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Articolo metodologico

Un semplice chip microfluidico per la crescita a lungo termine e l'imaging di Caenorhabditis elegans

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DOI:

10.3791/63136

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11 aprile 2022

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In questo articolo

Sommario

Il protocollo descrive una semplice progettazione di chip microfluidici e una metodologia di microfabbricazione utilizzata per coltivare C. elegans in presenza di una fornitura continua di cibo fino a 36 ore. Il dispositivo di crescita e imaging consente inoltre l'imaging intermittente ad alta risoluzione a lungo termine dei processi cellulari e subcellulari durante lo sviluppo per diversi giorni.

Abstract

Caenorhabditis elegans (C. elegans) ha dimostrato di essere un valido sistema modello per lo studio dei processi biologici dello sviluppo e cellulare. La comprensione di questi processi biologici richiede spesso immagini a lungo termine e ripetute dello stesso animale. I lunghi tempi di recupero associati ai metodi di immobilizzazione convenzionali eseguiti su cuscinetti di agar hanno effetti dannosi sulla salute degli animali rendendo inappropriato visualizzare ripetutamente lo stesso animale per lunghi periodi di tempo. Questo articolo descrive la progettazione di chip microfluidici, il metodo di fabbricazione, il protocollo di coltura di C. elegans su chip e tre esempi di imaging a lungo termine per studiare i processi di sviluppo nei singoli animali. Il chip, fabbricato con polidimetilsilossano e legato su un vetro di copertura, immobilizza gli animali su un substrato di vetro utilizzando una membrana elastomerica che viene deviata usando azoto gassoso. L'immobilizzazione completa di C. elegans consente una solida imaging time-lapse di eventi cellulari e subcellulari in modo privo di anestesia. Una geometria del canale con un'ampia sezione trasversale consente all'animale di muoversi liberamente all'interno di due membrane di isolamento parzialmente sigillate che consentono la crescita nel canale con un continuo apporto di cibo. Utilizzando questo semplice chip, è possibile eseguire l'imaging di fenomeni di sviluppo come la crescita del processo neuronale, lo sviluppo vulvare e l'arborizzazione dendritica nei neuroni sensoriali PVD, mentre l'animale cresce all'interno del canale. Il chip di crescita e imaging a lungo termine funziona con una singola linea di pressione, senza valvole esterne, materiali di consumo fluidici economici e utilizza protocolli standard di gestione dei vermi che possono essere facilmente adattati da altri laboratori che utilizzano C. elegans.

Introduzione

Caenorhabditis elegans ha dimostrato di essere un potente organismo modello per studiare la biologia cellulare, l'invecchiamento, la biologia dello sviluppo e la neurobiologia. Vantaggi come il suo corpo trasparente, il breve ciclo di vita, la facilità di manutenzione, un numero definito di cellule, l'omologia con diversi geni umani e la genetica ben studiata hanno portato C. elegans a diventare un modello popolare sia per le scoperte di biologia fondamentale che per la ricerca applicata 1,2. Comprendere i processi biologici e di sviluppo delle cellule dall'osservazione ripetuta a lungo termi....

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Protocollo

1. Fabbricazione di dispositivi di crescita e imaging

  1. Fabbricazione di stampi SU8
    1. Progettare i modelli 1 (strato di flusso) e 2 (strato di controllo) utilizzando forme rettangolari in un software di elaborazione testi (o un software CAD di progettazione assistita da computer) e stampare le fotomaschere con l'aiuto di un plotter laser con una dimensione minima di 8 μm su pellicola a base di poliestere (Figura 1).
    2. Tagliare i wafer di silicone in pezzi da 2,5 cm × 2,5 cm e pulirli con KOH al 20% per 1 minuto. Risciacquare i wafer in acqua deionizzata (DI). Utilizzare un wafer ciascuno per il fluss....

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Risultati

Caratterizzazione del dispositivo: Il dispositivo di crescita e imaging è costituito da due strati PDMS legati insieme (Figura 1) utilizzando legami plasmatici irreversibili. Lo strato di flusso (modello 1) che è lungo 10 mm e alto 40 μm o 80 μm ci consente di coltivare l'animale in coltura liquida (Figura 1A). Lo strato di cattura (modello 2) ha una membrana larga 2 mm (Figura 1B) per immobilizzare l'animale per l.......

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Discussione

In questo articolo, è stato descritto un protocollo per la fabbricazione e l'uso di un semplice dispositivo microfluidico per la crescita di C. elegans con costante approvvigionamento di cibo e imaging ad alta risoluzione di un singolo animale durante il suo sviluppo. Questo processo di fabbricazione è semplice e può essere eseguito in un ambiente non sterile. Un ambiente privo di polvere è fondamentale durante le fasi di fabbricazione. La presenza di particelle di polvere porterebbe a un contatto improprio tra .......

