotoreseptorer; og nevroretinal vaskulatur som irrigerer ganglioncellelaget og det indre kjernefysiske laget av netthinnen1. Retinal vaskulaturen er et organisert nettverk av kar som leverer næringsstoffer og oksygen til netthinnecellene og høster avfallsprodukter for å sikre riktig visuell signaltransduksjon. Denne vaskulaturen har noen forskjellige egenskaper, inkludert: mangelen på autonom innervering, regulering av vaskulær tone ved iboende retinalmekanismer og besittelse av en kompleks retinal-blodbarriere2. Derfor har retinal vaskulatur vært fokus for mange forskere som i stor grad har studert ikke bare vaskulogenese under utviklingen, men også endringene og den patologiske angiogenesen som disse karene gjennomgår i sykdommer3. De vanligste vaskulære endringene som observeres i retinopatier er kardilatasjon, neovascularization, tap av vaskulær arborisering og deformasjon av retinal hovedkarene, noe som gjør dem mer ziggaggy4,5,6. En eller flere av de beskrevne endringene er de tidligste tegnene som skal oppdages av klinikere. Vaskulær visualisering gir en rask, ikke-invasiv og billig screeningmetode7. Den omfattende studien av endringene som observeres i det vaskulære treet, vil avgjøre om retinopatien er ikke-proliferativ eller proliferativ og den videre behandlingen. De ikke-proliferative retinopatiene kan manifestere seg med avvikende vaskulær morfologi, redusert vaskulær tetthet, acellulære kapillærer, pericytter død, makulaødem, blant andre. I tillegg utvikler proliferative retinopatier også økt vaskulær permeabilitet, ekstracellulær ombygging og dannelsen av vaskulære tufts mot glasslegemet som lett bryter ned eller induserer retinal løsrivelse8.

Når retinopatien er oppdaget, kan den overvåkes gjennom sine vaskulære endringer9,10. Progresjonen av patologien kan følges gjennom de strukturelle endringene i karene, som klart definerer stadier av sykdommen11. Kvantifiseringen av vaskulære endringer i disse modellene tillot å korrelere karendringer og nevronal død og å teste farmakologiske terapier for pasienter i ulike faser av sykdommen.

I lys av de ovennevnte uttalelsene anser vi at anerkjennelse og kvantifisering av vaskulære endringer er grunnleggende i retinopatistudier. I dette arbeidet vil vi vise hvordan du måler forskjellige vaskulære parametere. For å gjøre det, vil vi ansette to dyremodeller. En av dem er den oksygeninduserte retinopatimusemodellen12, som etterligner Retinopati av prematuritet og noen aspekter av proliferativ diabetisk retinopati13,14. I denne modellen vil vi måle avaskulære områder, neovascular områder og dilatasjon og tortuositet av hovedfartøy. I vårt laboratorium er det utviklet en metabolsk syndrom (MetS) musemodell, som induserer en ikke-proliferativ retinopati15. Her vil vi evaluere vaskulær tetthet og forgrening.

Protocol

C57BL/6J-mus ble håndtert i henhold til retningslinjene i ARVO-erklæringen for bruk av dyr i oftalmisk og visjonsforskning. Eksperimentelle prosedyrer ble utformet og godkjent av Institutional Animal Care and Use Committee (CICUAL) ved Fakultet for kjemisk vitenskap, National University of Córdoba (Res. HCD 1216/18). 1. Utarbeidelse av bufferløsninger og reagenser Tilberedning av 1x fosfatbuffer saltvann (PBS): Tilsett 8 g natriumklorid (NaCl), 0,2 g kaliumklorid…

Representative Results

Som beskrevet i protokolldelen, fra en enkelt fluorescerende fargeanalyse, kan du få den vaskulære morfologien og evaluere flere parametere av interesse kvantitativt. Søket av en bestemt endring vil avhenge av hvilken type retinopati som studeres. I denne artikkelen ble avascular og neovascular områder, tortuositet og dilatasjon evaluert i en musemodell av proliferativ retinopati, mens vaskulær forgrening og tetthet ble analysert i en MetS-musemodell, som induserer en ikke-proliferativ retinopati. <p class="jove…

Discussion

Dyremodeller av retinopatier er kraftige verktøy for å studere vaskulær utvikling, ombygging eller patologisk angiogenese. Suksessen til disse studiene i feltet er avhengig av enkel tilgang til vevet som gjør det mulig å utføre et bredt spekter av teknikker, og gir data fra in vivo og postmortem mus26,27. Videre er det funnet stor sammenheng mellom in vivo-studier og klinisk analyse, noe som gir solid sporbarhet og pålitelighet t…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Carlos Mas, María Pilar Crespo og Cecilia Sampedro fra CEMINCO (Centro de Micro y Nanoscopía Córdoba, CONICET-UNC, Córdoba, Argentina) for hjelp i konfikal mikroskopi, til Soledad Miró og Victoria Blanco for dedikert dyrepleie og Laura Gatica for histologisk hjelp. Vi takker også Victor Diaz (pro-sekretær for institusjonell kommunikasjon av FCQ) for videoproduksjonen og utgaven og Paul Hobson for hans kritiske lesning og språkrevisjon av manuskriptet.