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Dichiarazioni

S.M. e S.P.K. sono autori di un brevetto in corso sul dispositivo di crescita e imaging microfluidico (numero di domanda di brevetto 640/CHE/2011).

Ringraziamenti

Si ringrazia CIFF imaging facility, NCBS per l'utilizzo dei microscopi confocali supportati dal DST - Centre for Nanotechnology (No. SR/55/NM-36-2005). Ringraziamo i finanziamenti per la ricerca di DBT (SPK), CSIR-UGC (JD), DST (SM), DBT (SM), disco rotante supportato da DAE-PRISM 12-R&D-IMS-5.02.0202 (SPK e Gautam Menon) e HHMI-IECS grant number 55007425 (SPK). I ceppi HB101, PS3239 e wdIs51 sono stati forniti dal Caenorhabditis Genetics Center (CGC), finanziato dall'Ufficio NIH dei programmi di infrastruttura di ricerca (P40 OD010440). S.P.K. ha realizzato jsIs609 nel laboratorio di Mike Nonet.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Aghi 18 GSigma-Aldrich, Bangalore, IndiaCalibro 18
Rubinetto a 3 vieCole-ParmerWW-30600-02Raccordo Masterflex con
telecamera CCDTecnologia AndorEMCCD C9100-13no
Pellicola per circuito stampatoFine Line Imaging, Colorado, USAI disegni sono stampati con 65.024 punti per pollice (DPI)
Forno a convezioneMeta-Lab Scientific Industries, IndiaMSI-5
Vetrini coprioggettidi copertura microscopico blu22mm x 10Gms
EtanoloHi media
Harris uni-core puncher 1mmQiagenZ708801
EsametiltililazanoSigma-Aldrich, Bangalore, India440191
Piastrariscaldante  IKARCT B S 22
IsopropanoloFisher Scientific26895
KOHFisher Scientific
Microscopio a scansione laserZEISSLSM 5 LIVE
Punte per micropipetteTarsons0,5-10 &; I puntali per micropipette L sono utilizzati per l'approvvigionamento alimentare
Fotoresist negativo-1MicrochemSU8-2025http://www.microchem.com/Prod-SU82000.htm
Photoresist negativo-2MicrochemSU8-2050http://www.microchem.com/Prod-SU82000.htm
Azoto gassosoFornitore localeAzoto gassoso commercialeVolume della bombola di 7 metri cubi
PDMS (soluzione di polimerizzazione)Dow Corning Corporation, MI, Stati Unitid'America Sylgard soluzione di polimerizzazioneagente di polimerizzazione
di PetriPraveen Scientific Corporation
Detergente al plasmaHarrick Plasma, NY, USA  PDC-32G
Rasoio e lamechirurgica Lister
Elastomero di silicone (base)Dow Corning Corporation, MI, USABase in elastomerodi base Sylgard 184
Tubi in siliconeFisher ScientificTubi in plastica con diametro interno 1,59 mm e diametro esterno 3,18 mm
Wafer di siliconeUniversity Wafer, MA, USA[100] orientamento, 4 pollici diametroPiccoli pezzi (2 mm & volte; 2 mm) sono stati tagliati da wafer di 100 mm di diametro
Spin CoaterSPS-Europe B.V., Paesi BassiMicroscopio a disco rotante SPIN 150
SistemaVOX ultra-view Perkin ElmerCSU-X1-A3 NIl sistema è stato dotato di quattro laser (405/488/561/640 nm) e controllato con il pacchetto software Volocity.
Sviluppatore SU8Microchem, MA, USASU8
Tricloro (1H, 1H, 2H, 2H-perfluoroottil) silanoSigma-Aldrich, Bangalore, India448931Il vapore di tricloro (1H, 1H, 2H, 2H-perfluoroottil) silano è
una lampada UVOriel Instruments, Bangalore, India200 Watt e sorgente di luce UV collimata
Software VolocityPerkin-Elmer analisi
luer lock Vetro piastre Lama Sviluppatore tossica Immagine

Riferimenti

  1. Doitsidou, M., Poole, R. J., Sarin, S., Bigelow, H., Hobert, O. C. elegans Mutant Identification with a One-Step Whole-Genome-Sequencing and SNP Mapping Strategy. PloS One. 5 (11), 15435(2010).
  2. Hobert, O. Neurogenesis in the nema....

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Ristampe e permessi

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