Denne artikkelen ble finansiert av tilskudd fra Secretaría de Ciencia y Tecnología, Universidad Nacional de Córdoba (SECyT-UNC) Consolidar 2018-2021, Fondo para la Investigación Científica y Tecnológica (FONCyT), Proyecto de Investigación en Ciencia y Tecnología (PICT) 2015 N° 1314 (alle til M.C.S.).

Materials

Aluminuim foil
Bovine Serum Albumin Merck A4503 quality
Calcium chloride dihydrate Merck C3306
Hydrochloric acid Biopack 9632.08
Confocal Microscope FV1200 Olympus FV1200 with motorized plate
Covers Paul Marienfeld GmnH & Co. 111520
Dissecting Microscope NIKON SMZ645
Disodium-hydrogen-phosphate dihydrate Merck 119753
200 µL  tube Merck Z316121
Filter paper Merck WHA5201090
Incubator shaker GyroMini LabNet International S0500
Isolectin GS-IB4 From Griffonia simplicifolia, Alexa Fluor 488 Conjugate Invitrogen I21411
Poly(vinyl alcohol) (Mowiol 4-88) Merck 475904
Paraformaldehyde Merck 158127
pHmeter SANXIN PHS-3D-03
Potassium chloride Merck P9541
Potassium-dihydrogen phosphate Merck 1,04,873
Slides Fisher Scientific 12-550-15
Sodium chloride Merck S3014
Sodium hydroxide Merck S5881
Tris Merck GE17-1321-01
Triton X-100 Merck X100-1GA
Vessel Analysis Fiji software Mai Elfarnawany https://imagej.net/Vessel_Analysis

Riferimenti

  1. Kur, J., Newman, E. A., Chan-Ling, T. Cellular and physiological mechanisms underlying blood flow regulation in the retina and choroid in health and disease. Progress in Retinal and Eye Research. 31 (5), 377-406 (2012).
  2. McDougal, D. H., Gamlin, P. D. Autonomic control of the eye. Comprehensive Physiology. 5 (1), 439-473 (2015).
  3. Selvam, S., Kumar, T., Fruttiger, M. Retinal vasculature development in health and disease. Progress in Retinal and Eye Research. 63, 1-19 (2018).
  4. Wei, Y., et al. Age-related alterations in the retinal microvasculature, microcirculation, and microstructure. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 58 (9), 3804-3817 (2017).
  5. Lavia, C., et al. Reduced vessel density in the superficial and deep plexuses in diabetic retinopathy is associated with structural changes in corresponding retinal layers. PLoS One. 14 (7), 0219164 (2019).
  6. Rosenblatt, T. R., et al. Key factors in a rigorous longitudinal image-based assessment of retinopathy of prematurity. Scientific Reports. 11 (1), 5369 (2021).
  7. Edwards, A. L. Funduscopic examination of patients with diabetes who are admitted to hospital. Canadian Medical Association Journal. 134 (11), 1263-1265 (1986).
  8. Lechner, J., O’Leary, O. E., Stitt, A. W. The pathology associated with diabetic retinopathy. Vision Research. 139, 7-14 (2017).
  9. Sun, Z., et al. angiography metrics predict progression of diabetic retinopathy and development of diabetic macular edema: A prospective study. Ophthalmology. 126 (12), 1675-1684 (2019).
  10. Jia, Y., et al. Quantitative optical coherence tomography angiography of vascular abnormalities in the living human eye. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (18), 2395-2402 (2015).
  11. Pauleikhoff, D., Gunnemann, F., Book, M., Rothaus, K. Progression of vascular changes in macular telangiectasia type 2: comparison between SD-OCT and OCT angiography. Graefe’s Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 257 (7), 1381-1392 (2019).
  12. Gammons, M. V., Bates, D. O. Models of oxygen induced retinopathy in rodents. Methods in Molecular Biology. 1430, 317-332 (2016).
  13. Grossniklaus, H. E., Kang, S. J., Berglin, L. Animal models of choroidal and retinal neovascularization. Progress in Retinal and Eye Research. 29 (6), 500-519 (2010).
  14. Han, N., Xu, H., Yu, N., Wu, Y., Yu, L. MiR-203a-3p inhibits retinal angiogenesis and alleviates proliferative diabetic retinopathy in oxygen-induced retinopathy (OIR) rat model via targeting VEGFA and HIF-1α. Clinical and Experimental Pharmacology & Physiology. 47 (1), 85-94 (2020).
  15. Paz, M. C., et al. Metabolic syndrome triggered by fructose diet impairs neuronal function and vascular integrity in ApoE-KO mouse retinas: Implications of autophagy deficient activation. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 8, 573987 (2020).
  16. Connor, K. M., et al. Quantification of oxygen-induced retinopathy in the mouse: a model of vessel loss, vessel regrowth and pathological angiogenesis. Nature Protocols. 4 (11), 1565-1573 (2009).
  17. Zarb, Y., et al. Ossified blood vessels in primary familial brain calcification elicit a neurotoxic astrocyte response. Brain. 142 (4), 885-902 (2019).
  18. Smith, L. E., et al. Oxygen-induced retinopathy in the mouse. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 35 (1), 101-111 (1994).
  19. Subirada, P. V., et al. Effect of autophagy modulators on vascular, glial, and neuronal alterations in the oxygen-induced retinopathy mouse model. Frontiers in Cellular Neuroscience. 13, 279 (2019).
  20. Lutty, G. A., McLeod, D. S. Development of the hyaloid, choroidal and retinal vasculatures in the fetal human eye. Progress in Retinal and Eye Research. 62, 58-76 (2018).
  21. Kim, C. B., D’Amore, P. A., Connor, K. M. Revisiting the mouse model of oxygen-induced retinopathy. Eye and Brain. 8, 67-79 (2016).
  22. Guaiquil, V. H., et al. A murine model for retinopathy of prematurity identifies endothelial cell proliferation as a potential mechanism for plus disease. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 54 (8), 5294-5302 (2013).
  23. Mezu-Ndubuisi, O. J. In vivo angiography quantifies oxygen-induced retinopathy vascular recovery. Optometry and Vision Science: Official Publication of the American Academy of Optometry. 93 (10), 1268-1279 (2016).
  24. Scott, A., Powner, M. B., Fruttiger, M. Quantification of vascular tortuosity as an early outcome measure in oxygen induced retinopathy (OIR). Experimental Eye Research. 120, 55-60 (2014).
  25. Kim, A. Y., et al. Quantifying microvascular density and morphology in diabetic retinopathy using spectral-domain optical coherence tomography angiography. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 57 (9), 362 (2016).
  26. Liu, C. H., Wang, Z., Sun, Y., Chen, J. Animal models of ocular angiogenesis: from development to pathologies. FASEB Journal. 31 (11), 4665-4681 (2017).
  27. Grossniklaus, H. E., Kang, S. J., Berglin, L. Animal models of choroidal and retinal neovascularization. Progress in Retinal and Eye Research. 29 (6), 500-519 (2010).
  28. Kern, T. S., Antonetti, D. A., Smith, L. E. H. Pathophysiology of diabetic retinopathy: Contribution and limitations of laboratory research. Ophthalmic Research. 62 (4), 196-202 (2019).
  29. Lorenc, V. E., et al. IGF-1R regulates the extracellular level of active MMP-2, pathological neovascularization, and functionality in retinas of OIR mouse model. Molecular Neurobiology. 55 (2), 1123-1135 (2018).
  30. Ma, N., Streilein, J. W. Contribution of microglia as passenger leukocytes to the fate of intraocular neuronal retinal grafts. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 39 (12), 2384-2393 (1998).
  31. Mazzaferri, J., Larrivée, B., Cakir, B., Sapieha, P., Costantino, S. A machine learning approach for automated assessment of retinal vasculature in the oxygen induced retinopathy model. Scientific Reports. 8 (1), 3916 (2018).
  32. Milde, F., Lauw, S., Koumoutsakos, P., Iruela-Arispe, M. L. The mouse retina in 3D: quantification of vascular growth and remodeling. Integrative Biology: Quantitative Biosciences from Nano to Macro (Camb). 5 (12), 1426-1438 (2013).
  33. Yang, T., et al. Pericytes of indirect contact coculture decrease integrity of inner blood-retina barrier model in vitro by upgrading MMP-2/9 activity. Disease Markers. 2021, 7124835 (2021).
  34. Huang, Q., Wang, S., Sorenson, C. M., Sheibani, N. PEDF-deficient mice exhibit an enhanced rate of retinal vascular expansion and are more sensitive to hyperoxia-mediated vessel obliteration. Experimental Eye Research. 87 (3), 226-241 (2008).
  35. Jiang, H., Zhang, H., Jiang, X., Wu, S. Overexpression of D-amino acid oxidase prevents retinal neurovascular pathologies in diabetic rats. Diabetologia. 64 (3), 693-706 (2021).
check_url/it/63126?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Subirada, P. V., Paz, M. C., Vaglienti, M. V., Luna, J. D., Barcelona, P. F., Sánchez, M. C. Quantification of Vascular Parameters in Whole Mount Retinas of Mice with Non-Proliferative and Proliferative Retinopathies. J. Vis. Exp. (181), e63126, doi:10.3791/63126 (2022).

View Video